沉默STAT1对肠道病毒71型感染THP-1细胞的初步探讨

2019-08-27 01:44李园园史伟峰许德英
食管疾病 2019年3期
关键词:滴度磷酸化通路

李园园,史伟峰,江 涛,许德英

肠道病毒71型(enterovirus 71,EV71)是引起手足口病最主要的病原体之一,除引起手足口病外,还能导致严重的中枢神经系统并发症,已居丙类传染病的首位,且呈上升趋势,死亡率高。我国研制的首批EV71疫苗已于2016年上市,为控制暴发和流行提供了有效手段[1]。然而,针对EV71的治疗仍以对症治疗为主,目前尚无理想有效的抗病毒药物。蛋白酪氨酸激酶和信号转导与转录激活因子(janus kinase/signal transducers and activators of transcription,JAK/STAT)信号通路是机体固有免疫反应的必要条件,与病毒性疾病的发生密切相关[2-5]。已有报道,EV71感染人横纹肌肉瘤细胞(rhabdomyosarcoma,RD)和THP-1细胞,JAK/STAT信号通路的反应不同[6]。本研究拟在分析EV71感染THP-1细胞后,STAT1、ISGs的表达及沉默STAT1对ISGs转录、EV71/VP1复制的影响,探讨STAT1在EV71感染中的作用和相关机制,为EV71的治疗寻找新的靶点提供依据。现报道如下。

1 材料与方法

1.1 材料人单核巨噬细胞(THP-1)和293T细胞由中国科学院上海生命科学研究院细胞资源中心提供。STAT1、p-STAT1(signalway antibody);HRP标记的二抗(Santa Cruz公司);GAPDH和相应HRP标记的二抗(ProteinTech公司);β-action、Anti-Enterovirus 71 VP1 antibody和相应HRP标记的二抗(Abcam公司); Trizol试剂(Invitrogen公司),逆转录和实时荧光定量PCR试剂盒(TaKaRa公司);ABI7500实时荧光定量PCR仪(美国ABI公司)。

1.2 方法

1.2.1 细胞培养THP-1细胞用含10%FBS的RPMI-1640培养基为基础培养基,于37 ℃5% CO2培养箱中培养,THP-1细胞密度达到5×106时采用半定量换液或离心换液传代培养,细胞密度不能超过1×107。293T细胞以含10%FBS的DMEM培养基为基础培养液,每2~3 d传代1次,传代时弃掉培养基,用0.25%胰酶消化细胞,于37 ℃5% CO2培养箱中培养,取对数生长期的细胞进行试验。

1.2.2 shRNA慢病毒的包装、浓缩与病毒滴度测定293T细胞密度约70%~80%时采用磷酸钙法包装慢病毒,转染前4 h对细胞进行换液,辅助质粒pSpAX2 3.2 μg 、PMD-2G 1.8 μg和包装质粒shSTAT1 5 μg加入超纯水至450 μL,混合均匀。将CaCl250 μL加入至含有质粒的离心管中。将质粒—CaCl2混合物加入至含有500 μL 2×HBS的离心管中,混匀后缓慢滴入培养皿中,转染后16 h换液,48 h、72 h后收获上清液,12 000 r·min-1离心5 min,用0.45 μm滤膜过滤,去掉细胞碎片沉渣。为了提高慢病毒的滴度,采用4 ℃超速离心机20 000 r·min-1离心90 min将慢病毒浓缩。采用流式细胞仪法测定病毒滴度,利用载体共表达的绿色荧光蛋白表达(GFP)在流式仪上进行分析,计算表达荧光细胞的比例。病毒滴度的计算公式为:TU/mL=细胞数(以铺时计,1×105)×荧光表达比例×103/慢病毒的体积(μL)。按照使用量分装至EP管中置于-80 ℃保存。

1.2.3 重组shRNA慢病毒转染THP-1细胞接种处于生长对数期的THP-1细胞到12孔细胞培养板,每孔1 mL细胞密度为2×105·mL-1。设对照组和干扰组。根据细胞数量和制备的空载体病毒及干扰载体病毒滴度,以不同感染复数感染THP-1细胞,同时加入8 μg·mL-1的多聚凝胺(polybrene),同时感染4个复孔。感染24 h后离心换液,将4个复孔的细胞至6孔板内,每孔加入1 mL RPMI1640+10%FBS培养基,置37 ℃5%CO2继续培养。感染后72 h,提取总RNA和蛋白。

