王亚光,邵巧巧,孙冰冰,张耀红,管越强
(1.河北大学 生命科学学院,河北 保定 071002;2.保定水产技术推广站,河北 保定 071051)
中华鳖tyrp-1基因的生物信息学分析
王亚光1,邵巧巧1,孙冰冰1,张耀红2,管越强1
(1.河北大学 生命科学学院,河北 保定 071002;2.保定水产技术推广站,河北 保定 071051)
为阐明中华鳖酪氨酸酶相关蛋白1(TYRP-1)基因tyrp-1 及蛋白质结构与性质,利用相关软件、数据库和方法对其进行了生物信息学分析.结果显示,基因转录本全长为2 829 bp,编码535个aa. 预测TYRP-1蛋白分子质量为60.16 ku,理论等电点为5.35,为不稳定蛋白;N端含有信号肽,与信号识别蛋白结合后,促进其穿越内质网膜进入内质网腔;C端含有跨膜结构域,锚定于细胞膜上,发挥重要的生物学功能;TYRP-1蛋白含有2个铜离子结合结构域,与DCT蛋白有明显的相互作用.
中华鳖;tyrp-1基因;生物信息学
酪氨酸酶相关蛋白1(TYRP-1)基因tyrp-1是第1个被成功克隆的色素基因,是酪氨酸酶基因家族中的重要组成部分.酪氨酸酶相关蛋白1(EC:1.14.18.-)是黑色素合成途径中重要的酶,具有二羟基吲哚酸氧化酶的活性,可以催化5,6-二羟基吲哚羧酸(5,6-dihydroxyindole-2-carboxylic acid, DHICA)氧化生成5,6-吲哚醌羧酸(indole-5,6-quinone-2-carboxylic acid)[1]. Zhao等[2]利用含有tyrp-1基因的逆转录载体转染人体TYRP-1蛋白缺陷的黑色素细胞,证明了外源的tyrp-1基因可以提高酪氨酸酶的活性. 因此,在维持酪氨酸酶的稳定性和调节催化活性中发挥了重要作用[3]. TYRP-1还在黑色素合成的下游途径中影响黑色素小体的成熟、黑色素瘤细胞的增殖和凋亡[4]. TYRP-1蛋白活性高低可影响真黑色素与伪黑色素合成转换,活性高时将生成真黑色素,活性降低时则生成伪黑色素[5].
中华鳖(Pelodiscussinensis),隶属于爬行纲(Reptilia)龟鳖目(Testudoformes)鳖科(Trionychidae)鳖属(Pelodiscus)[6],是中国重要的水产养殖品种,在南北方均有分布. 中华鳖体型椭圆,背部灰黑色带有花纹,腹部为白玉色. 近年来河北省保定市水产技术推广站、河北大学和保定市阜平县中华鳖养殖场等多家单位合作,通过人工选择育种技术繁育出体色金黄色的中华鳖,俗称“黄金鳖”. 通过对其裙边转录组数据进行分析,发现黄金鳖tyrp-1基因出现显著下调现象,该基因含有8个SNP位点,其中2个SNP位点分别位于第6和第8外显子上(数据未发表).
生物信息学是一门涵盖了计算机、数学、信息科学、生物学及统计学等多门学科的新型交叉学科[7],通过对基因水平和蛋白水平的研究,来揭示基因、蛋白质的结构与功能、发育与疾病的关系[8]. 本文通过对中华鳖tyrp-1基因和TYRP-1蛋白质的生物信息学分析,探索黄金鳖体色的成因,为今后开展tyrp-1基因研究提供理论依据,同时也为中华鳖的遗传育种提供参考.
1.1 数据来源
中华鳖基因组序列来源于Ensembl(http://asia.ensembl.org/index.html)数据库,不同物种蛋白氨基酸序列来源于NCBI(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/)数据库.
1.2 方法
中华鳖tyrp-1基因的生物信息学分析包括基因序列分析、二级结构预测、三级结构预测、蛋白质的理化性质分析、亲/疏水性质分析、信号肽分析、跨膜结构域分析、铜离子结合结构域预测、相互作用蛋白分析等,所用数据库及软件见表1.
利用DNAMAN软件将中华鳖TYRP-1氨基酸序列与爬行纲(Reptilia)以及两栖纲(Amphibian)的其他物种进行比对,再利用Mega软件的邻接法构建系统进化树,通过重抽样检验拓扑树的各分节点,重复次数设置为1 000,并用bootstrap值估计各节点的支持率[9-10].
