马排卵期性激素含量变化及相关性分析

2021-07-09 02:31郑新宝罗永明徐文慧奴尔兰阿克亚孜范洪先
黑龙江动物繁殖 2021年5期
关键词:母马发情卵泡

董 红,郑新宝,罗永明,陈 童,徐文慧,奴尔兰·阿克亚孜,范洪先

(1.新疆畜牧科学院 畜牧研究所,乌鲁木齐 830011;2.新疆伊犁国家农业科技园区管理委员会,新疆 昭苏 835600;3.昭苏县畜牧兽医发展中心,新疆 昭苏 835600)

在繁殖季节,母马在感受环境气温、光照变化的条件下,采食大量青草,膘情逐渐恢复,此时脑垂体释放促卵泡素(FSH),在FSH的不断作用下母马子宫上卵巢多个卵泡逐渐发育;此外母马卵巢还产生雌激素、促黄体生成素(LH)进入血液[1]。当血液中雌激素浓度不断升高时,则抑制脑垂体FSH、LH的释放。当FSH浓度开始不断下降后,在竞争生长条件下只有一两个卵泡发育成熟。LH的不断释放推动卵泡破裂成熟,卵子排出,然后进入发情交配、受精、妊娠阶段,一般母马怀孕产单胎,极个别为双胎[2-3]。为了深入研究母马发情季节生殖激素分泌变化规律,有必要进行排卵监测,这对诱导发情、实施同期发情有重要意义。

研究气候、品种、年龄、营养等因素对母马卵泡发育和排卵的影响[4-6]可以预测母马发情排卵时间,推测最佳配种时间。试验在卡拉苏马研究中心配种站选择发情母马122匹次,采集静脉血测定FSH、LH、绒毛膜促性腺激素(hCG)、促性腺激素释放激素(GnRH)、促甲状腺激素释放激素(TRH)含量变化,并辅助直肠检查子宫卵巢、阴道状态及母马外观行为表现,现报道如下。

1 材料与方法

1.1 试验时间和地点

试验于2016—2020年在昭苏县畜牧兽医站卡拉苏马研究中心马场进行。

1.2 试验动物及血液样品的采集

在配种季节,在卡拉苏马研究中心配种站选择发情母马122匹次,马群采用放牧方式饲养,使用一次性普通真空采血管,分别采集母马卵泡Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ、Ⅴ期颈部静脉血,然后1 500 r/min离心5 min,血清冷冻保存,使用干冰运输,送至北京金海科隅生物科技发展有限公司,使用酶联免疫法检测血清中FSH、LH、hCG、GnRH、TRH含量[7]。

根据卵巢上卵泡的形状、大小、质地、波动和位置可判断卵泡发育情况,一般将马的卵泡期分为Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ、Ⅴ期,划分标准[8]如下:(1)卵泡Ⅰ期。一侧卵巢上出现小卵泡,直肠检查手接触有硬球的感觉,微突于卵巢表面,弹性强,无波动,排卵窝深。一般持续1~3 d。(2)卵泡Ⅱ期。小卵泡发育长大,卵泡液增多,卵泡柔软有弹性,直肠检查时触摸有微小波动感。排卵窝由深变浅。此期持续1~3 d。(3)卵泡Ⅲ期。卵泡继续长大,卵泡液更多了,直肠检查时触摸卵泡柔软,弹性好,波动明显,卵泡壁逐渐变薄,排卵窝较平。一般持续1~2 d。(4)卵泡Ⅳ期。卵泡长至最大,已成熟,直肠检查时手触能感觉到卵泡壁薄而紧张,有明显波动感,排卵窝浅。一般持续1.0~1.5 d。(5)排卵Ⅴ期。卵泡壁很薄,紧张,弹性弱,有一触即破感。此期一般持续2~8 h。有时直肠检查,触摸时卵泡突然破裂、排卵,可摸到排卵窝和卵泡膜。

1.3 激素的测定

酶联免疫吸附(ELISA)技术是一种应用广泛的检测方法,具有快速、敏感、特异性强、简便、易于标准化等优点,本试验采用ELISA测定血清激素含量。主要步骤:(1)取血清样品10μL加入酶标孔,加入样品稀释液40μL;(2)取标准品50μL加入酶标孔;(3)每孔加入酶标液100μL,盖上贴纸,放入37℃温箱反应1 h;(4)取出酶标板,用试剂盒自带洗液(洗液1∶25倍稀释)洗5遍,每遍间隔30 s,最后一遍甩干,在吸水纸上拍干;(5)每孔加入A液50μL,B液50μL,盖上贴纸放入温箱反应15 min;(6)取出酶标板加入终止液50μL,放入酶标仪检测(酶标仪检测选择450 nm波长条件),读取OD值[7-9]。

1.4 主要仪器和试剂

台式离心机、便携式B超仪、酶标仪、采血管、ELISA试剂盒、干冰。

1.5 数据的统计分析

采用Excel 2013软件整理数据并绘制不同采样期各种激素变化折线图;用SPSS 19.0软件进行单因素方差分析,并进行不同采样期的FSH含量、LH含量、hCG含量、GnRH含量、TRH含量 等指标之间的相关性分析。

2 结果与分析

2.1 血清激素指标统计

各采样时期母马血清激素含量见表1。

表1 血清激素的描述性统计分析

由表1可以看出:FSH、LH、hCG含量在Ⅱ期至Ⅳ期持续上升,在Ⅳ期达到最高,之后下降;Gn-RH含量在Ⅱ期至Ⅲ期下降,Ⅲ期至Ⅳ期上升,Ⅳ期至Ⅴ期下降;TRH含量在Ⅱ期至Ⅲ期下降,之后上升,不同卵泡期差异显著(P<0.01)。

