趋化因子CXCL9、CXCL10、CXCL11与类风湿关节炎的研究进展

2022-03-09 13:14陆秀娟郑俊慧石宇红
风湿病与关节炎 2022年2期
关键词:类风湿关节炎研究进展综述

陆秀娟 郑俊慧 石宇红

【关键词】 类风湿关节炎;趋化因子;CXCL9;CXCL10;CXCL11;研究进展;综述

类风湿关节炎(rheumatoid arthritis,RA)是最常见的炎性关节病,主要累及手、足小关节,亦可累及大关节,常可导致骨破坏及骨侵蚀,甚至可引起关节畸形、功能丧失。其发病机制复杂,由于存在异常的自身免疫反应,常常可以引起多种关节外表现,累及全身各系统,出现肺间质病变、血管炎和浆膜炎等,危害极大。有研究发现,RA发病可能与趋化因子CXCL9、CXCL10、CXCL11有关。本文就近年来有关CXCL9、CXCL10、CXCL11及其受体与RA的作用做一综述。

1 趋化因子

趋化因子家族是由超过50个趋化因子的配体和受体组成的一种小分泌蛋白[1],分子量为8~12 kDa,通常根据其氨基酸的半胱氨酸残基的排列方式把趋化因子分为CXC(α)、CC(β)、CX3C(δ)、C(γ)亚家族。除了C亚家族[2]外,其余亚家族均有2个半胱氨酸残基,C亚家族只有1个[3]。趋化因子需要与相应的受体结合发挥作用。典型的趋化因子受体是具有7个跨膜结构域的蛋白,包括CXC亚家族受体(CXCR)、CC亚家族受体(CCR)、CX3C亚家族受体(CX3CR)、C亚家族受体(XCR),可以通过与G蛋白偶联从而调节免疫细胞迁移。而不典型的趋化因子受体(ACKRs)虽然也具有7个跨膜结构域,但不能与G蛋白偶联,也不能诱导细胞迁移[4-5]。趋化因子通过招募和聚集细胞到达损伤或炎症部位起作用[6],在免疫和炎症调节中起作用[5]。這种功能使趋化因子在多种疾病中均有作用。有研究指出,趋化因子在动脉粥样硬化、代谢性疾病、RA等慢性和自身免疫性疾病中都有一定的作用[7]。

2 CXCL9、CXCL10、CXCL11及其受体CXCR3

2.1 CXCL9、CXCL10、CXCL11 CXCL9、CXCL10、CXCL11属于趋化因子CXC亚家族、非ELR组的一员,CXCR3是其共同的受体。CXCL9即γ干扰素诱导的趋化因子,CXC10即干扰素诱导的蛋白10,CXCL11即干扰素诱导的T细胞α趋化因子,它们的基因均位于人类4号染色体上,CXCL9在CXCL10和CXCL11附近[8]。CXCL9、CXCL10、CXCL11主要由单核细胞、内皮细胞、成纤维细胞和肿瘤细胞分泌,依赖γ干扰素,通过白细胞介素-12(IL-12)细胞因子家族介导[9],通过肿瘤坏死因子-α(TNF-α)协同增强[10-11]。分泌后通过与趋化因子受体CXCR3结合从而发挥作用。有研究证明,活化的Th1细胞促进CXCL9、CXCL10、CXCL11的表达[12],而已有大量文献证明,Th1细胞在RA发病中起重要作用。由此推测,CXCL9、CXCL10、CXCL11的表达可能也参与了RA的发病过程。

2.2 受体CXCR3 CXCR3是配体CXCL9、CXCL10、CXCL11的共同受体。有研究指出,人CXCR3受体不仅包括CXCR3A,还描述了CXCR3A受体的另外2个剪切突变体,分别称为CXCR3-B和CXCR3-alt[13]。CXCR3-B除了结合CXCL9、CXCL10、CXCL11外,还可以结合CXCL4,但是CXCR3-alt仅能与CXCL11结合。CXCR3受体可以在B细胞、活化的T细胞、自然杀伤细胞等多种细胞表面表达[14],但主要由活化的T细胞产生[15-16],幼稚的T细胞一般不表达CXCR3。在关节炎中,CXCR3主要在关节滑液的T细胞中表达[17]。一项针对儿童幼年特发性关节炎的研究发现,外周血T细胞可以低水平表达CXCR3,但在关节滑液中,T细胞表达CXCR3的水平更高[18]。PATEL等[19]通过免疫组化技术发现,募集到滑膜的T细胞可以高水平地表达CXCR3,通过流式细胞术发现,大部分(84%~98%)RA滑膜T细胞可以表达CXCR3。被表达的CXCR3与CXCL9、CXCL10、CXCL11结合,反过来可以促进T细胞聚集到滑膜,从而加重滑膜炎的发展。