2.1 中华鳖tyrp-1基因的特征分析
中华鳖tyrp-1基因(转录本ID为ENSPSIG00000012375),位于JH207295.1负链的2 690 705~2 707 180 bp,基因组全长为16.5 kb,含有8个外显子,转录本全长为2 829 bp,编码535个aa(来源于Ensembl数据库).
2.2 中华鳖TYRP-1蛋白二级结构与铜离子结构域预测
通过NCBI数据库获得了中华鳖TYRP-1的氨基酸序列,利用Scratch protein predictor软件进行蛋白质二级结构的预测,结果显示,中华鳖tyrp-1基因共编码了535个aa,其中α-螺旋构象占29.1%,无规卷曲构象占64.9%,β-折叠构象占6.0%,无规卷曲构象所占比重较大,β-折叠构象所占比重最小. 利用Prosite软件对中华鳖TYRP-1蛋白进行铜离子结构域的预测. 可以看出:TYRP-1结构域与酪氨酸家族蛋白相似,包含有2个铜离子结合结构域,分别位于213~230位(氨基酸序列为HEGPAFLTWHRYHLLQLE)、395~406位(氨基酸序列为DPIFVFLHTFTD).
2.3 中华鳖TYRP-1蛋白三级结构和磷酸位点预测
Phyre2软件是通过折叠识别建模的方式进行蛋白质三级结构分析,为此本文利用该软件对中华鳖TYRP-1的三级结构进行预测(图1). 依据NetPhos 3.1软件分析可以得出:TYRP-1蛋白可能包含有49个磷酸化位点,位于丝氨酸残基上的有22个,位于苏氨酸残基上的有19个,位于酪氨酸残基上的有8个.
图1 中华鳖TYRP-1三级结构预测Fig.1 Tertiary structure prediction of TYRP-1 of Pelodiscus sinensis
2.4 中华鳖TYRP-1蛋白的基本性质分析
对中华鳖TYRP-1蛋白的理化性质、亲/疏水性、跨膜结构等基本特征进行预测,该分子质量约为60.16 ku,理论等电点为5.35,正电荷氨基酸残基数(Asp+Glu)为58,负电荷氨基酸残基数(Arg+Lys)为39,共含有8 280个原子,分子式为 C2668H4042N744O801S25.不稳定指数为49.75(>40表示该蛋白为不稳定蛋白),说明该蛋白是不稳定蛋白.
根据Protscale软件预测中华鳖TYRP-1蛋白疏水性:位于第485位亲/疏水性分值最高,表明C端含有1个强的疏水区域;位于第81位的分值最低,表明N端含有1个强的亲水区域(图2). 结合ProtParam软件预测可知:中华鳖TYRP-1蛋白总平均亲水性为 -0.331,为疏水性蛋白.
图2 中华鳖TYRP-1蛋白亲水性预测Fig.2 Hydrophobicity profile prediction of TYRP-1 of Pelodiscus sinensis
2.5 中华鳖TYRP-1蛋白信号肽、亚细胞定位预测
利用SignalP-3.0软件的神经网络模型对中华鳖TYRP-1进行分析,第23位数值最大为0.911,该位点可能是信号肽的剪切位点,推测该蛋白存在信号肽,是分泌蛋白,信号肽剪切位点位于第22个和第23个aa位点之间. 利用隐马尔可夫模型同样预测出TYRP-1存在信号肽,预测的剪切位点位置与上述模型相同,存在可能性高达0.993,与神经网络模型预测结果相吻合. 上述2种信号肽预测模型结果相同,证实中华鳖TYRP-1存在信号肽,是一种分泌蛋白.
2.6 中华鳖TYRP-1蛋白跨膜结构预测
中华鳖TYRP-1蛋白第1~476位氨基酸位于细胞膜外,第477~499位氨基酸为跨膜结构域,第500~535位氨基酸位于细胞膜内,表明该蛋白定位于细胞膜(图3).
1.表示该段氨基酸序列位于细胞膜外;2.表示该段氨基酸序列为跨膜结构;3.表示该段氨基酸序列位于细胞膜内.图3 中华鳖TYRP-1蛋白的跨膜结构预测Fig.3 Transmembrane region prediction of TYRP-1 of Pelodiscus sinensis
2.7 中华鳖TYRP-1蛋白相互作用
利用String软件预测了与中华鳖TYRP-1相互作用的蛋白质,搜索条件限制在10个蛋白质,其中与酪氨酸酶相关蛋白2(DCT)的关系最密切(图4).
