加味丹参饮含药血清对hVEGF165转染BMSCs促IRI大鼠心肌血管新生的影响

2017-01-17 02:17杨洋黄政德阮甦梁晖严年文林昱高千仞
福建中医药 2016年6期
关键词:微血管丹参中医药大学

杨洋,黄政德,阮甦,梁晖,严年文,林昱,高千仞

(1.福建中医药大学附属人民医院,福建福州350004;2.湖南中医药大学,湖南长沙410007)

加味丹参饮含药血清对hVEGF165转染BMSCs促IRI大鼠心肌血管新生的影响

杨洋1,黄政德2,阮甦1,梁晖1,严年文1,林昱1,高千仞1

(1.福建中医药大学附属人民医院,福建福州350004;2.湖南中医药大学,湖南长沙410007)

目的探讨加味丹参饮含药血清诱导血管内皮生长因子165(hVEGF165)转染后BMSCs移植IRI大鼠的心肌血管新生的影响。方法构建hVEGF165转染BMSCs,将hVEGF165转染后PIII/IV BMSCs分别加入加味丹参饮含药血清和空白血清,体外诱导48 h。建立IRI大鼠模型,将实验大鼠分为4组,A组:假手术组;B组:IRI组;C组:hVEGF165转染组;D组:hVEGF165转染+加味丹参饮含药血清组。移植第7天,HE染色观察心肌组织形态学变化并做微血管计数。结果移植7 d后,与A组相比,B组心肌微血管有一定再生,C组及D组与B组相比,微血管数上升明显,差异具有统计学意义(P<0.05);D组与C组相比,微血管数上升,差异具有统计学意义(P<0.05)。结论IRI大鼠模型在移植hVEGF165转染BMSCs后,新生血管增多,加味丹参饮含药血清和hVEGF165转染联合应用效果更佳。

加味丹参饮;骨髓间充质干细胞;hVEGF165;基因转染;心肌缺血再灌损伤;血管新生

骨髓间充质干细胞(BMSCs)有取材方便、可来源于自身、免疫原性较低、在体外增殖能力强、并不涉及伦理学问题的特点,目前已作为一种重要的种子细胞,引起研究人员的广泛关注[1]。BMSCs可以在适当的诱导条件下分化为心肌细胞、血管内皮细胞、神经细胞、上皮细胞和脂肪细胞以及骨骼、骨髓基质、肌腱、关节和肌肉等多种组织[2],成为目前心血管领域的研究热点。

大量实验研究证明:中药对干细胞的增值、定向分化有调控作用[3]。在黄芪、丹参等中药对BMSCs的分化影响研究中发现:黄芪、丹参含药血清对BMSCs的增殖具有促进作用[4]。有研究表明黄芪甲苷具有诱导BMSCs分化为心肌样细胞的作用[5]。本实验在前期研究[6]基础上,以hVEGF165基因转染BMSCs为切入点,建立大鼠心肌IRI模型,通过加味丹参饮含药血清体外诱导hVEGF165基因转染后BMSCs移植大鼠心肌IRI模型,观察移植后第7天大鼠心肌血管新生的影响。

1 材料

1.1 实验动物及移植细胞SPF级SD大鼠,雌雄各半,平均体质量在(220±20)g,平均周龄12~14周,共80只,由湖南中医药大学动物实验中心提供,动物许可证:SCXK(湘)2009-0004,实验过程符合动物伦理学要求[7]。移植用hVEGF165转染BMSCs:将携有血管内皮生长因子165基因的质粒pGLVEF1a,采用慢病毒转染BMSCs。

1.2 加味丹参饮灌胃液制备本方是黄政德教授运用“行气活血”之法治疗胸痹心痛的有效经验方,由丹参、赤芍、檀香、川芎、当归等组成,草药由湖南中医药大学第一附属医院药房提供。除檀香外,其它药材加双蒸水3 000 mL浸泡30 min,回流提取2 h,滤出药液;再加双蒸水2 L,回流提取90 min;檀香分两等份分别于两次提取结束前15 min加入;合并两次药液,水浴浓缩至500 mL,3 500 rpm,离心10 min,取上清液;继续浓缩至生药浓度为1 g/mL,共250 mL,4℃条件下保存备用。

1.3 主要仪器AIR TECH超净台(苏州净化集团有限公司);AX-ⅡX射线摄影暗室(广东粤华医疗器械厂有限公司);倒置荧光显微镜(奥林巴斯株式会社);切片机(湖北泰康医疗设备有限公司);大鼠心电图机(江苏玉研科仪器有限公司);小动物呼吸机(江苏玉研科仪器有限公司)。

1.4 溶液配制含药血清制备:SD大鼠平均体质量(270±10)g,雌雄各半,平均周龄12~14周,共30只。参照《药理实验方法学》[8],按照动物与人体的每公斤体重剂量折算系数表,成人与大鼠折算系数为6.25。按60 kg成人每天服用加味丹参饮60 g计算,大鼠临床等效计量为60 g/60 kg×6.25=6.25 g/kg。加味丹参饮灌胃液,按照6.25 g/kg,2次/d,连续5 d对SD大鼠进行灌胃。腹主动脉取血,3 000 rpm,10 min离心后吸出上部血清,得到加味丹参饮含药血清,于-20℃冰箱中保存备用。空白血清制备:等数量SD大鼠灌胃等剂量生理盐水,2次/d,连续5 d。制备及保存方法同含药血清。