3 CXCL9、CXCL10、CXCL11与RA

目前,RA的具体发病机制尚不明确,可能与自身免疫功能紊乱、亲代遗传、各种感染、吸烟等因素有关。早有研究指出,T细胞向滑膜浸润是RA发病的重要组成部分[19-20]。CXCL9、CXCL10、CXCL11及其受体CXCR3均可在滑膜液中表达,并介导T细胞、单核细胞、中性粒细胞等免疫细胞向滑膜聚集[21]。该作用一方面可以辅助B细胞产生致病性抗体,另一方面可以产生IL-17、IL-6、TNF等促炎因子,从而导致滑膜炎症及骨破坏。并且,被CXCL9、CXCL10、CXCL11与CXCR3结合后,反过来可以促进T细胞聚集到滑膜,从而加重滑膜炎的发展。因此,研究CXCL9、CXCL10、CXCL11及其受体CXCR3在RA中的作用,有助于更好地认识RA,可能为RA的诊断、治疗提供新的方法。

3.1 CXCL9、CXCL10、CXCL11在RA中的作用

3.1.1 CXCL9、CXCL10、CXCL11介导滑膜炎 CXCL9、CXCL10、CXCL11存在于RA的滑膜液和滑膜组织中,并介导滑膜炎症[22]。在胶原诱导性关节炎(CIA)小鼠模型中发现,关节滑膜液可以表达CXCL10,且向CIA小鼠模型腹腔内注射抗CXCL10抗体后,小鼠的滑膜炎可以得到改善。RUSCHPLER等[23]通过DNA寡核苷酸微阵列分析骨关节炎与RA滑膜组织中的基因表达差异,结果显示,CXCL9、CXCL10、CXCL11及其受体CXCR3在RA的滑液组织中高度表达,在RA发病中具有重要作用。其参与RA发病机制的可能是CXCL9、CXCL10、CXCL11与CXCR3结合后,会介导RA中Th1细胞向滑膜液发生迁移[21],而RA滑膜的特征是大量Th1细胞浸润[19-20]。同时,也可以使单核细胞选择性地积聚到滑膜中,导致滑膜炎的发生和发展[24]。此外,机体在损伤因素的刺激下,可以趋化CXCL9因子,使效应T淋巴细胞发生大量定向迁移,参与RA的发展[9]。

TSUBAKI等[22]则认为,在RA早期阶段,CXCL9、CXCL10通过CXCR3将新生成的浆细胞或其直接前体细胞从循环系统吸引到滑膜中。韩叶光等[25]通过ELISA法分别检测108例老年RA患者CXCL9、CXCL10水平,结果发现,RA患者该因子水平明显高于健康对照组,高活动组的水平明显高于低活动组,提示CXCL9、CXCL10水平升高有可能会导致疾病活动,从而促进疾病发展,加重关节滑膜的炎症。总之,CXCL9、CXCL10、CXCL11及其受体在介导滑膜炎中具有重要作用,可能通过聚集炎症细胞到关节滑膜中,从而加重RA进展,抑制CXCL9、CXCL10、CXCL11,可能抑制炎症,改善RA病情。

3.1.2 CXCL9、CXCL10、CXCL11介导骨破坏 RA以关节炎病变为主,最终可导致关节受到破坏。RANKL在成骨细胞表达,可激活破骨细胞,参与破骨细胞的分化,是导致骨破坏的重要因子。RANKL可以促进原始破骨细胞中CXCL10的表达。而在RA中,CXCL10反过来通过CXCR3介导CD4+ T细胞表达RANKL[26-27]。这种相互作用可能是骨侵蚀和骨破坏的重要因素。KWAK等[27]同样证明了RANKL可以促进原始破骨细胞中CXCL10的表达,而CXCL10反过来可以介导滑膜T细胞中RANKL的表达。此外,通过RA的CIA小鼠模型发现,如果给予小鼠抗CXCL10抗体可显著降低小鼠的爪肿胀[27]。并且,通过微焦点计算机断层扫描分析表明,注射抗CXCL10抗体的小鼠骨侵蚀比注射IgG的对照小鼠少,表明阻止CXCL10的作用可以减缓RA骨侵蚀[27]。该研究还通过向另一组小鼠分别注射抗CXCL10逆转录病毒(pMXIP-10-IRES-EGFP)和pMX-IRES-EGFP逆转录病毒作为对照,将这两种逆转录病毒分别注入每只小鼠的胫骨干骺端,结果发现,注射CXCL10逆转录病毒的小鼠骨侵蚀大大增加[27]。