图4 中华鳖TYRP-1蛋白相互作用预测Fig.4 Protein-protein interactions prediction of TYRP-1 of Pelodiscus sinensis
2.8 中华鳖TYRP-1蛋白系统进化树分析
根据中华鳖及相关两栖、爬行动物TYRP-1序列,利用Mega软件的邻接法构建了系统进化树. 结果显示,两栖纲(Amphibian)的物种聚为一大支,爬行纲(Reptilia)的物种聚为一大支. 具体而言,中华鳖(P.sinensis)、绿海龟(Cheloniamydas)与锦龟(Chrysemyspicta)亲缘关系近,均为龟鳖目(Testudines),在系统进化树中聚为一支;美洲短吻鳄(Alligatormississippiensis)和扬子鳄(Alligatorsinensis)均属于鳄形目(Crocodylia)鳄科(Crocodylidae)短吻鳄属(Alligator),在进化树中聚为一支;北美绿蜥蜴(Anoliscarolinensis)和多疣壁虎(Gekkojaponicus)均属于蜥蜴目(Lacertiformes),在进化树中聚为一支;普通束带蛇(Thamnophissirtalis)、原矛头蝮(Protobothropsmucrosquamatus)和缅甸蟒(Pythonbivittatus)均属于有鳞目(Squamata),在进化树中聚为一支;大钝口螈(Ambystomamexicanum)和热带爪蟾(Xenopustropicalis)属于两栖纲(Amphibian)有尾目(Caudata),在系统进化树中聚为一支(图5).
图5 中华鳖TYRP-1蛋白的系统进化树Fig.5 Phylogenetic tree of TYRP-1 of Pelodiscus sinensis
中华鳖tyrp-1基因是酪氨酸酶基因家族中的重要组成部分.本文利用生物信息学相关软件,对中华鳖tyrp-1基因的结构、性质和功能进行预测:中华鳖tyrp-1基因含有8个外显子,转录本全长为2 829 bp,编码535个aa,该蛋白的分子质量为60.16 ku,理论等电点为5.35,不稳定指数为49.75,是不稳定蛋白.
中华鳖TYRP-1蛋白是黑色素合成途径中重要的酶. 在N端含有1个信号肽,剪切位点位于第22和第23个氨基酸之间;C端的第477~499位的氨基酸是跨膜结构域. 这与张静等[11]研究鹅TYRP-1蛋白含有1个信号肽序列和1个跨膜结构域的结果相似. TYRP-1是一种分泌蛋白和膜糖蛋白,首先在细胞质内质网的核糖体上合成,经由内质网膜上的异位子改变其内腔结构,利用内质网伴侣蛋白以及相关酶进行折叠和装配,而后到达高尔基体,经过内体,最后转运到黑色素体膜上,并在黑色素体中发挥酶学催化作用[12-13].
中华鳖酪氨酸酶家族含有共同的结构域——铜离子结合结构域,在TYRP-1蛋白中共有2段,铜离子A结合位点位于213~230位(氨基酸序列为HEGPAFLTWHRYHLLQLE),符合H-x(4,5)-F-[LIVMFTP]-x-[FW]-H-R-x(2)-[LVMT]-x(3)-E铜离子A结合位点通用公式,铜离子B结合位点位于395~406位(氨基酸序列为DPIFVFLHTFTD),符合铜离子B结合位点通用公式:D-P-x-F-[LIVMFYW]-x(2)-H-x(3)-D. 酪氨酸酶家族铜离子结合结构域中,每一个铜离子都会受到3个保守的组氨酸残基的调控[14]. 铜离子与组氨酸配基结合,氧分子以过氧化物的形式与铜离子结合,行使二羟基吲哚酸氧化酶的功能,完成催化氧化反应.
在黑色素合成过程中,一些蛋白质与TYRP-1相互作用. String软件预测出与中华鳖TYRP-1相互作用的10个蛋白.其中,最重要的蛋白是DCT,它与TYRP-1相互作用,共同参与了黑色素生成调控过程,调节黑色素细胞发育生长和功能[15-17]. 与TYRP-1蛋白相互作用的CANX(钙连蛋白)是Ca2+连磷蛋白,位于内质网中,在特定条件下起到识别及与新蛋白特异性结合的作用[18]. CANX在TYRP-1蛋白折叠过程中可能起到分子伴侣作用[19].EDN3(内皮素3)对于毛色的作用越来越受到大家的关注. 王海东等[20]检测了不同体色的小鼠皮肤EDN3表达量,证明EDN3基因导致tyrp-1基因下调. 因此,tyrp-1基因在黑色素合成的过程中,与DCT 等上述蛋白质存在着相互作用.