2.2 血清激素指标相关性分析

对母马血清中激素含量进行相关性分析,结果见表2。

表2 不同采样期血清激素间的相关性分析

由表2可以看出:在Ⅱ期,TRH含量与GnRH、LH、FSH、hCG含量呈极显著相关(P<0.01),GnRH与FSH含量呈显著相关(P<0.05),hCG与LH、FSH含量呈极显著相关(P<0.01),LH 和FSH含量呈极显著相关(P<0.01)。

在Ⅲ期,TRH含量与GnRH、LH、FSH、hCG含量呈极显著相关(P<0.01),GnRH与FSH、LH、hCG含量呈极显著相关(P<0.01),hCG和LH、FSH含量呈极显著相关(P<0.01),LH和FSH含量呈极显著相关(P<0.05)。

在Ⅳ期,TRH含量与GnRH、LH、FSH、hCG含量呈极显著相关(P<0.01),hCG和LH、FSH含量呈极显著相关(P<0.01),LH和FSH含量极显著相关(P<0.01)。

在Ⅴ期(排卵后),TRH含量与GnRH、FSH、hCG含量呈极显著相关(P<0.01),GnRH与FSH含量呈极显著相关(P<0.01),hCG与LH、FSH含量呈极显著相关(P<0.01)。

3 讨论与结论

FSH和LH是一类糖蛋白激素,由母畜脑垂体促性腺激素细胞分泌,受下丘脑GnRH、雌激素、抑制素调控,推动着发情周期的周期性变化。FSH可以促进卵泡生长发育成熟及影响雌激素分泌,LH可以促进母马成熟卵泡排卵和黄体生长,促进黄体分泌雌激素、孕激素[10]。目前,有关哺乳动物的排卵详细机制尚未完全明确,对灵长类动物的研究表明:发情排卵前后时期动物体内FSH、LH、雌激素以及GnRH等激素变化明显,激素之间相互影响形成反馈调节,推动卵泡成熟、排卵,然后形成红体、黄体、白体。雌激素峰值出现,诱导下丘脑GnRH释放增加,推动LH、FSH达到分泌峰值。FSH和LH协同作用,诱导排卵时FSH和LH互相协同,使成熟卵泡破裂排卵。但单独使用LH会造成卵巢上成熟和不成熟的卵泡全部破裂,这种现象产生的确切机制还有待进一步研究[11]。

GnRH是一种神经激素,由下丘脑分泌,促进FSH、LH释放,排卵前LH分泌升高,推动雌激素分泌增多,雌激素刺激卵巢上受体合成多种酶,推动成熟卵泡顶部组织胶原纤维蛋白多糖变性,卵泡膜的黏合作用被破坏,卵泡液内蛋白水解酶、淀粉酶、胶原酶、透明质酸酶分泌增多,联合作用促使卵泡壁溶解破裂,成熟卵子排出[12]。

TRH是由下丘脑室旁核内的神经细胞合成分泌的一种肽类激素,可以促使促甲状腺激素(TSH)分泌增加,TSH的增多可以促进甲状腺的分泌,使动物体对性激素敏感性增加,身体发热,神经系统兴奋,表现发情症状[13]。

马的发情排卵主要发生在Ⅲ期~Ⅳ期,在本试验中,马群采用放牧方式饲养,比较难抓,采集同一匹放牧母马血样时,收集到的连续血样以Ⅱ期~Ⅴ期的为主,很少采集到Ⅰ期~Ⅱ期连续样本,血样数量不够,因此本试验重点对比分析马匹Ⅱ期~Ⅴ期的血液激素变化。

本试验结果表明:(1)在母马正常排卵期中卵泡Ⅱ期的FSH和LH、hCG是维持在低水平的,随着卵泡逐渐生长变大,FSH、LH、hCG激素含量在GnRH的诱导下持续上升,直至排卵前会迅速升高,LH、hCG在排卵期可升高2倍,而FSH则为2,3倍左右,在Ⅳ期达到最高,形成优势卵泡,然后卵泡破裂排卵,排卵之后进入Ⅴ期时FSH、LH、hCG激素含量迅速下降。(2)GnRH含量在Ⅱ~Ⅲ期有所下降,但差异不显著,在即将排卵时分泌量上升,促进FSH、LH分泌,推动优势卵泡排卵,排卵后含量又再次下降,FSH、LH含量也降低,卵巢恢复,开始准备下一个发情排卵周期。(3)TRH降低会引起母马甲状腺功能亢进,发情表现明显,并停止采食,频频靠近公马,嘶鸣,排卵后TRH含量升高,甲状腺功能减退,兴奋性逐渐下降,表现为安静排卵,接收公马爬跨配种。(4)不同采样期比较而言,在排卵前的Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ期时,FSH和LH含量呈极显著相关,均为逐渐升高,排卵后迅速下降。在Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ期hCG含量均与FSH、LH含量呈极显著相关(P<0.01),总体上呈现先升高后降低的趋势。GnRH在Ⅱ期时与FSH含量呈显著相关(P<0.05),表现为促进FSH分泌;Ⅲ期时,GnRH含量与FSH、LH、hCG含量呈极显著相关(P<0.01);Ⅴ期(排卵后)时与FSH含量呈极显著相关(P<0.01)。TRH含量始终与FSH、hCG、GnRH含量呈极显著相关(P<0.01),且与其他激素升降趋势一致,TRH含量在Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ期与LH含量呈极显著相关(P<0.01),但是排卵后TRH与LH含量的相关性不显著。

以上结果提示,在马的繁殖季节,可以每天采血进行生殖激素监测,追踪FSH、LH、hCG含量变化,当它们含量逐渐上升后,突然开始下降时,为最佳输精时间。

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