以上實验均说明CXCL10可以介导RA骨侵蚀,阻断其作用可以减少骨侵蚀;但目前大部分仍局限于动物研究,临床研究较少,且仅限于研究CXCL10。而对于CXCR3的另外两个配体CXCL9、CXCL11是否能介导骨侵蚀,目前尚缺乏相关的动物和临床研究,仍需进一步探索。

3.2 CXCL9、CXCL10、CXCL11成为RA标志物的可能 CXCL10与RA的DAS28评分等多种疾病活动度指标相关,可能成为RA患者早期的生物标志物[28]。KUAN等[29]通过人趋化因子细胞计数微珠阵列(CBA)试剂盒I分别测定RA基线和治疗12周后CXCL9和CXCL10的血清浓度,结果发现,在基线水平的RA患者这两种因子水平明显高于健康对照组,经过12周治疗后,CXCL9、CXCL10水平在治疗有反应组明显下降,从而提示趋化因子CXCL9、CXCL10可能作为RA患者疾病活动的敏感指标。此外,CXCL9、CXCL0不仅能作为疾病活动度的生物标志物,还有助于判断药物疗效。经TNF抑制剂治疗后有反应的RA患者其CXCL10基础水平更高,可以预测TNF抑制剂治疗RA的效果[30]。据此,可以根据这类治疗中CXCL10水平预测其疗效。并且,有研究发现,CXCL9、CXCL10的升高早于RA症状出现至少3年[31],这种作用可能使CXCL10成为早期筛查RA的重要指标。但目前关于CXCL11成为RA标志物尚需大量研究。CXCL9、CXCL10、CXCL11可能成为RA的早期标志物,在RA早期诊断及治疗中有一定作用。

3.3 CXCL9、CXCL10、CXCL11在RA治疗的前景 拮抗CXCL9、CXCL10、CXCL11及其受体可能对RA的治疗有一定意义。研究发现,临床常用于RA的JAK-2抑制剂托法替尼在用药28 d后可以显著降低血清CXCL10水平[32]。托法替尼在抑制JAK-2的同时,可能也降低了CXCL10水平,若能直接抑制CXCL9、CXCL10、CXCL11对RA的作用,是否能直接用于治疗RA?已经证实,在动物模型中,CXCL10缺乏的RA造模小鼠关节炎可以得到改善,骨侵蚀减少[33]。尽管目前关于这些趋化因子拮抗剂的研究大部分限于动物模型,但在人体试验中也已经有研究[34]。人抗CXCL10单克隆抗体MDX-1100,在对甲氨蝶呤无效的RA患者中具有较好的临床疗效,可以成为一项较好的治疗策略。但该实验中MDX-1100只是与CXCL10有较高的亲和力,而并没有证明与CXCL9 、CXCL11有亲和力,目前尚无CXCL9、CXCL11拮抗剂治疗RA的相关研究。

CXCR3拮抗剂亦可以抑制T细胞向关节的聚集,从而改善关节炎[35],减少关节损害[33]。LARAGIONE等[36]发现,CXCR3小分子抑制剂AMG487可显著降低Pristine诱导的关节炎大鼠和RA患者的成纤维样滑膜细胞(FLS)和活性基质金属蛋白酶-1(MMP-1)的产生。而MMP-1是一种涉及软骨和骨侵蚀变化的胶原酶,早已证明与RA关节破坏有关[37]。同时,该研究还发现,AMG-487阻断CXCL10-CXCR3相互作用还可以干扰肌动蛋白的细胞骨架重组,并抑制片状脂膜的极化形成,这是细胞迁移和侵袭所必需的。这可能与AMG487使FLS中阻断钙内流减少有关。

另外,CXCR3的另一拮抗剂JN-2的使用可以改善胶原诱导的动物模型关节炎的进展。其作用机制是JN-2通过抑制CXCR3介导的细胞迁移和促炎性细胞因子表达减少炎症,从而改善关节炎的进展[35]。CXCR3拮抗剂未来可能作为治疗RA的重要手段。

4 小结及展望

CXCL9、CXCL10、CXCL11及其受体在RA发病中具有重要作用,主要通过聚集T细胞、单核细胞等炎症细胞到达关节滑膜发挥作用。近年来,越来越多关于抑制其在RA的表达从而缓解疾病进展的研究,为RA治疗提供新的思路;然而,目前大多数有关此类研究仍局限于动物模型实验。随着越来越多研究的开展,CXCL9、CXCL10、CXCL11及其受体与RA的作用将会更明确,将有可能成为RA早期诊断的指标及治疗靶点,为RA提供一种全新的诊断及治疗手段。

參考文献

[1] HUGHES CE,NIBBS RJB.A guide to chemokines and their receptors[J].FEBS J,2018,285(16):2944-2971.