通过对中华鳖TYRP-1蛋白的系统进化树分析,中华鳖(Pelodiscussinensis)、绿海龟(Cheloniamydas)和锦龟(Chrysemyspicta)亲缘关系近,均为龟鳖目(Testudines),在系统进化树中聚为一支.
本文采用生物信息学方法分析了中华鳖酪氨酸酶相关蛋白1基因及蛋白质的结构与性质,可为研究TYRP-1在中华鳖黑色素合成途径中的重要作用提供重要的理论依据,有助于阐明黄金鳖体色发生机制,同时也可为中华鳖选择育种提供参考.
[1] MONDAL M, SENGUPTA M, SAMANTA S, et al. Molecular basis of albinism in India: Evaluation of seven potential candidate genes and some new findings[J]. Gene, 2012, 511(2): 470-474.DOI:10.1016/j.gene.2012.09.012.
[2] ZHAO H, ELING D J, MEDRANO E E, et al. Retroviral infection with human tyrosinase-related protein-1 (TRP-1) cDNA upregulates tyrosinase activity and melanin synthesis in a TRP-1-deficient melanoma cell line[J]. Journal of Investigative Dermatology,1996,106(4): 744-752.DOI: 10.1111/1523-1747.ep12345799.
[3] WU H, PARK H Y. Protein kinase C-β-mediated complex formation between tyrosinase and TRP-1[J]. Biochemical & Biophysical Research Communications, 2003, 311(4): 948-953. DOI:10.1016/j.bbrc.2003.10.092.
[4] 丁芳,李华,于辉,等. 鸭羽色基因研究进展[J]. 中国家禽,2011,33(24):45-48.
[5] 张静,刘毅,刘安芳. 畜禽羽色候选基因ASIP和TYRP1的研究进展[J]. 中国家禽,2015,37(1):55-58.DOI: 10.16372/j.issn.1004-6364.2015.01.012. ZHANG J, LIU Y, LIU A F. Progress of candidate genes ASIP and TYRP1 for plumage color in animal[J]. China Poultry, 2015, 37(1): 55-58.DOI: 10.16372/j.issn.1004-6364.2015.01.012.
[6] 许晓军,张海琪,何中央. 中华鳖日本品系和清溪乌鳖线粒体12S rRNA基因部分序列分析[J]. 经济动物学报,2012,16(3):163-167. XU X J, ZHANG H Q, HE Z Y, et al. Sequence composition of mitochondrial 12S rRNA genes between two varieties of Pelodiscus sinensis [J]. Journal of Economic Animal, 2012, 16(3): 163-167.
[7] 孙敏,马月辉,叶绍辉. 生物信息学研究进展[J]. 家畜生态学报,2006,27(1):6-10.DOI: 10.3969/j.issn.1673-1182.2006.01.002. SUN M, MA Y H, YE S H. Bioinformatics research progress and application[J]. Journal of Domestic Animal Ecology, 2006, 27(1): 6-10.DOI: 10.3969/j.issn.1673-1182.2006.01.002.
[8] 何懿菡,孙坤. 生物信息学研究进展[J]. 青海师范大学学报(自然科学版),2011,27(3):69-72.DOI: 10.3969/j.issn.1001-7542.2011.03.018. HE Y H, SUN K. Bioinformatics research progress and application[J]. Journal of Qinghai Normal University: Natural Science Edition, 2011, 27(3): 69-72.DOI: 10.3969/j.issn.1001-7542.2011.03.018.
[9] 马朋,刘萍,李健,等. 脊尾白虾(Exopalaemoncarinicauda)3个野生群体mtDNA 16S rRNA序列差异及长臂虾科系统进化关系[J]. 海洋与湖沼,2012, 43(1):174-179. MA P, LIU P, LI J, et al. The genetic diversity of the 16S rRNA gene in the mitochondrial DNA of three wild populations ofExopalaemoncarinicauda[J]. Oceanologia et Limnologia Sinica, 2012, 43(1):174-179.
[10] 高凯. NJ进化树构建方法的改进及其应用[D]. 北京:北京工业大学, 2008.
[11] 张静. 鹅羽色相关候选基因ASTP和TYRP1基因克隆、表达及SNP检测[D]. 重庆: 西南大学, 2015. ZHANG J. Molecular clonging, expression and SNP detection on ASTP and TYRP1 in the candidate genes of goose plumage color[D]. Chongqing: Southwest University, 2015.