2 方法

2.1 心肌缺血再灌注损伤模型建立符合要求SD大鼠,10%水合氯醛麻醉固定,接心电图,剪去左侧胸部3~6肋区域和颈部毛,碘伏消毒铺单;剪刀剪开颈部皮肤,钝性分离肌肉组织,暴露气管,行气管插管术,接呼吸机;剪刀剪开左侧胸部皮肤,手术刀片于四五肋间沿肋间隙切开肌肉,开胸器开胸暴露心脏,钝性分离心包,暴露心脏,在左冠状动脉前降支伴行静脉旁进针2 mm,将静脉及伴行左冠状动脉前降支共同结扎。造模成功标志:左冠状动脉前降支供血区心肌苍白,心脏搏动减弱,心电图显示肢体导联R波振幅明显升高,I导联和aVL导联J点明显抬高。结扎15 min后松线,造成IRI模型。

2.2 III/IV代hVEGF165转染BMSCs制备及动物分组采用全骨髓贴壁法,雌雄各半,平均体质量(50±10)g,平均周龄3~4周,共20只SD大鼠。处死后无菌条件下取出胫骨和股骨,暴露骨髓腔,L-DMEM液反复冲洗骨髓腔。冲洗液,1 500 r/min,离心5 min,弃上清液,加入含有15%胎牛血清的完全培养液,制成单细胞悬液按1×108个/mL密度接种于50 cm2培养瓶中,在37℃、饱和湿度、5%的CO2培养箱中培养,当细胞生长融合基本达到80%~90%时进行传代。取生长融合70%~80%的III/IV代hVEGF165转染BMSCs备用。造模成功SD大鼠随机分组,每组10只(死亡大鼠剔除,手术组均予结扎30 min后实施干预),A组:假手术组,只穿线,不结扎;B组:IRI组;C组:在IRI模型成功后,进行hVEGF165转染BMSCs移植;D组:在IRI模型成功后,进行加味丹参饮含药血清诱导的hVEGF165转染BMSCs移植。

2.3 加味丹参饮含药血清最佳工作浓度采用前期研究得出促进BMSCs分泌VEGF最佳浓度的40%加味丹参饮含药血清为本实验的工作浓度[9],取hVEGF165转染PIII/IV代BMSCs,体外诱导48 h后,收集细胞,调整细胞密度,进行细胞移植。

2.4 移植及给药方法

2.4.1 注射位置的确定造模后,缺血心肌苍白搏动减弱,与正常心肌细胞的鲜红色形成对比,此处为心肌梗死的边缘,实验中细胞移植注射位置。

2.4.2 注射方法A组:造模成功,在确定心肌梗死边缘后,皮试用注射器将EP管内细胞悬浊液吹打1~2次,使细胞悬浊液充分混匀,抽取100 μL hVEGF165基因转染BMSCs细胞溶液;将注射器针尖部平压于心脏外壁,待局部跳动减弱后,刺入心肌,注入约1/3细胞溶液。同样方法选择另外两注射点将细胞溶液注入心肌中。移植后关闭胸腔,在大鼠恢复自主呼吸后拔除气管插管,撤呼吸机,缝合颈部皮肤;碘伏消毒创面,予青霉素预防感染,送回单笼饲养。B组:于梗死区边缘心肌组织的3个位点直接注入共100 μL的L-DMEM。C组:于梗死区边缘心肌组织的3个位点直接注入共100 μL的空白血清干预后hVEGF165转染BMSCs(细胞密度3×106)。D组:于梗死区边缘心肌组织的3个位点直接注入共100 μL的加味丹参饮含药血清诱导后hVEGF165转染BMSCs(细胞密度3×106)。

2.5 检测指标及方法大鼠IRI造模前后记录心电图,HE染色观察心肌变化及微血管计数。

2.6 统计学处理应用SPSS16.0软件对数据进行统计学分析。计量资料符合正态分布用x±s表示,采用单因素方差分析。

3 结果3.1IRI

大鼠心电图的改变结扎左冠状动脉后,Ⅱ导联见ST段抬高明显,T波高耸;缺血再灌注后,出现病理性Q波;随着时间延长,ST段下移,病理性Q波持续存在。见图1。

3.2 心肌组织形态学改变的观察

3.2.1 肉眼观察心肌形态变化结扎时,可见结扎供血区心肌出现灰白色缺血灶,局部组织可有轻度水肿,再灌注后缺血的心肌转变为红色。7 d后D组结扎部位供血区心肌与正常心肌颜色接近。

