郑兰兵 魏 青 刘小玲 刘小雷*
(1 内蒙古自治区第三医院,内蒙古 呼和浩特 010010;2 内蒙古医学院第一附属医院,内蒙古 呼和浩特 010059;3 内蒙古自治区医院,内蒙古 呼和浩特 010018;4.内蒙古医学院药学院,内蒙古 呼和浩特 010059)
病毒感染是病毒性心肌炎(viral myocarditis,VMC)最常见的病因,近年来,发病率有逐渐增多的趋势,有多种可病毒引起VMC,其中以柯萨奇B组3型病毒(Coxsackie virus,CVB3)最为常见[1]。许多文献报道中药具有明显的心肌细胞保护和抑制病毒增殖作用,黄芪就是其中最重要的一种。现研究发现黄芪中小分子化合物如黄芪甲苷、黄酮类具有肯定的抗病毒作用外,较大的分子化合物,黄芪多糖(ASP)也具有提高免疫保护心肌细胞的生物活性[2]。本文利用已经建立的病毒性心肌炎细胞模型,观察黄芪多糖对心肌细胞的保护作用,并试图探讨其心肌保护作用机制。
1.1.1 受试物、病毒及细胞株
黄芪多糖(ASP),从蒙古黄芪Astragalus membranaceus(Fisch)Bge var. mongholicus(Bge.)Hsiao的干燥根,黄芪多糖ASP(Astragalus Sachalinensis Polysaccaride),由中国科学院兰州化学与物理研究所汪道全教授提供,质量分数95.6%;Wistar新生乳鼠心肌细胞,购自内蒙古大学动物中心,生产许可证:SCXK(蒙)2002-0001;VERO细胞:由中国军事医学科学院五所惠赠;CVB3病毒:中国科学院昆明病毒所提供。
1.1.2 主要试剂
免疫组织化学试剂盒(中山生物技术公司,SA102);凋亡检测试剂盒(宝赛生物技术公司,CX101-3);心肌细胞anti-α-actin(中山生物技术公司,3111003);盐酸胍(华美生物工程公司,BR136);CK-MB试剂盒(华美生物工程公司,03104);LDH试剂盒(华美生物工程公司,031020)。
1.1.3 主要仪器
CO2孵箱:日本三洋株式会社;酶标仪(Model550):美国Bid-Rad公司;低温离心机(RC SC):美国Sorvall公司;高速冷冻离心机(Z360K):德国Hermle公司;微量移液器:德国EPPENDORF公司;生物倒置显微镜:日本Nikon公司。
1.2.1 在VERO细胞上抗CVB3病毒实验[3]
试验方法参照文献[3]。
1.2.2 在原代心肌细胞上抗CVB3病毒实验[3]
试验方法参照文献[3]。
1.2.3 病毒繁殖抑制实验[3]
试验方法参照文献[3]。
1.2.4 原代心肌细胞培养液心肌酶活性测定
1.2.4.1 LDH的测定
试验方法参照文献[4]。
1.2.4.2 CK-MB的测定
试验方法参照文献[4]。
VERO细胞试验结果表明:ASP在31.3μg/mL、62.5μg/mL、125μg/mL浓度下,能抑制CVB3病毒对VERO细胞破坏作用,与阴性对照组(病毒)比较,OD值有显著性差异,并呈效应与浓度依赖的关系(P<0.05,P<0.01),见表1。
表1 ASP抗CVB3病毒作用结果(VERO细胞)(±s,n=8)
表1 ASP抗CVB3病毒作用结果(VERO细胞)(±s,n=8)
注:与病毒对照比较:aP<0.05,aaP<0.01;与细胞对照比较:bP<0.05,bbP<0.01
组别 剂量(μg/mL) OD值细胞对照组 — 0.9493±0.1321病毒对照组 250TCID50 0.5801±0.1299bb病毒+盐酸胍组 31.3 0.6251±0.1567 62.5 0.8130±0.0869a 125.0 0.8275±0.0876a病毒+ASP组 7.8 0.5823±0.2292 15.6 0.6781±0.1424 31.3 0.7758±0.2305a 62.5 0.8058±0.1249a 125.0 0.9848±0.3392aa
