康丹丹,汤建民
郑州大学第二附属医院心血管内科 郑州450014
解偶联蛋白2(uncoupling protein-2,UCP2)是位于线粒体内膜上的载体蛋白,介导氧化磷酸化与ATP 合成解偶联,抑制活性氧的生成[1],保护细胞免受氧化应激,对抗心肌缺血再灌注损伤(myocardial ischemia reperfusion injury,MIRI)。一氧化氮合酶(nitric oxide synthase,NOS)是NO 合成的限速酶,内皮型NOS(epidermal nitric oxide synthase,eNOS)和诱导型NOS(induced nitric oxide synthase,iNOS)是与MIRI 有关的主要NOS 亚型。随着研究的不断深入,近年来提出了药物预适应(pharmacological ischemic preconditioning,PIP)这一概念。国内外研究[2-4]证实,药物预处理对MIRI 具有保护作用。目前关于UCP2 的研究大多基于缺血缺氧刺激,有关PIP 与UCP2 的研究则较少,而有关iNOS 与PIP 的研究则罕见报道。该实验通过建立大鼠缺血再灌注损伤模型,检测心肌组织UCP2 及iNOS 的表达,进一步探讨依那普利预处理对心肌的保护机制,为药物治疗提供线索及依据。
1.1 实验动物与分组 健康成年SD 雄性大鼠35只,购于河南省实验动物中心,体重250~300 g,适应性喂养5 d。将大鼠采用随机数字表法分为假手术组(Sham组)7只、缺血再灌注组(IR组)14只、依那普利预处理组(PIP组)14只。PIP组给予依那普利10 mg/(kg·d)灌胃,余给予生理盐水2 mL/d 灌胃。预处理1 周后制作大鼠MIRI 模型,获得Sham组6只、IR组8只、PIP组9只。
1.2 试剂 依那普利片(10 mg)由扬子江有限公司提供,RT 试剂盒、PCR 试剂盒、Marker 由Transgene 公司提供,ECL 试剂盒由北京中杉金桥生物技术有限公司提供,小鼠抗大鼠UCP2 抗体、羊抗大鼠iNOS 抗体、GAPDH 抗体由Santa Cruz 公司提供,二抗由Zymed 公司提供。
1.3 仪器 小型动物呼吸机(型号:Inspira)由北京创博环球生物科技有限公司提供,小动物心电图机(型号:SBP-2000)由上海茂生生物科技发展有限公司提供,D-140 图像记录分析系统由大连竞迈仪器有限公司提供,PCR 扩增仪、EP 管由Eppendorf 公司提供。
1.4 模型建立及心肌标本采集 用体积分数10%水合氯醛按3 mL/kg 腹腔注射,麻醉成功后,固定大鼠,连接心电图机于四肢皮下。气管切开插管,呼吸机辅助呼吸,潮气量20 mL/kg,频率60~70次/min。开胸暴露心脏,剪开心包,挤出心脏,于左心耳根部冠状动脉起始处用5 号丝线穿过该动脉。Sham组只穿线不结扎,余2组将一带有凹槽的细乳胶管垫于血管与结扎线之间,结扎30 min,剪开结扎线,取出细乳胶管,关胸后再灌注120 min。模型成功标准:结扎线远端的缺血心肌变白,颜色变暗,心电图上QRS 波增宽增高[5]或伴ST 段抬高,证实左前降支结扎成功。再灌注后缺血部位心肌颜色恢复,QRS 波振幅减低,抬高的ST 段回落,证实结扎血管再灌注成功。实验结束后摘取心脏,获取左室缺血区心肌组织,分为2 份,用预冷的PBS 盐水洗净残血,1 份在液氮中迅速冷冻,2 份均存放于-80℃冰箱保存备用。
1.5 血清磷酸激酶(CK)活性和丙二醛(MDA)含量测定 实验结束后采取2 mL 心室血,4 000 r/min离心10 min 后取血清,全自动生化分析仪测定血清CK 活性及MDA 含量。
1.6 心肌组织UCP2 和iNOS mRNA 检测 UCP2上游引物5'-TCCTGGCAGGTAGCACCA-3',下游引物5'-CCCGAAGGCAGAAGTGAAG-3',扩增产物大小为311 bp。iNOS 上游引物5'-GCTGTCTGACCCTCA TTTT-3',下游引物5'-GCTGTCTGACCCTCATTTT-3',扩增产物大小为180 bp。GAPDH 上游引物5'-CCACGGCAAGTTCAACGGCACA-3',下游引物5'-GCGGCATGTCAGATCCACAACG-3',扩增产物大小为589 bp。取心肌组织100 mg,用Trizol 法提取组织总RNA,逆转录合成cDNA,以2 μL cDNA 为模板进行扩增。扩增条件:94℃预变性2 min;94℃变性30 s,55℃退火30 s,72℃延伸2 min,共35个循环;72℃总延伸6 min。取5 μL 扩增产物进行琼脂糖凝胶电泳,EB 染色。目的基因的相对表达量以目的基因和GAPDH 条带的灰度值之比来表示。
