周豪杰,汪传喜,滕 青,聂咏梅
(广州血液中心质量控制科,广东 广州 510095)
载体介导的RNAi抑制乙肝病毒S基因的研究
周豪杰,汪传喜,滕 青,聂咏梅*
(广州血液中心质量控制科,广东 广州 510095)
目的构建针对乙肝病毒S基因的RNAi表达载体,观察其对HBV表达的影响。方法合成针对HBV S基因的RNAi寡核苷酸,克隆入pSUPER载体,与pHBV质粒共转染HepG2细胞。ELISA和Western blot检测HBsAg表达。结果成功构建针对HBV S基因的RNAi表达载体pSUPER-S1和pSUPER-S2对HBsAg的抑制率分别为79.0%和43.2%,无关序列的RNAi表达载体无此作用。结论载体介导的RNAi能高效、特异地抑制HBV S基因的表达。
乙型肝炎病毒;RNA干扰;乙肝病毒表面抗原
乙型肝炎病毒(Hepatitis B virus,HBV)是一种嗜肝DNA病毒,可引起人体急性和慢性肝炎,是危害人类健康的一个重大疾病[1]。目前慢性乙肝的治疗主要采用干扰素和拉米夫定等抗病毒药物,但迄今疗效并不令人满意[2]。RNA干扰(RNA interference,RNAi)是近年发展的一种基因疗法,表现在转录后水平特异地引起基因沉默[3],目前RNAi已经被广泛的用于基因治疗研究。我们针对HBV S基因尝试构建RNAi表达质粒,观察其对HBV表面抗原表达的影响。
1.1 质粒和细胞 RNAi表达载体pSUPER购自美国Oligoengine公司,稳定表达HBsAg的全长HBV真核表达载体pHBV由本实验室构建[4]。HepG2细胞、DH5α大肠杆菌由本实验室保存。
1.2 主要试剂 高糖DMEM细胞培养液购自Gibco公司,HBsAg ELISA检测试剂盒购自法国梅里埃公司,脂质体转染试剂Lipofectamine2000购自Invitrogen公司,鼠抗HBsAg单抗购自ViroStat公司,羊抗鼠IgG二抗为武汉博士德公司产品,T4DNA连接酶购自TaKaRa公司。
1.3 针对HBV S基因RNAi表达载体的构建 根据RNAi的设计原则[5],选择HBV序列357-375及520-538位点设计两对寡核苷酸S1和S2,同时设计一对无关序列Snonsense,在其两端分别加上BglⅡ和HindⅢ酶切位点,TTTTT为转录终止信号,loop环为TTCAAGAGA,设计序列见表1。寡核苷酸序列交由上海生工合成后,溶解于水中成浓度1 μg/μl,各取2 μl混匀,加入6 μl退火缓冲液,95℃保温5 min,自然冷却至室温得到退火双链DNA;取10 μl退火双链DNA及经BglⅡ和 HindⅢ双酶切的pSUPER载体3 μl、T4DNA连接酶2μl,连接缓冲液2 μl、H2O 3 μl 16℃连接过夜,连接产物转化DH5α感受态细菌。提取质粒进行EcoRⅠ和HindⅢ双酶切鉴定,阳性克隆送测序。
表1 乙型肝炎病毒S基因干扰寡核苷酸序列
1.4 细胞培养和转染 HepG2细胞用含10%新生牛血清、100 μg/ml青霉素、100 μg/ml链霉素的高糖DMEM培养液,按2×l05细胞/孔接种6孔板,于37℃、5%CO2培养箱中培养。设四个组:pHBV对照组,S1处理组,S2处理组和Snonsense组,每组设置6复孔。细胞融合85%左右,脂质体介导转染细胞,pHBV对照组转染0.5 μg pHBV载体,处理组共转染0.5 μg pHBV载体和0.5 μg RNAi干扰载体。
1.5 培养上清HBsAg检测 细胞转染后48 h收集培养上清进行HBsAg ELISA检测,以620 nm为参考波长,450 nm为测量波长读取吸光度A值,并计算抑制率,抑制率=(A试验组-A对照组)/A对照组×100%。
1.6 Western blot检测HBsAg表达 细胞转染后48 h收集细胞,加上样缓冲液煮沸5 min裂解进行SDS-PAGE,蛋白样品分离后电转移至硝酸纤维素膜,脱脂奶粉封闭1 h,依次加入鼠抗HBsAg单抗(1:1 000稀释,4℃孵育过夜),HRP标记的羊抗鼠IgG二抗(1:2 000稀释,室温1h),TMB显色,拍照记录。
2.1 RNAi表达载体的鉴定 重组质粒经EcoRⅠ和HindⅢ双酶切,产生约3000 bp和290 bp两个片段,空质粒产生3 000 bp和230 bp两个片段(图1),与预期相符,进一步DNA测序证实针对HBV S基因的RNAi表达载体构建成功。
图1 RNAi表达载体的双酶切鉴定
图2 Western blot检测HBsAg表达
2.2 培养上清HBsAg ELISA检测 ELISA检测培养上清HBsAg及抑制率见表2。
表2 培养上清HBsAg ELISA检测
2.3 Western blot检测HBsAg表达 Western blot结果见图2:pSUPER-S1和pSUPER-S2组和对照组pHBV相比较,HBsAg表达均有下降,pSUPER-S1组下降更明显;而pSUPER-Snonsense组HBsAg表达基本无变化。