1.2.4 qRT-PCR采用TRizol法裂解细胞并提取总RNA。按照逆转录试剂盒(TaKaRa)说明书将RNA逆转录成cDNA,用于荧光定量PCR。相关引物序列见表1。独立重复试验3次,每次每个样本每个基因作3个复孔,采用经典的2-ΔCt计算相对表达量,ΔCt =(Ct目的基因-Ct内参基因)实验-(Ct目的基因-Ct内参基因)对照。

表1 引物序列

1.2.5 western blot收集对照组(0 h)和各实验组2、4、8、12、16和24 h的细胞,0 h未感染EV71,实验组EV71(MOI=5)感染细胞2、4、8、12、16和24 h,离心收集细胞,加入含PMSF的IP细胞裂解液,冰上裂解40 min,12 000 r·min-1,离心5 min,收集上清,采用BCA法测定总蛋白浓度。以每孔40 μg的蛋白量加样至10% SDS-PAGE凝胶电泳分离蛋白质,再将胶中的蛋白通过电转移槽转印至PVDF膜上。经含5%脱脂奶粉的TBST缓冲液室温封闭2 h,1∶1 000稀释加入一抗,4 ℃孵育过夜。TBST振荡洗膜后加入HRP标记的二抗,室温孵育1 h。TBST洗膜后采用ECL发光液进行化学发光反应,暗室曝光,显影。

2 结果

2.1 EV71激活IFN-β和ISGs的转录EV71(MOI=1和MOI=5)感染THP-1细胞后8 h、24 h,细胞内IFN-β mRNA的表达量均上调,与对照组(未感染EV71)相比,差异有统计学意义(P<0.05)(图1A和图1B)。与对照组(未感染EV71)相比,EV71感染8 h时,MXA、OAS1、ISG56这3种ISGs mRNA的相对表达量分别上调了约11.6、11.2和17.3倍,且这种上调具有统计学意义(P<0.05);EV71感染24 h时,MXA、OAS1、ISG56这3种ISGs的表达量与8 h相比分别下降了4.4、4.6和9倍,具有统计学意义(P<0.05),而当EV71以MOI=5感染细胞8 h时,ISG15的表达量明显上调(P<0.05)(图1C和图1D)。

图1 EV71激活IFN-β和ISGs的转录

2.2 EV71感染促进STAT1的磷酸化EV71(MOI=5)感染 THP-1细胞,随着病毒感染时间的延长(2、4、8、12、16和24 h),STAT1和p-STAT1的表达量呈依次增加趋势,具有时间依赖性,与未感染EV71组相比,STAT1和p-STAT1的蛋白水平均明显提高,见图2。

2.3 特异性靶向STAT1的shRNA对THP-1细胞中STAT1蛋白表达的抑制作用采用特异性靶向STAT1的shRNA包装慢病毒,感染THP-1细胞,48 h后,提取细胞总蛋白,Western blot印迹检测STAT1蛋白水平。结果显示:与对照组相比, shSTAT1-256能显著抑制STAT1蛋白表达水平,见图3。因此选取shSTAT1-256用于后续实验。

2.4 沉默STAT1基因对ISGs及EV71/VP1表达的影响慢病毒感染THP-1细胞并加入8 μg·mL-1的polybrene,增加干扰效率,得到THP-1-shRNA-STAT1和THP-1-shRNA-CON077细胞系,72 h后,Western blot结果显示:与对照组相比,shRNA-STAT1感染的THP-1细胞组STAT1蛋白水平明显降低(图4A)。慢病毒shRNA-STAT1感染的THP-1细胞,经EV71感染24 h时,与对照组相比,STAT1、p-STAT1和VP1的蛋白表达量下降(图4B),MXA、OAS1、ISG56的mRNA表达量均下调(P<0.05),VP1mRNA的表达量也下调(图4C)。

图2 EV71感染激活了STAT1的磷酸化

图3 2种shRNA对STAT1蛋白干扰效率的影响

A:shRNA-STAT1感染后;B:经EV71感染24 h后;C:EV71感染24 h后mRNA表达。图4 沉默STAT1基因对ISGs及EV71/VP1表达的影响

