NLRP3炎症小体介导的细胞焦亡在大鼠肺泡II型上皮细胞缺氧/复氧损伤中的作用机制研究*

2021-11-10 09:09周卓琳刘秀洁王新雨王淑远宋正阳田云娜黄丹娜王万铁
中国病理生理杂志 2021年10期
关键词:复氧焦亡培养液

周卓琳, 刘秀洁, 王新雨, 王淑远, 宋正阳, 田云娜,张 赛, 黄丹娜, 王万铁△

(1温州医科大学缺血-再灌注损伤研究所,浙江温州 325035;2温州市人民医院呼吸内科,浙江温州 325035)

缺血再灌注损伤是器官血流中断引起局部缺血,再灌注后组织损伤进一步加重的现象。近些年,肺缺血再灌注损伤(lung ischemia-reperfusion injury,LIRI)已成为肺移植和心脏搭桥等术后常见而严重的并发症[1]。LIRI 的发病机制十分复杂,且目前尚未完全阐明。因此,深入研究LIRI 的发病机制对于寻找减少组织损伤的新疗法具有重要意义。

核苷酸结合寡聚化结构域样受体蛋白3(nucleotide-binding oligomerization domain-like receptor protein 3,NLRP3)炎症小体是一种多蛋白复合物,由NLRP3、含caspase 募集结构域的凋亡相关斑点样蛋白(apoptosis-associated speck-like protein containing a caspase recruitment domain,ASC)和pro-caspase-1 组成,在经典细胞焦亡(pyroptosis)通路中起着重要作用[2]。NLRP3 炎症小体能激活caspase-1,随后,活化的caspase-1 又对gasdermin D(GSDMD)和白细胞介素1β 前体(pro-interleukin-1β,pro-IL-1β)进行切割形成GSDMD-N 和IL-1β,该过程被称为细胞焦亡[3]。适度的细胞焦亡能清除入侵的病原体,维持机体平衡,而过度的细胞焦亡会引起细胞死亡,组织损伤和器官衰竭[4-5]。最近研究表明,NLRP3 炎症小体介导的细胞焦亡,参与了LIRI 的发生发展过程[6],但其具体机制并不清楚。因此,本实验通过建立大鼠肺泡II 型上皮细胞(type II alveolar epithelia cells,AEC II)缺氧/复氧损伤细胞模型,探讨NLRP3 炎症小体介导的细胞焦亡在大鼠AEC II 缺氧/复氧损伤中的作用及其机制。

材 料 和 方 法

1 实验细胞

大鼠AEC II购于上海富衡生物有限公司。

2 主要试剂和仪器

RPMI-1640 培养液购自Gibico;胎牛血清购自ExCell Bio;LPS 购自Sigma;ATP 和MCC950 购自MedChemExpress;CCK-8 试剂盒购自日本同仁;乳酸脱氢酶(lactate dehydrogenase,LDH)试剂盒、caspase-1活性检测试剂盒、抗GAPDH、辣根酶标记山羊抗鼠Ⅱ抗、辣根酶标记山羊抗兔Ⅱ抗和Alexa Fluor 488 标记山羊抗兔Ig G 购于中国碧云天生物技术研究所;抗NLRP3和IL-1β购自Abcam;抗GSDMD抗体购自Santa Cruz Biotechnology;抗NF-κB 抗体购自Cell Signaling Technology;超敏ECL 化学发光试剂盒购自Advansta。

3 主要方法

3.1 细胞培养和实验分组 AEC II 用含12%胎牛血清、1%青、链霉素的RPMI-1640 培养液在37 ℃,5%CO2的培养箱中培养。随机分为4 组:(1)对照(control,Con)组:常氧环境下培养36 h;(2)缺氧/复氧(H/R)组:缺氧培养箱培养6 h 后,复氧培养24 h;(3)NLRP3 炎症小体激动剂(LPS+ATP)组:缺氧前用LPS(100 μg/L)预处理细胞4 h,再用ATP(1 mmol/L)预处理细胞2 h,其余处理同H/R 组;(4)NLRP3 炎症小体抑制剂(MCC950)组:缺氧前用MCC950(10 μmol/L)预处理细胞2 h,其余处理同H/R组。

3.2 H/R 损伤模型的建立 在本实验室前期研究基础上,构建大鼠AEC II的H/R模型[7]。AEC II弃去旧培养液,加入经高纯氮气饱和处理过的无糖无血清培养液作为缺氧液。放入提前设置好参数(1%O2,94%N2,5%CO2,37 ℃)的三气培养箱缺氧孵育6 h。缺氧处理结束后,将缺氧液更换为无血清的RPMI-1640 培养液,置于常氧培养箱中(95% O2,5%CO2,37 ℃)复氧孵育24 h。

