一起鹅源番鸭呼肠孤病毒的分离鉴定

2023-01-17 08:38武世珍靖吉强宋莎莎
山东畜牧兽医 2023年1期
关键词:呼肠尿囊雏鹅

武世珍,靖吉强,李 舫,宋莎莎

(山东畜牧兽医职业学院,山东 潍坊 261061)

山东养鹅业不断发展,取得了很大成绩。近几年来,雏鹅肝脏、脾脏出现密集性灰白色坏死灶的病例不断增多。雏鹅发病率 3 %~60 %,病死率有时达80 %,该病不断蔓延,危害较大。为了寻找病因,笔者对病鹅进行了病料采集、病原分离鉴定,并对防控措施进行了探讨,为发病鹅场有效控制该病提供参考。

1 材料和方法

1.1 材料

病料采集:2020年5月,山东菏泽一鹅场饲养15日龄三花鹅1 400只,地面平养,鹅群中大部分鹅精神、食欲、运动基本正常,但少数鹅缩头、闭眼,食欲下降,排黄白色稀粪,陆续死亡。该鹅群未免疫呼肠孤病毒疫苗。剖检病鹅,可见肝脏、脾脏表面有密集性灰白色坏死灶,胆囊充盈,胰腺出血,心肌及心冠脂肪出血,病程长者出现心包炎、肝周炎。采集仅有坏死灶的鹅肝脏进行病原分离鉴定。

1.2 方法

1.2.1 病料触片,美兰染色,镜检 用灭菌的剪刀剪开肝脏,用肝脏的新鲜断面做触片,干燥固定,美兰染色,用显微镜油镜检查。

1.2.2 细菌分离培养 在肝脏表面用烧红的烙刀做一烙印,用接种环从烙印中央插入肝脏取病料,分别接种鲜血琼脂培养基,尹红美兰培养基,37 ℃ 培养18 h,观察结果。

1.2.3 病毒分离培养 将鹅肝脏剪碎,按 1:4体积加灭菌生理盐水,用灭菌匀浆器匀浆,液体装入灭菌离心管,反复冻融 3次。4 ℃、10 000×g离心 30 min,吸取上清液,用细菌滤器过滤除菌。取滤液接种 10日龄鸡胚 15枚,尿囊腔接种,接种量为0.15 ml/枚。接种后,37 ℃ 恒温孵化,弃去24 h内死亡的鸡胚。每间隔6 h观察1次,孵化至第 4天,把试验接种胚冷藏保存24 h。消毒鸡胚气室部,打开鸡胚,观察胚体,收取尿囊液,记录结果。

1.2.4 病毒的血凝抑制试验 根据 GB/T 16550-2008《新城疫诊断技术》,利用收取的尿囊液做病毒的血凝及血凝抑制试验。

1.2.5 引物合成 检测鹅源呼肠孤病毒引物,根据呼肠孤病毒 σC蛋白基因设计合成,上游引物P1:5'-GCACTCTGGATCCAGTAC-3',下游引物P2:5'-CAATGGAGAAGCGAACCG-3',目的片段大小为 438 bp。禽流感引物参考 GB/T 18936-2020《高致病性禽流感诊断技术》,检测 M 基因,F1: 5'-TTCTAACCGAGGTCGAAAC-3';F2:5'-AAGCGTCTACGCTGCAGTCC-3',目的片段大小为229 bp引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。

1.2.6 RT-PCR检测 按 TRIzol说明书提取病毒RNA,采用 RT-PCR技术检测呼肠孤病毒、禽流感病毒。参考DB37/T 3821-2019《鸭新型呼肠孤病毒病诊断技术规范》,反转录(RT)反应主要步骤为:在 PCR管中加入 dNTP(10 mmol/L)0.8 µl,引物 P1(20 µmol/L)0.5 µl,引物 P2(20 µmol/L)0.5 µl,RNA 5.0 µl,70 ℃ 作用5 min,然后冰浴 1~2 min,再加入 RNA酶抑制剂 ( 40 U/µl) 0.5 µl, 反 转 录 酶 M-MLV(200 U/µl)0.7 µl,5×M-MLV buffer 2 µl,混匀后 42 ℃ 30 min,95 ℃ 2 min。PCR 反应体系:10×PCR buffer 5 µl,引物 P1(20 µmo1/L)0.5 µl,引物 P2(20 µmo1/L)0.5 µl,RT 产物,5.0 µl;Taq E(5 U/µl),0.5 µl;双蒸水 38.5 µl。PCR 反应程序:95 ℃ 3 min;95 ℃ 20 s,55 ℃20 s,72 ℃ 30 s,共进行 30个循环;最后 72 ℃延伸 10 min。参考 GB/T 18936-2020《高致病性禽流感诊断技术》,主要步骤如下,取 2.5 µl(约250 ng)提取的 RNA,加入RT-PCR反应液中,混匀后置于 PCR仪中,循环参数为;45 ℃,45 min;94 ℃,2 min;94 ℃ 30 s、52 ℃ 45 s、68 ℃ 45 s;35个循环;最后68 ℃ 延伸8 min。

