隋竹欣,李 珍,刘 昊,袁 杨,王海涛
(1.河北联合大学基础医学院组织胚胎学系,河北 唐山 063000;2.山东万杰医学院医学系,山东 淄博 255000;河北联合大学附属医院神经内科,河北 唐山 063000)
世界卫生组织调查[1]表明:至2020年,抑郁症将会成为最重要的引起人类残疾的疾病。近年研究[2]显示:抑郁症患者海马部位的神经元存在可塑性变化,海马参与情绪的控制和反应,对情绪反应起非特异性抑制作用,是极其重要的情绪整合区。微管相关蛋白Tau是一种大脑磷酸化蛋白质,在神经系统的发育和维持微管功能方面有重要作用,多种神经系统疾病均出现了与Tau蛋白相关的特征性病理改变,Tau蛋白的过度磷酸化参与了多种神经退行性疾病的发生过程[3],其在抑郁症发病过程中的作用尚未见详细报道。本研究建立了大鼠抑郁症模型,对大鼠进行行为学检测,尼氏染色观察造模前后大鼠海马神经元形态变化,Western blotting法检测磷酸化Tau(p-Tau)蛋白在不同时间点的表达水平,初步探讨抑郁症发病过程中海马体积异常的原因,为进一步研究抑郁症的发病机制提供依据。
1.1 实验动物与主要试剂 健康成年雄性SD大鼠40只,体质量160~180g(河北联合大学实验动物中心提供,动物合格证编号:SCXK京2009-0004),适应性饲养7d后用于实验。饲养条件:22℃~25℃、昼夜节律(12h/12h)、自由饮水进食。p-Tau兔多克隆抗体、β-actin小鼠单克隆抗体购自美国Santa Cruz公司,免疫印迹相关试剂购自武汉博士德生物工程有限公司。
1.2 动物分组及模型建立 将40只大鼠随机分为对照组和模型组,每组20只。模型组大鼠给予慢性不可预见性温和刺激(chronic unpredicted mild stress,CUMS)建立模型。刺激包括11种:行为限制24h、鼠笼45℃倾斜24h、潮湿垫料24h、4℃冰水游泳5min、禁食24h、42℃热水游泳5min、禁水24h、双耳电击5s2次(0.8mA)、夹尾1min、鼠笼摇动15min和持续光照24h。以上11种应激随机分配,每天给予大鼠1种应激,同种应激不连续出现,共计2轮。对照组大鼠除每天抓取1次外,不做特殊处理。在应激结束后分别于1、7、14和28d处死大鼠用于实验,对照组大鼠处死时间和模型组相同。
1.3 大鼠行为学检测 ① 糖水偏好实验:禁水禁食24h后,每笼放置2个完全相同水瓶,1%糖水和纯净水各200mL双瓶共饮,测量1h内糖水和普通水消耗量,计算大鼠的糖水偏好率:糖水偏好率=糖水消耗量/总液体消耗量×100%;② 旷场实验:实验时每次将1只大鼠放入旷场中心方格内,通过动物行为学实验视频分析系统进行测试,测试内容包括行走总路程、中央活动时间、站立次数和修饰行为次数;③ Morris水迷宫实验:连续测试3d,每天6个循环,记录在60s内寻找水平面下平台的时间,即逃避潜伏期。取3d测试成绩计为其空间记忆成绩。
1.4 尼氏染色观察大鼠海马神经元形态 模型组大鼠应激结束后第1天进行取材,将大鼠脑组织冠状切面石蜡包埋,4μm切片,切片脱蜡至水,用尼氏染料浸染20~30min,充分水洗,梯度酒精脱水,二甲苯透明,中性树胶封片,观察大鼠海马神经元形态学变化。
1.5 Western blotting法检测大鼠海马组织中p-Tau蛋白表达水平 将大鼠直接断头取脑,冰上迅速分离海马,用蛋白裂解液和酶抑制剂提取组织总蛋白。通过BCA定量后按照40μg蛋白量上样进行10聚丙烯酰胺凝胶(SDS-PAGE)电泳,之后进行电转至PVDF膜,5%BSA封闭2h,一抗p-MAP2兔多克隆抗体(1∶1000)4℃冰箱孵育过夜,羊抗兔二抗IgG(1∶5000)室温孵育2h,ECL显色。内参照β-actin用同样方法进行Western blotting分析。以目的条带与内参照的吸光度(A)比值表示目的蛋白的相对表达量。
1.6 统计学分析 采用SPSS 17.0统计软件对数据进行统计学分析。2组大鼠糖水偏好实验、旷场试验和Morris水迷宫实验结果以表示,组间比较采用t检验;不同时间点大鼠海马p-Tau蛋白表达水平以表示,组间比较采用单因素方差分析,组间两两比较采用LSD检验。
2.1 糖水偏好实验 与对照组比较,模型组大鼠普通水消耗量无明显变化(P>0.05),糖水消耗量和糖水偏好百分比明显降低(P<0.01)。见表1。
表1 2组大鼠糖水偏好实验结果Tab.1 Results of sucrose preference test of rats in two group (n=20,)
表1 2组大鼠糖水偏好实验结果Tab.1 Results of sucrose preference test of rats in two group (n=20,)
*P<0.01 vs control group.