[2] ROLIN J,MAGHAZACHI AA.Implications of chemokine receptors and inflammatory lipids in cancer[J].Immunotargets Ther,2014,3(1):9-18.

[3] MILLER MC,MAYO KH.Chemokines from a structural perspective[J].Int J Mol Sci,2017,18(10):2088.

[4] MIYABE Y,LIAN J,MIYABE C,et al.Chemokines in rheumatic diseases:pathogenic role and therapeutic implications[J].Nat Rev Rheumatol,2019,15(12):731-746.

[5] NIBBS RJ,GRAHAM GJ.Immune regulation by atypical chemokine receptors[J].Nat Rev Immunol,2013,13(11):815-829.

[6] RIDIANDRIES A,TAN JT,BURSILL CA.The role of CC-chemokines in the regulation of angiogenesis[J].Int J Mol Sci,2016,17(11):1856.

[7] WHITE GE,IQBAL AJ,GREAVES DR.CC chemokine receptors and chronic inflammation:therapeutic opportunities and pharmacological challenges[J].Pharmacol Rev,2013,65(1):47-89.

[8] RUFFILLI I.Sjögren syndrome and MIG[J].Clin Ter,2019,170(6):e478-e482.

[9] KOTRYCH D,DZIEDZIEJKO V,SAFRANOW K,et al.CXCL9 and CXCL10 gene polymorphisms in patients with rheumatoid arthritis[J].Rheumatol Int,2015,35(8):1319-1323.

[10] ENGEL MA,NEURATH MF.Anticancer properties of the IL-12 family:focus on colorectal cancer[J].Curr Med Chem,2010,17(29):3303-3308.

[11] TOKUNAGA R,ZHANG W,NASEEM M,et al.CXCL9,CXCL10,CXCL11/CXCR3 axis for immune activation-a target for novel cancer therapy[J].Cancer Treat Rev,2018,63(1):40-47.

[12] NAKAYAMA T,YOSHIMURA M,HIGASHIOKA K,et al.Type 1 helper T cells generate CXCL9/10-producing T-bet(+)effector B cells potentially involved in the pathogenesis of rheumatoid arthritis[J].Cell Immunol,2021,360(1):104263.

[13] KORNIEJEWSKA A,MCKNIGHT AJ,JOHNSON Z,et al.Expression and agonist responsiveness of CXCR3 variants in human T lymphocytes [J].Immunology,2011,132(4):503-515.

[14] GROOM JR,LUSTER AD.CXCR3 in T cell function[J].Exp Cell Res,2011,317(5):620-631.

[15] BLEUL CC,WU L,HOXIE JA,et al.The HIV coreceptors CXCR4 and CCR5 are differentially expressed and regulated on human T lymphocytes[J].Proc Natl Acad Sci U S A,1997,94(5):1925-1930.

[16] QIN S,ROTTMAN JB,MYERS P,et al.The chemokine receptors CXCR3 and CCR5 mark subsets of T cells associated with certain inflammatory reactions[J].J Clin Invest,1998,101(4):746-754.

[17] NEO SY,LUNDQVIST A.The Multifaceted Roles of CXCL9 Within the Tumor Microenvironment[J].Adv Exp Med Biol,2020,1231(1):45-51.

[18] WEDDERBURN LR,ROBINSON N,PATEL A,et al.Selective recruitment of polarized T cells expressing CCR5 and CXCR3 to the inflamed joints of children with juvenile idiopathic arthritis[J].Arthritis Rheum,2000,43(4):765-774.

[19] PATEL DD,ZACHARIAH JP,WHICHARD LP.CXCR3 and CCR5 ligands in rheumatoid arthritis synovium[J].Clin Immunol,2001,98(1):39-45.

[20] O'GRADAIGH D,COMPSTON JE.T-cell involve-ment in osteoclast biology:implications for rheumatoid bone erosion[J].Rheumatology(Oxford),2004,43(2):122-130.

[21] DI DOMENICANTONIO A.Rheumatoid arthritis and the alpha-chemokine IP-10[J].Clin Ter,2014,165(6):e447-e451.

[22] TSUBAKI T,TAKEGAWA S,HANAMOTO H,et al.Accumulation of plasma cells expressing CXCR3 in the synovial sublining regions of early rheumatoid arthritis in association with production of MIG/CXCL9 by synovial fibroblasts[J].Clin Exp Immunol,2005,141(2):363-371.