3.3 CCK-8 细胞活力和LDH 活性测定 细胞处理结束后,根据说明书每孔加入110 μL 的CCK-8 混合液(CCK8∶RPMI-1640 培养液=1∶10),放入常氧培养箱孵育0.5~2 h,置酶标仪于波长450 nm处的吸光度(A)值。培养液LDH 含量测定,收集各组细胞上清液按照试剂盒说明书操作。

3.4 caspase-1 活性测定 细胞处理结束后,提取各组细胞蛋白,蛋白定量,根据caspase-1活性检测试剂盒说明书加入试剂盒内的试剂,置多功能酶标仪于波长405 nm 处的A值。caspase-1 活性(%)=实验处理组A值/实验对照组A值×100%。

3.5 Western blot 法检测细胞焦亡相关蛋白水平细胞处理结束后,每皿加入RIPA 裂解液(1∶100)500 μL,提取各组细胞蛋白。蛋白定量,凝胶电泳,电转印至PVDF 膜(湿转),5%脱脂牛奶封闭,用兔抗NFκB、NLRP3、IL-1β 和GAPDH 抗体,以及鼠抗GSDMD抗体4 ℃摇床孵育过夜,TBST 洗膜4 次,辣根过氧化物酶标记相应Ⅱ抗孵育1 h。免疫条带ECL 法显示,利用荧光化学发光成像系统进行图像采集,采用Image Lab软件分析条带。

3.6 免疫荧光细胞化学法检测NF-κB 和caspase-1表达水平 将AEC II 接种在6 孔板的细胞爬片上,4%的多聚甲醛固定细胞,0.5% Triton X-100 通透,5%牛蛋白血清(BSA)封闭之后滴加抗NF-κB 和caspase-1 抗体,湿盒4 ℃过夜。次日PBS 洗涤3 次滴加稀释好的Ⅱ抗,湿盒室内孵育1 h(此后都在暗室操作),PBS 洗涤3次滴加含有DAPI的抗荧光淬灭剂封片液封片,置于正置荧光显微镜下采集图像。采用ImageJ软件进行分析。

4 统计学处理

采用SPSS 17.0 统计软件进行数据分析。所有的计量资料均以均数±标准差(Mean±SD)表示。多组样本间的比较应用单因素方差分析(one-way ANOVA),两两比较采用LSD 法。P<0.05 为差异有统计学意义。

结果

1 NLRP3 炎症小体抑制剂MCC950 对缺氧/复氧引起的AEC II损伤的影响

与Con 组相比,H/R、LPS+ATP 和MCC950 三组的细胞活力显著下降(P<0.05),LDH 释放显著增加(P<0.05);与H/R 组相比,LPS+ATP 组的细胞活力显著下降(P<0.05),LDH 释放显著增加(P<0.05),MCC950 组的细胞活力显著升高(P<0.05),LDH 释放显著减少(P<0.05),见图1。

Figure 1. Effects of NLRP3 inflammasome inhibitor MCC950 on the AEC II injury induced by hypoxia/reoxygenation(H/R). A:the viability of AEC II detected by CCK-8 assay;B:the release level of LDH. Mean±SD.n=3.**P<0.05vs control(Con)group;##P<0.05vs H/R group.图1 NLRP3炎症小体抑制剂MCC950对缺氧/复氧引起的AEC II损伤的影响

2 NLRP3 炎症小体抑制剂MCC950 对缺氧/复氧诱导的AEC II中NF-κB和caspase-1表达的影响

与Con 组相比,H/R、LPS+ATP 和MCC950 组细胞中NF-κB 和caspase-1 免疫荧光表达显著增多(P<0.05);与H/R 组相比,LPS+ATP 组细胞中NF-κB 和caspase-1免疫荧光表达显著增加(P<0.05),MCC950组细胞中NF-κB和caspase-1免疫荧光表达显著减少(P<0.05),见图2。

Figure 2. Effects of NLRP3 inflammasome inhibitor MCC950 on the expression of NF-κB(A)and caspase-1(B)in the AEC II induced by hypoxia/reoxygenation(H/R). The scale bar=100 μm. Mean±SD.n=3.**P<0.05vs control(Con)group;##P<0.05vs H/R group.图2 NLRP3炎症小体抑制剂MCC950对缺氧/复氧诱导的AEC II中NF-κB和caspase-1荧光表达的影响

3 NLRP3 炎症小体抑制剂MCC950 对缺氧/复氧诱导的AEC II中caspase-1活性的影响

与Con 组相比,H/R、LPS+ATP 和MCC950 组的caspase-1 活性显著上升(P<0.05);与H/R 组相比,LPS+ATP 组细胞caspase-1 活性显著上升(P<0.05),MCC950 组细胞caspase-1 活性显著下降(P<0.05),见图3。

Figure 3. The effect of NLRP3 inflammasome inhibitor MCC950 on the activity of caspase-1 in the AEC II induced by hypoxia/reoxygenation(H/R). Mean±SD.n=3.**P<0.05vs control(Con)group;##P<0.05vs H/R group.图3 NLRP3 炎症小体抑制剂MCC950 对缺氧/复氧诱导的AEC II中caspase-1活性的影响