RNAi的概念于1998年由Fire提出[3],是一种在转录后水平特异地引起基因沉默的现象。RNAi作用具有序列特异性,最终导致同源mRNA的降解,因此RNAi主要被应用于抗HIV、HCV等RNA病毒的研究,并且取得了较为理想的效果。HBV是一个DNA病毒,但其复制过程中存在从前基因组RNA逆转录到DNA的重要环节,研究表明RNAi也可以有效作用于HBV,通过切割前基因组RNA和其他转录本mRNA,从而阻断HBV的表达和复制[6]。
本实验以HBV S基因为靶点,构建了RNAi表达载体pSUPER-S1和pSUPER-S2,对细胞培养上清中HBsAg的抑制率分别为79.0%和43.2%,无关序列RNAi干扰载体未观察到抑制作用,Western blot结果与细胞上清检测相一致,表明针对HBV S基因的RNAi干扰载体能高效并且特异地抑制HBV S基因的表达。pSUPER-S1对靶基因的抑制作用要显著强于pSUPER-S2,可能与干扰位点的选择以及siRNA的靶向偏离作用有关[7],提示pSUPER-S1的对应序列可以作为抗HBV的一个备选靶位。
RNAi的出现为HBV慢性肝炎的治疗提供了新的思路,但要实际应用仍有问题亟待解决:靶位选择,RNAi不能达到对HBV百分之百的抑制,可能需要联用其他治疗手段[8];RNAi如何导入人体器官;最重要的是安全性问题,如何避免脱靶甚至“误伤”的发生[7]。因此,对于RNAi抗HBV的研究,现在仍处于实验阶段,但其作用的高效性和特异性,提示RNAi作为一种高效抗病毒基因疗法的巨大潜能。
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[4]周豪杰,聂咏梅,付涌水,等.乙肝病毒全长基因组真核表达载体构建[J].热带医学杂志,2007,7(11):1071-1072.
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[8]Huang Z,Salazar FH,Xu H,et a1.Inhibition of hepatitis B virus in mice by RNAinterference[J].Nat Biotechnol,2003,21(6):639-644.
Inhibitory efects of vector-based RNAi on S gene expression of hepatitis B virus.
ZHOU Hao-jie,WANG Chuan-xi,TENG Qing,et al.Department of Quality Control,Guangzhou Blood Center,Guangzhou 510095,Guangdong,CHINA
ObjectiveTo construct RNAi expressing vectors targeting HBV S gene and to evaluate the inhibitory effects on HBV replication.MethodsTwo sequences targeting HBV S gene were cloned into pSUPER vector and then were cotransfected with pHBV into HepG2 cells.HBsAg expression was assayed by ELISA and Western blot.ResultsPSUPER-S1 and pSUPER-S2 RNAi expressing vectors were successfully constructed and inhibited HBsAg in HepG2 cells by 79.0%and 43.2%,Whereas irrelevant RNAi expressing vector did not show inhibitory effects on the HBsAg expression.ConclusionVector-based RNAi can inhibit HBV replication effectively and specifically.
Hepatitis B virus;RNAinterference;HBsAg
R373.2+1
A
1003—6350(2010)20—004—03
2010-06-10)
广州市医药卫生科技一般引导项目(编号:2007-YB-137);广东省自然科学基金项目(编号:04000793)
周豪杰(1978—),男,广东省广州市人,主管技师,硕士。
*通讯作者:聂咏梅。E-mail:manieyongmei@yahoo.com.cn