1.2.7 健康雏鹅接种试验 饲养健康鹅 20只,分成试验组和对照组,每组 10只。试验组接种10倍稀释的尿囊液0.2 ml,连续观察10 d,记录发病情况。对照组鹅注射灭菌生理盐水0.2 ml/只。

2 结果与分析

2.1 病料触片,染色,镜检

将染色后的玻片,在染色区域滴加香柏油,显微镜油镜检查,未见形状规则的细菌。

2.2 细菌分离培养

37 ℃培养 18 h,血琼脂培养基,尹红美兰培养基表面均未见细菌生长。

2.3 病毒分离培养

尿囊腔接种后,鸡胚陆续死亡,胚体不同程度的出血。尿囊液清澈,不浑浊。

2.4 病毒的血凝抑制试验

利用新城疫病毒阳性血清做 HI试验,抗体效价为0,未检测到新城疫病毒。

2.5 RT-PCR检测结果

将 PCR产物进行电泳,检测到鹅源呼肠孤病毒引物扩增出438 bp的目标片段,见图1。

图1 RT-PCR扩增鹅呼肠孤病毒基因的电泳图

将 PCR产物送上海生工进行测序。将所得序列在 NCBI数据库进行比对,比对结果表明:该序列与部分番鸭源呼肠孤病毒的核酸一致性在98 %~100 %。说明该病毒和番鸭源呼肠孤病毒的同源性较近。核酸比对结果见图2。从系统进化树可看出:本试验分离到的鹅源呼肠孤病毒与2018年在德国境内绿头野鸭体内分离到的禽呼肠孤病毒核酸同源性最远,与 2019年南京农业大学从樱桃鸭分离到的鸭源呼肠孤病毒核酸同源性较近,同 2020年中国农业大学从番鸭体内分离的呼肠孤病的核酸同源性稍远。由此可推测,呼肠孤病毒在国内鸭、鹅、番鸭和绿头鸭之间存在交互感染的趋势,其致病性和抗原变化值得关注。系统进化树见图3。禽流感病毒引物未扩增出目标片段,检测结果为阴性。

图2 核酸比对结果

图3 系统进化树

2.6 健康雏鹅接种试验

雏鹅接种后,试验组鹅逐渐出现精神沉郁,行动困难,有1只在接种后第5天死亡,剖检后可见肝脏有密集的坏死灶。病变和临床雏鹅病例的较为一致。对照组鹅无异常变化。

2.7 诊断结论

根据临床表现和实验室检测结果,该群雏鹅初步诊断为鹅源番鸭呼肠孤病毒感染。

3 讨论

呼肠孤病毒属于双链RNA病毒[1],在自然界广泛分布[2],致病力的有明显差异。番鸭呼肠孤病毒在福建、浙江等地造成番鸭肝脏、脾脏有灰白色坏死灶,导致免疫抑制,生长不良,瘫痪,死淘率升高[3]。

鹅源呼肠孤病毒可导致三花鹅、泰州鹅、马冈鹅、阳江鹅等品种的雏鹅发病,由于呼肠孤病毒的不断变异,近几年新分离的呼肠孤病毒导致的鹅病变与王永坤等在 2002年报道的鹅出血性坏死性肝炎有了较大的区别,病理变化出现了多样化。

鹅源番鸭呼肠孤病毒严重损伤鹅的肝脏、脾脏,导致鹅抗病力差,容易继发感染鹅大肠杆菌病、鹅沙门氏菌病等。该病四季均发,2~4周龄的雏鹅发病最重,因此,做好育雏期间的饲养管理十分重要,特别是育雏舍保温、通风和消毒。

加强种鹅检疫,对种蛋、直肠拭子中鹅源番鸭呼肠孤病毒的核酸检测,逐步净化种鹅群。避免带毒种蛋污染孵化设备,导致雏鹅早期感染。种蛋入孵前严格做好种蛋消毒;孵化场对孵化设备、场地、运输车、工作人员等严格消毒程序;鹅场进雏前对育雏舍严格消毒。

免疫接种可减少本病的发生[5]。种鹅可用当地流行株制备鹅源番鸭呼肠孤病毒灭活疫苗进行免疫,种鹅在产蛋前 6周应用油乳剂灭活苗进行免疫,1个月后再加强免疫1次。雏鹅出壳后7d可用番鸭呼肠孤疫苗(CA株)进行首次免疫,雏鹅 30日龄时可加强免疫。加大疫苗研发投入,提升免疫效果,是当前面临的重要任务。

鹅场发生该病时,饲料中添加多种维生素,用黄芪多糖、柴胡、当归、白芍、白术(炒)、茯苓、炙甘草、薄荷、生姜、夏草冬虫等中药组方治疗;同时配合敏感抗生素,防止鹅大肠杆菌等细菌的继发感染。

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