4 NLRP3 炎症小体抑制剂MCC950 对缺氧/复氧诱导的AEC II细胞焦亡相关蛋白水平的影响

Western blot检测结果显示,与Con组相比,H/R、LPS+ATP和MCC950组的NLRP3、GSDMD-N和IL-1β的蛋白表达显著增加(P<0.05);与H/R组相比,LPS+ATP 组的NLRP3、GSDMD-N 和IL-1β 的蛋白表达显著增加(P<0.05),MCC950 组的NLRP3、GSDMD-N和IL-1β的蛋白表达显著下降(P<0.05),见图4。

Figure 4. Effects of NLRP3 inflammasome inhibitor MCC950 on the protein expression levels of NLRP3(A),GSDMD-N(B),IL-1β(C)and NF-κB(D)in the AEC II induced by hypoxia/reoxygenation(H/R). Mean±SD.n=3.**P<0.05vs control(Con)group;##P<0.05vs H/R group.图4 NLRP3炎症小体抑制剂MCC950对缺氧/复氧诱导的AEC II中NLRP3、GSDMD-N、IL-1β和NF-κB蛋白表达的影响

讨论

肺缺血/再灌注损伤表现为血管通透性增加,肺水肿,炎症反应。当机体遭受缺血/再灌注(缺氧/复氧)等应激条件时,肺组织的主要效应细胞AEC II会发生损伤性改变,影响肺泡表面活性物质的功能,引起细胞功能紊乱,加重肺组织的损伤[8]。本实验结果显示,与Con组相比,H/R 组的细胞活力显著下降,LDH 含量增加,AEC II 损伤加重,提示H/R 细胞损伤模型成功。

在焦亡信号通路中,NLRP3 通过ASC 与pro-caspase-1 连接形成NLRP3 炎症小体激活casapse-1。生理情况下,caspase-1 以酶原的形式存在。被炎症小体激活后,形成活化的caspase-1。活化的caspase-1切割pro-IL-1β 形成成熟的IL-1β,引起炎症反应。GSDMD-N 是炎症小体活化后诱导细胞焦亡的可靠标志[9]。GSDMD 作为细胞焦亡唯一的底物,经上游活化的casapse-1 切割后形成具有穿孔作用的GSDMD-N 端,致使细胞肿胀、细胞膜溶解,释放细胞内的IL-1β 到细胞外,加大炎症反应,进一步诱导细胞焦亡[10-11]。本研究显示,离体AEC II 细胞经缺氧/复氧、NLRP3 炎症小体激动剂-LPS+ATP 处理后,细胞焦亡相关蛋白NLRP3、GSDMD-N 和IL-1β 水平增加,caspase-1 活力增加和荧光表达增强,初步证实了NLRP3 炎症小体介导的细胞焦亡参与了H/R 引起的AEC II损伤。本研究中预先采用NLRP3炎性小体抑制剂MCC950 处理后,上述焦亡通路中的相关蛋白表达水平均出现下调,表明NLRP3炎症小体抑制剂-MCC950对H/R引起的AEC II损伤具有干预作用。

NF-κB 被认为是控制缺血/再灌注(缺氧/复氧)损伤过程中促炎基因表达的关键转录因子。当发生缺血再灌注(缺氧/复氧)时,NF-κB 激活的促炎因子基因,释放大量促炎因子,进一步加重组织、细胞及器官损伤[12]。研究表明NF-κB作为NLRP3炎性小体的“起始”信号,在NLRP3炎症小体的活化中,发挥着重要的作用[13]。Kuang等[14]表明,NLRP3沉默通过减少NF-κB 抑制剂降解而降低肺纤维化中胶原蛋白合成。另外,Wang 等[15]表明,在非酒精性脂肪肝,NLRP3 炎性小体抑制剂-MCC950 通过抑制NLRP3 炎症小体减少NF-κB 的激活,降低肝脏炎症反应。这些研究表明NF-κB 和NLRP3 炎症小体相互之间有上下游的关系。本实验显示,NLRP3 炎症小体抑制剂-MCC950 可使NF-κB 表达减少,改善细胞焦亡,减轻H/R 引起的AEC II 损伤,其潜在机制可能与其抑制NF-κB有关。

综上所述,H/R 可激活NF-κB 和NLRP3 炎症小体,上调细胞焦亡相关信号传导,加重AEC II 损伤;应用NLRP3 炎症小体抑制剂MCC950 可抑制H/R 引起的AEC II 损伤,其潜在机制可能与其抑制NF-κB有关。本研究采用离体大鼠AEC II,探讨了NLRP3炎症小体介导的细胞焦亡在大鼠AEC II 缺氧/复氧损伤中的作用机制,但仍需进一步从整体动物实验中得到证实。

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