Wistar新生乳鼠心肌细胞CVB3感染48h后,心肌细胞出现萎缩、变形及脱落,感染后72h至第5天心肌细胞搏动减弱甚至停止,CPE增多。从表2数据可看出,病毒+ASP组(15.6μg/mL、31.3μg/mL、62.5μg/mL)乳鼠心肌细胞形态正常、搏动有力。MTT染色数据表明:给药各浓度组与阴性对照组比较,乳鼠心肌细胞存活率明显增高,各ASP组与阴性对照组比较,OD值有显著性差异(P<0.01),见表2。
表2 ASP抗CVB3病毒作用结果(原代心肌细胞)(±s,n=8)
表2 ASP抗CVB3病毒作用结果(原代心肌细胞)(±s,n=8)
注:与病毒对照比较:aP<0.05,aaP<0.01;与细胞对照比较:bP<0.05,bbP<0.01
组别 剂量(μg/mL) OD值细胞对照组 — 0.8028±0.1685病毒对照组 250TCID50 0.4088±0.0847bb病毒+盐酸胍组 15.6 0.4203±0.0952 31.3 0.5985±0.1117aa 62.5 0.6323±0.1248aa病毒+ASP组 3.9 0.4532±0.0837 7.8 0.4564±0.0799 15.6 0.6409±0.1965aa 31.3 0.6439±0.0827aa 62.5 0.6594±0.2543aa
根据表3试验数据,ASP给药组在31.3μg/mL剂量下,已造成病毒繁殖抑制作用,125.0μg/mL浓度时与盐酸胍对照组抑制作用一致,且有药物浓度相关性。
表3 ASP对病毒繁殖抑制影响(VERO细胞)
从表4数据看到:ASP对Wistar新生乳鼠心肌细胞培养液中LDH活性影响,仅在高剂量下(62.5μg/mL)降低其酶活性(P<0.05)。
表4 ASP对原代心肌细胞上清培养液LDH活性影响(±s,n=8)
表4 ASP对原代心肌细胞上清培养液LDH活性影响(±s,n=8)
注:与病毒对照比较:aP<0.05,aaP<0.01 ;与细胞对照比较:bP<0.05,bbP<0.01
组别 剂量(μg/mL) 酶活力单位细胞对照组 — 6233.0±1024.0病毒对照组 250TCID50 8346.5±1875.0bb病毒+盐酸胍组 15.6 6918.8±1028.5 31.3 6633.0±1326.1 62.5 6524.0±1423.5a病毒+ASP组 3.9 8308.8±1399.1 7.8 7730.5±1870.8 15.6 7663.5±1221.7 31.3 7015.0±1547.4 62.5 6595.0±1192.6a
从表5数据看到:ASP在31.3、62.5μg/mL浓度下可降低Wistar新生乳鼠心肌细胞培养液CK-MB酶活性,有药物浓度相关性(P<0.05、P<0.01)。
表5 ASP对培养大鼠心肌细胞CK-MB活性的影响(加病毒48小时后)(±s)
表5 ASP对培养大鼠心肌细胞CK-MB活性的影响(加病毒48小时后)(±s)
注:与病毒对照比较:aP<0.05,aaP<0.01;与细胞对照比较:bP<0.05,bbP<0.01
组别 样本数 剂量(μg/mL) 酶活力单位细胞对照组 8 — 68.9±18.5病毒对照组 7 250TCID50 152.4±34.8bb病毒+盐酸胍组 8 15.6 116.2±31.8 8 62.5 75.1±20.5aa病毒+ASP组 6 3.9 126.0±10.8 8 31.3 113.7±25.91 8 7.8 113.5±23.9 8 15.6 112.5±35.9 8 31.3 99.5±19.1a 8 62.5 78.3±15.7aa