[12] 郑会芹. 山羊TYRP1基因序列分析及SNPs研究[D]. 保定: 河北农业大学, 2010. ZHENG H Q. Study on TYRP1 gene sequence and SNPs of goat[D]. Baoding: Hebei Agricultural University,2010.
[13] 李超. 与酪氨酸酶相互作用蛋白的鉴定和作用机制研究[D]. 苏州: 苏州大学, 2014. LI C. Identification and mechanism research of the protein interacting with tyrosinase[D]. Suzhou: Soochow University, 2014.
[14] JACKMAN M P, HAJNAL A, LERCH K. Albino mutants ofStreptomycesglaucescenstyrosinase[J]. Biochemical Journal, 1991, 274 (3): 707-713.DOI:10.1042/bj2740707.
[15] HEARING V J. Biochemical control of melanogenesis and melanosomal organization[J]. Journal of Investigative Dermatology, 1999, 4(1): 24-28.DOI: 10.1038/sj.jidsp.5640176.
[16] JIMENEZ-CERVANTES C, SOLANO F, KOBAYASHI T, et al. A new enzymatic function in the melanogenic pathway:The 5,6-dihydroxyindole-2-carboxylic acid oxidase activity of tyrosinase-related protein-1 (TRP1)[J]. Journal of Biological Chemistry, 1994, 269(27): 17993-18000.
[17] del MARMOL V, ITO S, JACKSON I, et al. TRP-1 expression correlates with eumelanogenesis in human pigment cells in culture[J]. Febs Letters, 1993, 327(3): 307-310.DOI: 10.1016/0014-5793(93)81010-W.
[18] 谭城,朱文元. 酪氨酸酶等黑素小体相关蛋白胞内分选及投送的分子基础[J]. 中国麻风皮肤病杂志,2005,21(11):885-887.DOI: 10.3969/j.issn.1009-1157.2005.11.018.
[19] JIMBOW K, PARK J S, KATO F, et al. Assembly, target-signaling and intracellular transport of tyrosinase gene family proteins in the initial stage of melanosome biogenesis[J]. Pigment Cell Research,2000, 13(4): 222-229.DOI: 10.1034/j.1600-0749.2000.130403.x.
[20] 王海东,李亚楠,薛霖莉,等. 内皮素3在不同毛色小鼠皮肤中的表达与定位[J]. 中国生物化学与分子生物学报,2016,32(3):339-345.DOI: 10. 13865 /j.cnki.cjbmb.2016. 03. 15. WANG H D, LI Y N, XUE L L, et al. Localization and expression of EDN3 in mouse skin with different coat colors[J]. Chinese Journal of Biochemistry and Molecular Biology,2016, 32(3):339-345.DOI: 10. 13865 /j.cnki.cjbmb.2016. 03. 15.
(责任编辑:赵藏赏)
Bioinformatics analysis oftyrp-1 gene inPelodiscussinensis
WANG Yaguang1,SHAO Qiaoqiao1,SUN Bingbing1,ZHANG Yaohong2,GUAN Yueqiang1
(1.College of Life Sciences,Hebei University,Baoding 071002,China;2.Baoding Fishery Technology Extension Station,Baoding 071051,China)
In order to clarify the structure and characteristics of tyrosinase related protein 1(TYRP-1) in Chinese softshell turtlePelodiscussinensis, bioinformatics analysis was carried out using related softwares, databases and methods. The results showed that the transcript length oftyrp-1 gene was 2 829 bp, encoding a putative 535 aa. The deduced molecular weight of TYRP-1 protein was 60.16 ku and theoretical isoelectric point was 5.35, which indicated it was an unstable protein. A signal peptide domain was located in N-terminus, and it could bind to the signal recognition protein, leading the polypeptide chain through the endoplasmic reticulum membrane to the endoplasmic reticulum cavity. A transmembrane domain in the C-terminus, which anchored on the cell membrane, played an important biological function. The TYRP-1 protein contained two copper-binding domains, and interacted with DCT protein.
Pelodiscussinensis;tyrp-1 gene;bioinformatics
2016-06-15
河北省自然科学基金资助项目(C2016201207);河北省现代农业产业技术体系淡水养殖创新团队项目
王亚光 (1990—),男,山西平定人,河北大学在读硕士研究生.E-mail:1542120049@qq.com
管越强(1973—),男,河北深泽人,河北大学教授,主要从事水生动物营养与免疫研究. E-mail:guanyueqiang@hbu.edu.cn
10.3969/j.issn.1000-1565.2017.03.009
S917.4
A
1000-1565(2017)03-0274-07