唐 远,王 超,陆永跃
(华南农业大学昆虫学系,广州 510642)
Wolbachia是一种立克次氏体细菌,有立克次体的一般特征,其家族中的成员属于Proteobacteria的α亚门,为革兰氏阴性细菌,广泛分布于节肢动物体内,已报道侵染了大约20%的昆虫种类(Werren, 1997;Harrietand Henk, 2003)。Wolbachia随母系遗传,能在昆虫的个体、群体间迅速进行横向传播,参与调控寄主的多种生殖活动,包括诱导生殖不亲和、孤雌生殖、雌性化、杀雄性及增强雄性或雌性的生殖力等,近年来Wolbachia的功能、作用规律和机制等成为了国际生物学研究的热点 (龚鹏等,2002;施婉君等,2002)。
目前确认昆虫体内是否感染Wolbachia的方法是主要是检测其细胞周期基因16S rDNA、23S rDNA、ftsZ和编码Wolbachia表面蛋白的wsp基因(surface protein of Wolbachia) (龚鹏和沈佐锐,2002)。Zhou等 (1998)在wsp序列分析的基础上,将沃尔巴克氏体细分为12个亚群(subgroup),并设计了这12个亚群的wsp基因诊断的PCR扩增特异引物,建立了相对完善的沃尔巴克氏体wsp基因诊断技术。此后,在GenBank中登录并获得专利号的 wsp基因越来越丰富,为Wolbachia的研究提供了大量的资料。目前该技术已经广泛应用于昆虫 (龚鹏等,2002;孙晓等,2004)、蜘蛛 (杨启伟等,2008)、螨类 (苗慧等,2004;Gotoh et al.,2005)等体内Wolbachia的检测。
扶桑绵粉蚧Phenacoccus solenopsis Tinsley属同翅目、粉蚧科,1898年在美国新墨西哥州首次发现并定名 (Tinsley,1898)。2005年该虫在印度和巴基斯坦棉花上暴发成灾,造成巨大经济损失,2006年两国的旁遮普邦棉花均减产12%,2007年减产达到 40% (Dutt,2007;Hodgson et al.,2008)。2008年8月在我国广州发现该虫危害 (武三安和张润志,2009;Lu et al.,2011)。由于它是棉花生产的潜在重要害虫,2010年5月我国将扶桑绵粉蚧增列为全国农业、林业植物检疫性有害生物 (王琳和杨晓朱,2010)。该虫寄主范围广,包括葫芦科、豆科、茄科、唇形科、锦葵科、藜科等100多种植物,其中棉花、烟草、南瓜、番茄等是重要的经济作物 (Tinsley,1898;陆永跃等,2008;孙峰和陆永跃,2011)。风险分析结果显示,该虫对我国各大棉区棉花生产均存在巨大威胁 (王艳平等,2009)。因此,掌握该虫生物学、生态学,研制有效的防治策略和技术十分必要。开展扶桑绵粉蚧体内共生菌Wolbachia研究,对了解该虫入侵种群生殖生物学变化、开发应用Wolbachia控制害虫的新途径等均具有重要意义。本文应用wsp基因诊断技术检测了入侵我国的扶桑绵粉蚧种群中沃尔巴克氏体存在情况,首次发现了Wolbachia感染现象。
供试的扶桑绵粉蚧于2011年11月采自海南省海口市,采回来的粉蚧在室内用扶桑进行连续饲养繁殖5代,获得的雌成虫以无水乙醇浸泡,保存于-40℃的低温冰柜备用。
总DNA的提取在参照温硕洋和何晓芳(2003)的方法并进行一些修改:取单头雌成虫放入1.5 mL的离心管,先加入6 μL的STE(100 mM NaCl;10 mM Tris - Cl,pH 8.0;1 mM EDTA,pH 8.0),研磨匀浆,加入54 μL的STE来清洗研磨杵,再加入6 μL蛋白酶K(200 μg/mL),研磨液在56℃恒温器中消化2 h,消化后的产物在95℃孕育45 s,14000 r/min离心1 min沉淀残渣,上清液作为做PCR的模板或保存在 -20℃冰箱中备用。