Group Water consumption(V/mL)Sucrose consumption(V/mL)Percentage of sucrose preference(η/%)Control 16.60±2.0742.80±8.2271.20±5.26 Model 18.81±2.3828.00±3.16*59.00±2.82*
2.2 旷场实验和水迷宫实验 与对照组比较,模型组大鼠行走总路程、中央活动时间、直立次数和修饰行为次数减少(P<0.01),平均逃避潜伏期明显延长(P<0.01)。见表2和图1。
表2 2组大鼠旷场实验和Morris水迷宫实验结果Tab.2 Results of open field test and Morris water maze of rats in two groups (n=20,)
表2 2组大鼠旷场实验和Morris水迷宫实验结果Tab.2 Results of open field test and Morris water maze of rats in two groups (n=20,)
*P<0.01 vs control group.
Group Overall walking distance(l/m)Central activity time(t/s)Up-right times Grooming behavior Average escape latent period(t/s)Control 62.02±7.66 30.70±6.21 18.40±2.36 12.20±1.68 8.99±1.28 Model 41.62±5.11* 16.90±4.17* 10.20±2.65* 6.00±1.88* 21.53±2.58*
图1 2组大鼠旷场实验和Morris水迷宫实验轨迹图Fig.1 Locus diagram of open field test and Morris water maze of rats in two groups
2.3 大鼠海马细胞形态学 尼氏染色,对照组大鼠海马细胞密度大,锥体细胞层厚,排列亲密整齐,胞体饱满,突起明显。模型组大鼠海马细胞密度小,锥体细胞层变薄,细胞间隙大,排列疏松,细胞核萎缩,突起减少。见图2(插页二)。
2.4 各组大鼠海马组织中p-Tau蛋白表达水平对照组大鼠海马组织中p-Tau蛋白表达水平为(0.50±0.01),模型组大鼠1、7、14和28d海马组织中p-Tau蛋白表达水平分别为0.20±0.01、0.77±0.01、1.20±0.04和0.68±0.04。模型组大鼠CUMS后1d,海马组织中p-Tau蛋白表达水平表达低于对照组(P<0.01);7d后开始高于对照组(P<0.05);14d明显高于对照组(P<0.01);28d仍略高于对照组(P<0.05)。各组大鼠海马组织中p-Tau蛋白表达见图3。
图3 2组大鼠海马组织中p-Tau蛋白表达电泳图Fig.3 Electrophoregram of expressions of p-Tau protein in hippocampus tissue of rats in two groups
抑郁症发病率高,发病年龄宽泛,已严重影响人们的身心健康。动物模型的成功建立促进了抑郁症的基础研究。本研究结果表明:应激后大鼠的糖水消耗量和糖水偏好百分比低于对照组,模型组大鼠CUMS后表现出明显的 “快感缺失”症状;旷场实验结果表明:应激后大鼠在新异环境中自主行为、探究行为明显减少;Morris水迷宫实验结果表明:大鼠空间记忆力减退。由此可见CUMS能使大鼠出现愉快感减退,自主探究减少,精神意志运动迟滞等抑郁症状,可以应用于抑郁症的基础研究。这与本课题组前期研究[4]结果一致。
既往研究显示:不论是抑郁症动物模型[5]还是抑郁症患者[6-10],均表现出海马结构的异常变化。本研究结果提示应激后大鼠海马神经元形态发生改变。海马参与情绪的控制和反应,是极其重要的情绪整合区。近年研究[11-12]显示:抑郁症患者海马部位的神经元存在可塑性变化,海马神经可塑性改变是抑郁症的病理生理学特点之一。Tau蛋白是一种含磷糖蛋白,主要分布在中枢神经系统的神经元轴突和胞浆内,参与维持细胞形态、细胞内物质转运和细胞有丝分裂等过程,其磷酸化程度与神经元的可塑性有关[13]。当Tau蛋白发生高度磷酸化时,可破坏Tau蛋白同微管的结合能力,从而影响细胞骨架系统的稳态[14]。研究[15]表明:在神经退行性疾病中神经细胞凋亡增强与Tau蛋白异常磷酸化有密切的关系。为研究抑郁症发病中海马神经细胞是否存在Tau蛋白磷酸化异常,本实验采用免疫印迹方法检测抑郁症大鼠海马组织中p-Tau表达水平结果显示:大鼠海马组织中p-Tau蛋白表达水平在应激结束后1d显著低于对照组,而7d后高于对照组,14d达到高峰,28d回落但依旧高于对照组,提示应激可以导致Tau蛋白磷酸化增高。p-Tau蛋白影响神经细胞的骨架系统,导致细胞损伤死亡,这可能是导致海马神经元萎缩的原因之一。本课题组前期研究[16]结果证实:抑郁症大鼠海马神经细胞凋亡增加,可能与Tau蛋白磷酸化增高有关。本研究结果显示:应激后1d,大鼠海马p-Tau蛋白表达水平降低,但很快就表现出升高,其详细机制有待深入研究探讨。
综上所述,抑郁症大鼠海马结构异常可能与Tau蛋白磷酸化异常有关,其具体机制在后期的工作中有待于进一步深入研究。
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