eEF2K对MDA-MB-231细胞增殖的影响与初步机制研究

肖 敏，王根柱，戚 欣，李 静

(中国海洋大学医药学院分子药理室，山东 青岛 266000)

真核延伸因子2激酶(eukaryotic elongation factor 2 kinase，eEF2K)又称钙调蛋白依赖性激酶Ⅲ(CaM kinase Ⅲ)，是1985年由Nairn等[1]从哺乳动物中首次发现的，属于“α-激酶”家族。eEF2K共由724个氨基酸组成，分子质量约81 499 u。已有研究发现，当细胞面临一定的应激压力时，eEF2K能够磷酸化其细胞内唯一底物蛋白eEF2，抑制蛋白质合成过程中肽链延伸阶段，降低细胞中氨基酸和能量的消耗，使细胞能够在代谢压力下得以存活[2-3]。近年研究发现，eEF2K在一些肿瘤细胞中的表达和活性会影响肿瘤细胞的增殖、迁移、侵袭等生理进程[3-6]，但在不同的肿瘤细胞中，eEF2K表现出不同作用。已有文献报道[3, 5-7]，在人成骨肉瘤细胞、胶质瘤细胞、乳腺癌细胞中，抑制eEF2K能够提高肿瘤细胞对贫营养状态的敏感性，导致细胞死亡；而在结肠癌、宫颈癌以及肝癌细胞中，贫营养状态下抑制eEF2K则能够增强细胞对贫营养条件的耐受，从而存活下来。

MDA-MB-231细胞为三阴性乳腺癌细胞，具有强侵袭性和高转移性，临床预后不良。由于缺乏治疗靶点，临床对于三阴性乳腺癌的治疗仍是一大难题。为了进一步揭示eEF2K在三阴性乳腺癌细胞中的作用，本文观察了eEF2K在不同培养条件下，对肿瘤细胞MDA-MB-231生长的影响，并初步探讨作用机制，为阐明eEF2K在三阴性乳腺癌中的作用以及开发新的治疗靶点奠定基础。

1 材料与方法

1.1试剂与仪器L-15培养基(杭州吉诺)；eEF2K shRNA(h) Lentiviral Particles和Control shRNA Lentiviral Particles (Santa Cruz)；eEF2、eEF2K、Akt、ERK、Src、mTOR、JAK、PI3K及其磷酸化抗体(Cell Signaling Technology)；β-actin 抗体、羊抗兔二抗、羊抗小鼠二抗(杭州华安)；ECL化学发光液(Thermo Fisher)；吉姆萨染液(北京雷根生物)。Epoch2 酶标仪、Protein Simple成像系统(Bio-tek公司)；Life拍照显微镜(Life Technology公司)。

1.2稳定转染细胞株的构建MDA-MB-231细胞购自中科院上海细胞库。MDA-MB-231细胞于L-15(含15%胎牛血清和1%青链霉素)培养基中，置于37℃、无二氧化碳条件下培养。待细胞密度达到80%以上时，胰酶消化并接种于24孔板中。 48 h后，各孔分别加入不同浓度的嘌呤霉素(0、0.5、1、1.5、2、2.5、3、4、5 mg·L-1)，筛选出能够杀死所有细胞的嘌呤霉素的最低浓度。同样条件接种细胞于24孔板，分别加入eEF2K shRNA (h) Lentiviral Particles和Control shRNA Lentiviral Particles，感染细胞24 h，加入嘌呤霉素筛选，获得稳定抑制eEF2K表达的MDA-MB-231细胞稳转株和空载体稳转株，分别记作MDA-MB-231 sheEF2K和MDA-MB-231 shNC细胞。

1.3SRB法测定细胞增殖曲线MDA-MB-231、MDA-MB-231 shNC和MDA-MB-231 sheEF2K 3种细胞于L-15(含15%血清和1%青链霉素)培养基中，置于37℃、无二氧化碳条件下培养。待细胞密度达到80%以上时，胰酶消化，并以3 000个/孔接种于96孔板中。贴壁后，更换完全培养基。以MDA-MB-231细胞倍增时间大约为23 h为参考，设置时间梯度，分别培养0、12、24、48、72、96 h后，采用SRB法，于515 nm处测定各孔吸光度值，并绘制细胞增殖曲线。同样方法测定3种细胞在无糖和无血清培养条件下的增殖曲线。