wsp基因的PCR扩增方法参照Zhou等 (1998)。扩增引物为:wsp81F(5'TGGTCCAATAAGT GATGAAGAAAC)和wsp 691R(5'AAAAATTAAACGCTACTCCA),由上海生工科技有限公司合成。
扩增体积为25 μL:含模板DNA(扶桑绵粉蚧总DNA)1 μL,20 μmol/L正向引物和反向引物各 1 μL,2.5 mM dNTP 混合液 2 μL,5 U/μL Taq酶 (TaKaRa)0.2 μL,10×buffer(含镁离子)2.5 μL,无菌双蒸水 17.3 μL。
扩增条件:94℃预变性 4 min;94℃ 45 s;54℃45 s;72℃ 1 min;扩增35个循环;最后72℃延伸10 min。扩增反应结束后,取PCR特异性扩增产物5 μL在2%琼脂糖凝胶上进行电泳检测 (电压72 V,电泳缓冲液为1×TAE),紫外灯下观察结果,以明确wsp基因的存在与否及扩增片段的大小。
用电泳凝胶回收试剂盒 (天根生化科技 (北京)有限公司生产)对目的片段进行分离纯化后,克隆到该公司的pGM-T载体中,筛选出阳性克隆,将转化菌株送至上海英骏生物技术有限公司进行测序,并在NCBI中进行序列比较。
特定基因区段的PCR特异性扩增已经成为鉴定昆虫体内细菌共生的常规途径。利用沃尔巴克氏体wsp基因的1对通用引物 (81F,691R),成功地从扶桑绵粉蚧雌成虫的总DNA中扩增到一段550 bp左右的wsp基因片段 (图1),并通过5次验证。经过测序分析,所得wsp基因序列实际长度为540 bp,具体序列见图 2。将所得序列与GenBank中注册的Wolbachia核苷酸序列进行同源性比较,同源性最高可达到99%,证明扶桑绵粉蚧雌成虫体内存在Wolbachia。
图1 扶桑绵粉蚧沃尔巴克氏体wsp基因PCR特异性扩增片段 (约550bp)Fig.1 Specific amplified fragment of Wolbachia wsp by PCR in the solenopsis mealybug
图2 扶桑绵粉蚧雌成虫体内沃尔巴克氏体wsp基因序列Fig.2 Wsp sequence of Wolbachia infecting the solenopsis mealybug female
本文的研究为入侵我国的扶桑绵粉蚧感染Wolbachia提供了分子生物学依据,明确了Wolbachia对扶桑绵粉蚧的感染现象。通过对CABI、JCR、CNKI等文献数据库以及GenBank的检索,发现国内外对Wolbachia在粉蚧体内的共生现象鲜有报道,仅Paul(2006)在著作中提及来自巴西的粉蚧 Phenacoccus herreni体内检测到Wolbachia的存在。因此本文关于在扶桑绵粉蚧体内发现Wolbachia共生的现象在国内外尚属首次。
扶桑绵粉蚧是我国近年来的一种新外来入侵害虫,具有繁殖能力强,扩散迅速,危害严重的特点。兼营孤雌生殖、繁殖能力强成为其种群易扩散传播并成灾的有利因素之一 (Vennila et al.,2010)。由于不需与雄性个体交配,孤雌生殖个体更容易以少量种群进入新生境并建立种群。在新的寄主上不需要雄虫的存在也能大量产卵,孵化出新的后代,进行新一轮的生殖和传播。其特殊的繁殖方式和强繁殖能力加强了该虫传播和扩散的可能性和风险性。扶桑绵粉蚧的孤雌生殖可能与沃尔巴克氏体的共生有关,已证实沃尔巴克氏体参与至少40多个物种的孤雌生殖 (Stouthamer,1997)。未来的研究将进一步针对扶桑绵粉蚧的不同地理种群检测其是否感染沃尔巴克氏体,明确我国扶桑绵粉蚧感染Wolbachia的基本类群及在种群中的感染率,在此基础上进一步进行抗生素处理试验,以探究扶桑绵粉蚧的生殖方式与Wolbachia相关性,分析Wolbachia对我国扶桑绵粉蚧生殖活动的具体作用。
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