3 讨论

手足口病感染具有全球性,我国每年均有发生,发病率约为37.01/10万~205.06/10万,死亡率约为6.46/10万~51.00/10万,严重危害儿童健康,但是其致病机制仍在进一步研究。在病原微生物感染早期,固有免疫反应通过识别人类清道夫受体和P-选择素糖蛋白配体-1等,激活一系列信号通路,对病毒的抑制和清除发挥重要作用[8]。

STAT1是STAT家族中最早发现的成员,具有广泛的生物学作用,抑制肿瘤生长、促进肿瘤细胞的凋亡、参与固有免疫反应等。病毒感染机体时,促进STAT1的活化发挥抗病毒作用,已有报道新城疫病毒的V蛋白、埃博拉病毒的VP24蛋白作用于STAT1磷酸化修饰在干扰素信号通路中发挥作用[9],而STAT1乙酰化、泛素化、甲基化等不同修饰影响干扰素抑制乙肝病毒复制的作用[10]。研究发现戊型肝炎病毒(hepatitis E virus,HEV)的氨基末端区域可以抑制STAT1的转录和磷酸化调控干扰素反应[11],而有体外实验表明,STAT1缺乏时细胞不能应答IFN-α和IFN-β的刺激,对病原微生物极其敏感。THP-1细胞是人体的单核巨噬细胞,具有免疫效应,在STAT-1缺乏的THP-1内,对EV71感染的机制还不明确,本研究采用慢病毒介导的shRNA干扰技术,沉默THP-1细胞的STAT1,探讨EV71感染沉默STAT1的THP-1细胞,干扰素刺激基因的变化及对病毒复制的影响。

采用EV71(MOI=1和MOI=5)感染THP-1细胞,PCR结果(图1)显示ISGs和IFN-β的表达量上调,Western blot结果(图2)表明STAT1和STAT1磷酸化水平上调,这些结果提示EV71促使THP-1细胞内STAT1入核,激活ISGs和IFN-β的表达,与报道的EV71感染的vero细胞内IFN-β产生被抑制不同,不同的细胞对EV71感染反应不同[2]。由于THP-1细胞是悬浮细胞,传统的RNAi技术干扰效率低,因此本研究设计shRNA-STAT1,磷酸钙法包装慢病毒,经超速离心法浓缩后,流式细胞仪测定慢病毒滴度。慢病毒感染THP-1细胞24 h后,与对照组相比,STAT1表达下调(图3A)。EV71感染24 h后,STAT1、p-STAT1、VP1和ISGs mRNA表达量下降(图3B、图3C)。本研究表明干扰THP-1细胞内STAT1, EV71感染抑制STAT1的入核、转录,且STAT1缺乏使EV71复制降低,这与已报道的STAT1缺乏,对EV71的易感性增加不同[12],猜测原因可能为THP-1细胞是免疫细胞有关,也有可能其他分子、信号通路参与其中,此信号通路并不是抑制EV71感染的最有效通路。研究表明AKT/IRF3信号通路产生的Ⅰ型干扰素及抗病毒基因成为水性口炎病毒、新城疫病毒和单纯疱疹病毒等病毒性疾病的潜在治疗角色[3],许多信号通路被报道参与抑制EV71的复制如:RLR信号通路中USP4蛋白的泛素化[13]、p38MA PK信号通路[14]、NF-KB信号通路[15]、TOLL样受体3等[16]。而JAK/STAT信号通路在EV71感染中的具体详细分子机制、信号通路有待进一步研究。

EV71病毒基因的变异性使手足口病的防控形势更加严峻,应用RNAi技术阻断STAT1入核,有望为EV71的治疗提供新的途径。

猜你喜欢
滴度磷酸化通路
不同富集培养方法对噬菌体PEf771的滴度影响
T69E模拟磷酸化修饰对Bcl-2与Nur77相互作用的影响
重组腺相关病毒基因药物三种滴度的比较与分析
ITSN1蛋白磷酸化的研究进展
磷酸化肽富集新方法研究进展
抗中性粒细胞胞质抗体相关小血管炎患者抗体滴度与其临床特点及预后的相关性研究
Kisspeptin/GPR54信号通路促使性早熟形成的作用观察
MAPK抑制因子对HSC中Smad2/3磷酸化及Smad4核转位的影响
proBDNF-p75NTR通路抑制C6细胞增殖
HGF/c—Met信号转导通路在结直肠癌肝转移中的作用