1.4平板克隆检测细胞克隆形成能力将MDA-MB-231、MDA-MB-231 shNC和 MDA-MB-231 sheEF2K 3种细胞于L-15 (含15%血清和1%青链霉素)培养基中，置于 37℃、无二氧化碳条件下培养。待细胞密度达到80%以上时，胰酶消化，并以500个/孔接种于6孔板中。37℃、无二氧化碳条件下培养15 d。弃去培养液，甲醇固定细胞3 min，晾干。吉姆萨染液染色15 min，流水洗去浮色，晾干，拍照。显微镜下计数超过50个细胞的克隆数。

1.5Westernblot检测相关信号分子表达将MDA-MB-231、MDA-MB-231 shNC和 MDA-MB-231 sheEF2K 3种细胞于L-15(含15%血清和1%青链霉素)培养基中，置于37℃、无二氧化碳条件下培养。待细胞密度达到80%以上时，胰酶消化并以2×105个/孔接种于6孔板中。待细胞密度生长至80% 左右时，弃去培养基，RIPA裂解液裂解40 min后收样，加上样buffer煮沸15 min，保存于-20℃。配制8%的SDS-PAGE凝胶，上样电泳分离后，转印至NC膜上。5%的脱脂牛奶封闭2 h，4℃孵育一抗过夜。TBST洗4次，室温孵育二抗1 h，ECL发光检测3种细胞中相关信号分子(Akt、ERK、Src、mTOR等)的表达和活化情况。每组实验重复3次。

2 结果

2.1eEF2K抑制的稳定细胞株构建慢病毒颗粒感染细胞24 h后，加入嘌呤霉素筛选。取出部分细胞，Western blot检测eEF2K的抑制效率。结果表明，与对照组细胞MDA-MB-231 shNC相比，MDA-MB-231 sheEF2K细胞中eEF2K的表达明显下降，抑制效率可达71.76%(Fig 1A、1C)。并且eEF2K抑制后，细胞中eEF2K活性也降低，eEF2磷酸化明显减少(Fig 1B、1D)。此外，与野生细胞MDA-MB-231相比，MDA-MB-231 shNC细胞中eEF2K的表达无明显变化，表明空载体自身没有影响eEF2K的表达。上述结果表明成功构建了eEF2K低表达的稳转细胞株，可以用于后续实验。

Fig 1 Different MDA-MB-231 cells constructed with

2.2抑制eEF2K后对不同培养条件下MDA-MB-231细胞增殖的影响将MDA-MB-231细胞及构建的两种稳定转染细胞株接种于96孔板，SRB法分别测定3种细胞在完全、无糖和无血清培养条件下的增殖曲线。结果发现，与完全培养条件下MDA-MB-231细胞相比，在无糖和无血清的培养条件下，MDA-MB-231细胞增殖速度明显降低。但在无糖和无血清的培养条件下，相对于MDA-MB-231 shNC细胞，eEF2K明显抑制的MDA-MB-231 sheEF2K细胞仍表现出较快增殖，在72 h增殖率为分别31.08%和25.63%(Fig 2A、2B)。Western blot检测MDA-MB-231细胞中 eEF2K的活性，发现在上述贫营养状态下，MDA-MB-231细胞中eEF2磷酸化水平明显升高，表明该条件下eEF2K被激活(Fig 2C、2D)。上述结果表明，贫营养条件下，eEF2K抑制能够促进乳腺癌细胞生长。

在完全培养条件下，与MDA-MB-231 shNC细胞相比，eEF2K明显抑制的MDA-MB-231 sheEF2K细胞增殖却被抑制(Fig 3A)，并具有时间依赖性，96 h最高抑制率达33.02%。同样，平板克隆实验结果发现，抑制eEF2K表达的 MDA-MB-231 sheEF2K细胞株形成的克隆数明显少于其对照细胞，抑制率为22.48%(Fig 3B)。上述结果表明，在完全培养基培养条件下，eEF2K抑制降低了乳腺癌细胞的增殖能力。

