甲状腺球蛋白增高的先天性甲状腺功能减退症1 例报告并文献复习

2021-05-01 11:21王立彪刘玉慧相恒杰黄文龙陈文霞
临床儿科杂志 2021年4期
关键词:结构域位点变异

王立彪 刘玉慧 相恒杰 黄文龙 陈文霞

河南中医药大学第一附属医院 国家儿童区域医疗中心(河南郑州 450000)

先天性甲状腺功能减退症(congenital hypothyroidism,CH)是新生儿和婴儿常见的一种内分泌系统疾病,发病率约1/2000~1/4000,其中由甲状腺球蛋白(thyroglobulin,TG)基因缺陷导致的CH患者较罕见,这类患者血清TG水平多降低或缺乏,但极少数患者TG水平升高。本文报告1个血清TG水平增高CH家系的临床资料。

1 临床资料

河南中医药大学第一附属医院收治的1例45日龄黄疸女婴。患儿系G 3 P 2,孕38 周顺产,出身体质量2 800 g,生后Apgar评分1分钟、5分钟均为10分,脐带、胎盘未见明显异常。患儿母亲孕期无高危因素,生后当天即出院。患儿生后正常开奶,奶量完成可。患儿生后3 天出现颜面皮肤黄染,具体胆红素值不详。家属自行给予益生菌口服治疗,黄疸逐渐加重。15 日龄时患儿仍全身皮肤黄疸,伴巩膜稍黄染,至当地医院经皮测胆红素为10.4 mg/dL,继续口服益生菌治疗。但黄疸消褪不理想,伴黄绿色糊状便,3 天1 次。当地医院查总胆红素208.9 μmol/L,直接胆红素12.4 μmol/L,白蛋白41.3 g/L,遂转入院。入院体格检查:神清,精神反应可,无特殊面容,全身皮肤黏膜轻度黄染伴巩膜稍黄染,心肺腹未见明显异常,神经系统无异常。入院实验室检查:游离三碘甲腺原氨酸(FT3)2.95 pmol/L,游离甲状腺素(FT4)0.01 pmol/L,促甲状腺素(TSH)354.75 mIU/L,甲状腺球蛋白(TG)377.68 ng/mL,抗甲状腺过氧化物酶抗体(TPO-Ab)、抗甲状腺球蛋白抗体(TG-Ab)、促甲状腺受体抗体(TSHR-Ab)均无异常;血常规、C 反应蛋白、降钙素原(PCT)、肾功能、心肌酶、电解质、优生优育十项(弓形虫、巨细胞病毒、风疹病毒、单纯疱疹病毒1型及单纯疱疹病毒2型5种病原的IgG、IgM抗体)及EB病毒四项(EBV衣壳抗原IgG、EBV早期抗原IgG、EBV核抗原IgG、EBV 衣壳抗原IgM)等相关检查未见明显异常。甲状腺超声示甲状腺形态正常,无结节、囊肿。患儿诊断为CH。予左甲状腺素钠片替代治疗3 个月后,患儿甲状腺功能及甲状腺球蛋白恢复正常(FT 3 6.32 pmol/L,FT4 14.82 pmol/L,TSH 0.65 mIU/L,TG 3.02 ng/mL)。家族中无甲状腺相关疾病史,父母及哥哥均无异常(表1)。

因家属要求明确CH 原因及预测是否需终身服药,经医院医学伦理委员会批准以及家属知情同意后,用EDTA 抗凝采血管采集患儿兄妹及其父母外周血,送至北京金准基因科技有限责任公司进行相关基因检测。使用血液提取试剂盒(Blood DNA Kit V 2,CW 2553,康为世纪)提取基因组 DNA,并对基因组 DNA 进行质控。对DNA 样本进行超声破碎、文库构建、杂交捕获(SureSelect 杂交缓冲液体系,Agilent)及扩增、纯化,建立患儿的DNA目标基因捕获文库。后使用 Qubit dsDNA HS Assay kit(Invitrogen,Q32851)对测序文库的 DNA 样本进行定量。按照捕获文库DNA样本浓度及测序深度要求,使用Illumina HiSeq X Ten 平台进行测序,平均测序深度为 100×,获得fastq 格式的原始数据。使用Burrows-Wheeler Alignment(v0.7.15)工具将测序reads 比对到人类参考基因组(hg 19 版)。使用GATK(v 3.6)、CODEX、XHMM(v 1.0)、KSCNV(康旭开发)等软件检测单核苷酸变异(SNV)、小的插入缺失变异(InDel)及可能存在的拷贝数变异(CNV)。参考1000 G(V 1,V 3)、dbSNP、ESP 6500、ExAC、RefSeq、Ensembl、UCSC 等公共数据库,对变异信息进行注释。使用 PolyPhen-2、SIFT 和 MutationTaster2等软件对变异进行蛋白功能损伤预测。参考 OMIM、HGMD、ClinVar 等数据库,进行疾病信息注释。经 GERP++保守性分析和过滤,保留可能与疾病有关的变异。对各样本位点进行一代验证。在人类基因组数据库 GenBank 中获得上述变异位点基因序列,在引物设计网站Primer Z(http://genepipe.ncgm.sinica.edu.tw/primerz/primerz 4 .do)设计引物并合成。对变异位点进行PCR扩增后行Sanger测序,将获得序列与之前的序列进行比对,排除二代测序中假阳性位点。