1.7 心肌组织UCP2 和iNOS 蛋白检测 按每20 mg 心肌组织加100~200 μL 的比例加入蛋白裂解液,4 000 r/min 离心5 min,取上清液获得组织蛋白。蛋白经电泳分离后转移到硝酸纤维素膜上,用质量分数0.1%的丽春红染色,剪下带有Marker 条带的膜和滤纸,在转移缓冲液中平衡30 min。除去气泡后合上夹子,倒入转移槽中,100 V 电压转移80 min,质量分数5%脱脂奶粉TBST 封闭2 h。将一抗按1 ∶1 000 稀释加入膜上,4℃摇床过夜孵育,TBST 冲洗3次,分别为15、10、5 min。将膜与二抗按1∶4 000 稀释,37℃恒温床孵育45 min,TBST 冲洗3次,每次5 min。用ECL 显色,将胶片扫描后用Bandscan 5.0 进行灰度分析。
1.8 统计学处理 采用SPSS 17.0 分析数据。各组CK 活性、MDA 含量、UCP2 和iNOS mRNA 与蛋白表达的比较均采用单因素方差分析,两两比较采用LSD-t 检验。检验水准α=0.05。
2.1 血清CK 活性和MDA 含量 与Sham组相比,IR组及PIP组血清CK 和MDA 含量升高,而PIP组较IR组降低(表1)。
表1 各组大鼠血清CK 活性、MDA 含量比较
2.2 心肌组织UCP2 表达 与Sham组相比,IR组及PIP组心肌组织UCP2 蛋白、mRNA 表达升高;PIP组较IR组降低。见图1、2 和表2。
图1 各组大鼠心肌组织UCP2 及iNOS 蛋白的表达
图2 各组大鼠心肌组织UCP2 mRNA 的表达
2.3 心肌组织iNOS 表达 与Sham组相比,IR组及PIP组心肌组织iNOS 蛋白、mRNA 表达升高;PIP组较IR组进一步升高。见图1、3 和表2。
表2 各组大鼠心肌组织UCP2、iNOS 蛋白及mRNA 表达的比较
图3 各组大鼠心肌组织iNOS mRNA 的表达
氧自由基爆发[6]是引起MIRI 的重要作用机制之一,氧化应激产生的活性氧可以上调及激活UCP2的表达。Krauss 等[7]把超氧化物加入分离的线粒体中,发现其激活UCP2 介导的质子漏。UCP2 通过解偶联作用抑制活性氧的生成,被誉为体内抗氧化因子。该实验观察到IR组代表氧化应激引起细胞损伤[8]的指标MDA 含量升高,同时UCP2 表达也升高;与IR组相比,PIP组血清MDA 含量、CK 活性降低,UCP2 表达降低,说明氧化应激减弱,心肌细胞损伤减少,证明依那普利具有对抗MIRI 的作用。依那普利预处理的确切作用机制尚不清楚,可能与其抑制AngⅡ诱发的活性氧生成有关[9]。依那普利抑制UCP2 表达上调,是通过减少缺血区诱导的氧化应激起作用。
MIRI 引起内皮细胞功能紊乱,舒血管物质与缩血管物质比例失调。内源性NO 是一类舒血管活性物质,其合成受iNOS 的调节。生理条件下iNOS 无活性,正常组织也较少表达。在缺血缺氧、炎症刺激等病理条件下则开始表达[10],催化生成NO 参与MIRI的调节,NO 发挥心肌毒性或心肌保护的作用主要取决于NO 的释放量。研究[11]表明缓激肽可激活NOS促进NO 合成,并通过NO-cGMP 途径或其他途径实现心肌保护作用,更有学者[12]认为某些心血管疾病的发生与缓激肽受体调节有关。该实验结果显示,IR组iNOS 表达升高,证明缺血缺氧刺激可诱导其表达。给予依那普利预处理后其活性进一步升高,同时反映心肌损伤的指标CK 活性降低,说明依那普利通过增强iNOS 活性减轻MIRI。这一作用机制可能与其抑制AngⅡ生成,减少缓激肽降解,保留其更多生物活性,促进iNOS 产生更多NO 有关。
总之,依那普利预处理可能通过下调UCP2、上调iNOS 的表达而实现其心肌保护作用。由于该研究未进行与药物作用机制、目的蛋白有关因子的研究,致使对其作用机制的推测有一定的局限性。
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