2.3抑制eEF2K后对肿瘤细胞相关增殖信号通路活化的影响Western blot法检测MDA-MB-231细胞及构建的MDA-MB-231 shNC细胞、MDA-MB-231 sheEF2K细胞在完全培养条件下，增殖相关蛋白的表达与活化。灰度分析结果发现，MDA-MB-231 sheEF2K细胞中Akt和mTOR蛋白的磷酸化水平明显降低，其上游分子PI3K活性几乎不受影响(Fig 4A、4C)。而其他增殖相关蛋白如 Src、ERK、JAK磷酸化水平相比于自身蛋白表达均未见明显减少(Fig 4B、4D)。表明在MDA-MB-231细胞中，完全培养条件下，eEF2K减少引起的细胞增殖抑制可能与 Akt-mTOR信号通路活化降低有关。

3 讨论

据文献报道，贫营养状态下，eEF2K激活，导致其下游底物eEF2磷酸化，降低eEF2与核糖体结合的能力，抑制翻译延伸，减少氨基酸和能量的消耗，维持细胞生存[2-4, 8-9]。本实验发现，与完全培养条件相比，贫营养状态下的MDA-MB-231细胞增殖速度明显降低。Western blot结果也表明，贫营养条件下，eEF2K被激活，表明蛋白合成被抑制，细胞增殖速度维持在较低水平。该现象与文献报道一致。相同的道理，在贫营养情况下，eEF2K抑制的MDA-MB-231 sheEF2K细胞增殖速度明显高于对照组细胞MDA-MB-231 shNC，且在72 h时最为明显。表明eEF2K被抑制后，其蛋白合成抑制作用消失，细胞仍能继续增殖，即抑制eEF2K能够降低肿瘤细胞对贫营养状态的敏感性，该现象也与文献报道一致[5]。而在完全培养条件下，利用SRB方法观察细胞增殖情况时，我们发现，与对照组MDA-MB-231 shNC相比，MDA-MB-231 sheEF2K增殖速度明显被抑制。进一步应用平板克隆实验也发现，抑制eEF2K的表达也明显抑制了MDA-MB-231 shNC细胞的克隆形成。上述实验均没有观察到野生的MDA-MB-231细胞与MDA-MB-231 shNC细胞具有明显差别。这些研究表明，抑制eEF2K的表达，对不同细胞培养条件下细胞的生长具有不同的影响。

Fig 2 Effect of eEF2K inhibition on cell growth of different MDA-MB-231 cells in different media

Fig 3 Effect of eEF2K inhibition on cell growthof different MDA-MB-231 cells

为此，我们进一步对完全培养条件下的3种细胞中增殖相关信号通路进行了检测。细胞中增殖相关信号通路主要有3条：RPTK-Ras-MAPK信号通路、JAK-STAT信号通路和PI3K-Akt-mTOR信号通路[10-13]。我们采用Western blot方法检测了上述信号通路中的相关分子，结果发现，与MDA-MB-231细胞和MDA-MB-231 shNC细胞相比，MDA-MB-231 sheEF2K细胞中Akt和mTOR的磷酸化水平明显降低，而上游分子PI3K活化无明显变化，其他分子如 Src、ERK、JAK磷酸化水平也均未明显变化，提示eEF2K抑制后，对MDA-MB-231的增殖抑制作用可能与Akt-mTOR信号通路活性下降有关，且与上游分子PI3K无关。

Fig 4 Effect of eEF2K inhibition on protein expression andactivation of different MDA-MB-231

eEF2K作为翻译延伸因子激酶可以磷酸化eEF2，抑制蛋白的翻译延伸。本研究发现，不同培养条件下，eEF2K对细胞生长影响明显不同。特别是发现完全培养条件下，eEF2K抑制后抑制了MDA-MB-231的增殖，并且与Akt-mTOR信号通路活化下降有关，提示eEF2K除了具有翻译延伸因子激酶的作用以外，可能还存在着其它的功能，可能是三阴性乳腺癌细胞治疗的新靶点，值得今后进一步研究。

(致谢：本实验是在中国海洋大学医药学院分子药理室完成的，感谢澳大利亚南澳洲健康医疗研究所Christopher G Proud 教授和王学敏老师提供的质粒。)