3.2.2 光镜下各组7 d时心肌组织形态学变化A组:心肌细胞形态正常,纤维排列整齐有序,肌横纹清晰规则,染色均匀。B组:缺血心肌纤维坏死,纤维瘢痕组织出现于心肌间质,光镜下可见细胞核溶解,缺血边缘见少量血管新生。C组:缺血心肌细胞改变不如B组明显,新生微血管较B组多。D组:缺血心肌细胞改变不如B组及C组明显,新生微血管较B组及C组增多。见图2。

3.3 光镜下4组7 d时心肌微血管计数见表1。

表1 4组光镜下微血管计数比较

表1 4组光镜下微血管计数比较

注:与B组比较,1)P<0.05;与C组比较,2)P<0.05。

组别A组B组C组D组微血管计数/个13.6±2.2 15.3±1.7 18.0±1.81)22.5±2.51)2)

4 讨论

胸痹心痛多发于中老年人,其特点为患者年龄渐高,脏腑功能随之衰退,阳气不足,气不行血,心脉瘀阻;或忧思过度,肝失疏泄,气滞则血行不畅,心脉闭阻。加味丹参饮由丹参、赤芍、檀香、川芎、当归、红花、生地黄等组成,本方重用丹参为君以活血祛瘀,辅以赤芍、川芎、当归、红花加强活血化瘀并兼养血行气,佐以檀香行气止痛。

现代药理研究表明:丹参能够增加冠状动脉血流量,改善微循环,促进侧支循环的开放,调节血液在心肌重新分布,从而保护缺血心肌[10]。赤芍中赤芍总苷可改善心肌缺血缺氧状态,从而达到保护心肌的作用[11]。阿魏酸是川芎和当归有效成分,可改善血液循环,从而防止缺血对心肌的进一步损伤[12]。

本实验中采用了成熟的造模方法,运用细胞转染技术研究加味丹参饮对IRI大鼠心肌血管新生的影响。在前期研究中,课题组得出了加味丹参饮含药血清诱导BMSCs移植对心肌IRI模型大鼠梗死心肌边缘区血管新生具有明显的促进作用[13]。本实验以hVEGF165基因转染BMSCs为切入点,观察了细胞移植后第7天心肌微血管再生情况,实验结果显示:细胞移植组和加味丹参饮体外诱导的细胞移植组,与IRI组相比,均可促进心肌微血管再生,且加味丹参饮+hVEGF165基因转染BMSCs移植组中微血管新生数量较其他组高。这种作用有可能是在hVEGF165基因转染BMSCs后,促进BMSCs血管内皮生长因子分泌,诱导BMSCs分化为血管内皮细胞,进一步促进心肌血管新生的作用有关。

[1]邹兵,谢军平,吴清华,等.Livin基因修饰的骨髓间充质干细胞移植治疗对急性心肌梗死大鼠心功能影响[J].中国病理生理杂志.2016,32(3):539-543.

[2]LIU H J,HU R Y,DAI W J,et al.Culture and identification of bone marrow mesenchymal stem cells from enhanced green fluorescent protein-transgenic rats[J].Zhongguo Yi Xue Ke Xue Yuan Xue Bao,2016,38(1):9-15.

[3]石景洋,唐学敏.中药对间充质干细胞培养分化及干细胞移植治疗心脑血管疾病的影响[J].中国组织工程研究与临床康复,2011,15(49):2983-2986.

[4]蔡建平,张爱国,许宝满,等.五种中药(或方剂)含药血清对体外骨髓间充质干细胞增殖活性影响的筛选研究[J].时珍国医国药,2011,22(6):1385-1387.

[5]冼绍祥,杨忠奇,秦佳佳,等.5-氮胞苷诱导大鼠骨髓间充质干细胞向心肌样细胞分化及黄芪甲苷的协同作用[J].中国组织工程研究,2012,16(10):1861-1865.

[6]杨洋,黄政德,田雪飞.血管内皮生长因子165转染骨髓间充质干细胞绿色荧光蛋白的表达[J].中国组织工程研究杂志,2013,17(36):6381-6387.

[7]中华人民共和国科学技术部.关于善待实验动物的指导性意见[R].2006-09-30.

[8]魏伟,吴希美,李元建.药理实验方法学[M].4版.北京:人民卫生出版社,2010.

[9]杨洋.加味丹参饮含药血清对hVEGF165转染BMSCs移植IRI大鼠心肌血管新生的研究[D].长沙:湖南中医药大学,2013.

[10]马丙祥,董宠凯.丹参的药理作用研究新进展[J].中药房,2014,24(4):663-665.

[11]陆小华,马骁,王建,等.赤芍的化学成分及药理作用研究进展[J].中草药,2015,46(4):595-602.

[12]周鸿,黄含含,张静泽.川芎-当归药对研究进展[J].中成药,2015,37(1):184-188.

[13]赵鸿.加味丹参饮含药血清体外诱导的BMSCs移植对心肌IRI模型大鼠血管新生影响的研究[D].长沙:湖南中医药大学,2012.

R285.6

:A

:1000-338X(2016)06-0040-03

2016-09-18

国家自然科学基金资助(30973750)

杨洋(1983—),男,医学博士。研究方向:中西医结合内科临床研究。

黄政德(1955—),男,博士,教授,博士生导师。E-mail:Hzd112 @136.com

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