[23] RUSCHPLER P,LORENZ P,EICHLER W,et al.High CXCR3 expression in synovial mast cells associated with CXCL9 and CXCL10 expression in inflammatory synovial tissues of patients with rheumatoid arthri-tis[J].Arthritis Res Ther,2003,5(5):R241-R252.

[24] KLIMIUK PA,KITA J,CHWIECKO J,et al.The changes in serum chemokines following leflunomide therapy in patients with rheumatoid arthritis[J].Clin Rheumatol,2009,28(1):17-21.

[25] 韓叶光,符生苗,符克英,等.老年类风湿关节炎患者血清CXCL9及CXCL10表达及临床意义[J].中国老年学杂志,2019,39(15):3707-3710.

[26] LEE EY,LEE ZH,SONG YW.The interaction between CXCL10 and cytokines in chronic inflammatory arthritis[J].Autoimmun Rev,2013,12(5):554-557.

[27] KWAK HB,HA H,KIM HN,et al.Reciprocal cross-talk between RANKL and interferon-gamma-inducible protein 10 is responsible for bone-erosive experimental arthritis[J].Arthritis Rheum,2008,58(5):1332-1342.

[28] PANDYA JM,LUNDELL AC,ANDERSSON K,et al.Blood chemokine profile in untreated early rheumatoid arthritis:CXCL10 as a disease activity marker[J].Arthritis Res Ther,2017,19(1):20.

[29] KUAN WP,TAM LS,WONG CK,et al.CXCL9 and CXCL10 as Sensitive markers of disease activity in patients with rheumatoid arthritis[J].J Rheumatol,2010,37(2):257-264.

[30] HAN BK,KUZIN I,GAUGHAN JP,et al.Baseline CXCL10 and CXCL13 levels are predictive biomarkers for tumor necrosis factor inhibitor therapy in patients with moderate to severe rheumatoid arthritis:a pilot,prospective study[J].Arthritis Res Ther,2016,18(1):93.

[31] KOKKONEN H,SÖDERSTRÖM I,ROCKLÖV J,et al.Up-regulation of cytokines and chemokines predates the onset of rheumatoid arthritis[J].Arthritis Rheum,2010,62(2):383-391.

[32] BOYLE DL,SOMA K,HODGE J,et al.The JAK inhibitor tofacitinib suppresses synovial JAK1-STAT signalling in rheumatoid arthritis[J].Ann Rheum Dis,2015,74(6):1311-1316.

[33] LEE JH,KIM B,JIN WJ,et al.Pathogenic roles of CXCL10 signaling through CXCR3 and TLR4 in macrophages and T cells:relevance for arthritis[J].Arthritis Res Ther,2017,19(1):163.

[34] YELLIN M,PALIIENKO I,BALANESCU A,et al.A phaseⅡ,randomized,double-blind,placebo-controlled study evaluating the efficacy and safety of MDX-1100,a fully human anti-CXCL10 monoclonal antibody,in combination with methotrexate in patients with rheumatoid arthritis[J].Arthritis Rheum,2012,64(6):1730-1739.

[35] KIM B,LEE JH,JIN WJ,et al.JN-2,a C-X-C motif chemokine receptor 3 antagonist,ameliorates arthritis progression in an animal model[J].Eur J Pharmacol,2018,823(1):1-10.

[36] LARAGIONE T,BRENNER M,SHERRY B,et al.CXCL10 and its receptor CXCR3 regulate synovial fibroblast invasion in rheumatoid arthritis[J].Arthritis Rheum,2011,63(11):3274-3283.

[37] CUNNANE G,FITZGERALD O,BEETON C,et al.Early joint erosions and serum levels of matrix metalloproteinase 1,matrix metalloproteinase 3,and tissue inhibitor of metalloproteinases 1 in rheumatoid arthritis[J].Arthritis Rheum,2001,44(10):2263-2274.

收稿日期:2021-09-05;修回日期:2021-10-02

猜你喜欢
类风湿关节炎研究进展综述
GNSS-PPP算法与应用的研究进展
麦香遍地粮满仓——山西省“三夏”生产综述
CHI3L1在神经系统相关疾病中的研究进展
SAPHO综合征1例报道并文献综述
中医外治法治疗功能性消化不良的研究进展
近十年国际STEM教育研究进展
驾驶员安全带识别方法综述
知识追踪综述
类风湿关节炎蒙医药治疗现状与展望
类风湿关节炎的诊断及其药物治疗研究进展