本文使用从蒙古黄芪中分离纯化的黄白色粉末状多糖,经测定为a-糖苷键连接,相对分子质量约35000,水解多糖检出半乳糖、阿拉伯糖、鼠李糖及葡萄糖等。含有糖醛酸为葡萄糖醛酸和半乳糖醛酸,为水溶性酸性杂多糖。
CVB3病毒接种于VERO细胞时,可看到VERO细胞发生病变,表现为细胞萎缩、胞质颗粒化、折光度增强、与周边细胞原有的紧密接触渐渐消失,最后细胞变形破裂而从培养皿上脱落[5]。鉴于VERO细胞对CVB3病毒敏感这一特点,本文以VERO细胞为敏感细胞株,采用MTT染色法,研究了ASP在VERO细胞上的抗CVB3病毒作用。MTT染色结果表明:ASP在31.3μg/mL、62.5μg/mL、125μg/mL浓度下,能抑制CVB3病毒对VERO细胞的损伤,与阴性对照组比较,OD值有显著性差异(P<0.05,P<0.01),并呈效应与浓度依赖的关系。其作用可能是通过竞争抑制方式阻止CVB3病毒与VERO细胞结合,阻碍病毒的吸附而影响病毒的复制。
新生乳鼠心肌细胞在感染CVB3病毒后2~5d可出现明显细胞病变,早期可直接损害心肌细胞,不仅能关闭细胞核酸及蛋白质的合成,且其蛋白酶A2能裂解心肌细胞中dystrophin蛋白,打乱心肌细胞骨架结构。后期可引起心肌细胞Ca2+内流增加,胞内Ca2+浓度超负荷从而导致心肌细胞变形、脱落、损伤、破裂及诱导心肌细胞凋亡[6]。由于心肌细胞的破裂其胞内乳酸脱氢酶(LDH)、磷酸激酸激酶(CKMB)释放明显增高。因此本文采用心肌细胞为敏感细胞株,观察给予ASP后CVB3病毒对心肌细胞形态(MTT染色)及搏动影响,测定培养液中LDH及CK-MB的活性。从试验数据可以看到,病毒+ASP组(15.6μg/mL、31.3μg/mL、62.5μg/mL)乳鼠心肌细胞与病毒对照组比较,细胞形态正常、搏动有力,MTT染色数据表明:给药各浓度组与阴性对照组比较,乳鼠心肌细胞存活率明显增高,OD值有显著性差异(P<0.01)。ASP在高剂量下(62.5μg/mL)降低乳鼠心肌细胞培养液中LDH酶活性(P<0.05),同样在31.3μg/mL、62.5μg/mL浓度下可降低CK-MB酶活性,且有药物浓度相关性(P<0.05、P<0.01)。而病毒繁殖抑制的结果也表明,ASP可抑制CVB3病毒在VERO细胞内的复制。
本文仅观察了ASP体外细胞水平上抗CVB3病毒活性,测定ASP在CVB3病毒的攻击下对VERO和乳鼠心肌细胞的保护及对CVB3病毒的抑制。ASP的作用机制和对VMC临床治疗效果,尚需进行整体动物实验进一步探讨。
[1] 孙成文,周国赣,江岩,等.黄芪多糖抗氧化损伤作用的研究[J].中国药理学通报,1996,12(2):161.
[2] 单俊杰,王顺春,刘涤,等.黄芪多糖的化学和药理研究进展[J].上海中医药大学学报,2000,14(3):61-64.
[3] 刘小玲,张勇,刘小雷.苦参系列生物碱体外抗CVB3病毒活性[J].沈阳药科大学学报,2006,23(11):724-730.
[4] 刘小玲,张勇,刘小雷.广枣总黄酮体外抗CVB3病毒活性[J].中国医院药学杂志,2007,27(12):1-5.
[5] 刘小雷,张宪武,于东升.病毒性心肌炎细胞调亡机制的探讨[J].内蒙古医学杂志,2005,6(37):92-97.
[6] 刘晓雷,宿瑞俊,贾秀珍,等.黄芪多糖体外抗病毒性心肌炎试验研究[J].中国分子心脏病学杂志,2003,9(2):79.