基因检测结果:在患儿TG 基因上发现2 个复合杂合变异,其中父源变异c.2149 C>T 导致编译第717 号氨基酸精氨酸(R)的密码子变为终止密码子(p.R 717*),从而导致肽链合成提前终止。根据美国医学遗传学与基因组学学会遗传变异分类标准与指南(ACMG)分类为疑似致病变异;母源变异c.5401+113 A>G 为剪切位点变异,可能影响mRNA剪接,ACMG分类为临床意义未明变异。患儿哥哥携带c.5401+113A>G单杂合变异,患者父母均为携带者,哥哥及父母的FT3、FT4、TSH、TG、TPO-Ab、TG-Ab、TSHR-Ab 检查结果正常且并无甲状腺功能减退相关症状。由于TG基因变异c.2149C>T及c.5401+113A>G在HGMD数据库中未见报道,为新发现的TG基因变异位点(图1、图2)。

2 讨论

CH 是新生儿和婴儿中常见的一种内分泌疾病,为常染色体隐性遗传,发病率约1/4000~1/2000,其中85%是由于甲状腺分化、迁移或生长异常(甲状腺发育不全)和促甲状腺激素抵抗引起,15%是由于甲状腺激素合成过程出现缺陷导致激素生成异常引起[1]。本例患儿的父母及哥哥均携带1个TG变异位点,无临床症状;患儿则为复合杂合变异,出现明显的甲状腺功能减退,符合常染色体隐性遗传方式。

表1 患儿家系临床表型

图1 TG 基因c.2149C >T 测序图

图2 TG 基因c.5401+113A >G 测序图

TG是一种相对分子质量为660 000的同型二聚体糖蛋白,仅在甲状腺中合成,是甲状腺激素生物合成的高度专门化基质,在甲状腺激素合成过程中TG 不仅为T3、T4合成提供骨架,同时可起到储存碘和甲状腺激素的作用[2]。TG 基因位于人类8 q 24.2-8 q 24.3染色体上,长度约270 kb,包含48个外显子,其结构异常可能导致TG 的合成或功能异常[3-5]。自1991 年首次报道TG基因变异可引起CH以来[6],目前已发现100多种不同的TG基因变异类型[2,7],但TG基因变异导致的CH仍较为罕见,发病率约为1/100 000[8]。

大多数由TG 基因变异而导致的CH 患者在左甲状腺素替代治疗前,不管是否存在甲状腺肿大,都显示出血清TG 水平降低或缺乏,这也是诊断TG基因缺陷的关键因素[7,9]。本例患儿出现极其罕见的临床表型,血清TG 水平不仅没有降低,反而升高。检索文献,除本例外,仅有4 例TG 升高的CH 患者的报道[10-12]。约80%的TG单体一级结构是三个连续的半胱氨酸(cysteine,Cys)重复结构域(重复结构域 Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ),剩余的20%(构成分子的羧基末端结构域)与乙酰胆碱酯酶(acetylcholinesterase,AChE)具有惊人的同源性,并且可能充当分子伴侣的作用。通常情况下,TG 基因变异可引起其转录产物不能正确的折叠,导致TG 蛋白在内质网的滞留,不能分泌到血液中,导致CH,此类患者多伴有甲状腺肿和内质网累积病[11,13]。未正确折叠的TG蛋白不能在细胞内运输,然后被伴侣蛋白通过未折叠蛋白反应(unfolded protein response,UPR)的细胞内信号通路重新折叠或降解[14]。文献报道的4 例TG 增高病例中,变异所致氨基酸改变p.G 2322 S 和p.A 2215 D 位于胆碱酯酶样(cholinesterase-like,ChEL)结构域中,p.C1995S位于Cys重复结构域Ⅲ中,均可引起TG错误折叠,并且在p.C 1995 S 伴TG 增高的病例中观察到缺乏伴侣蛋白激活,因而导致不完全的UPR 使错误折叠的TG释放入血,导致血清TG升高[10-12]。由此推测c.2149 C>T及c.5401+113 A>G 基因变异,可能引起TG 基因类似结构域改变,导致血清TG升高。此外CH患者甲状腺功能一般多表现为TSH增高,而既往4例病例中仅p.G2322S氨基酸改变者出现TSH增高,剩余3例TSH均未见明显异常。其中p.A 2215 D 氨基酸改变者为1 例男性患者,10 岁时因甲状腺肿大行部分甲状腺切除术,34 岁时再次因甲状腺肿大行甲状腺全切术,临床病理表现为滤泡增生,甲状腺碘摄取率明显升高,且经重组人TSH 刺激后血清TG 无明显升高;而p.C 1995 S 氨基酸改变者为2 例腺瘤性甲状腺肿的成年姐妹,甲状腺碘摄取率也明显升高。这3 例患者均考虑存在TG基因异常导致的CH,其中p.A2215D变异者变异的TG分子能够部分从内质网逃逸并合成少量的甲状腺激素,这或许可以部分解释为何携带TG基因变异的部分CH患者甲状腺功能仍为正常。

总之,发现TG 基因的两个新的变异,该复合杂合变异导致CH 患者血清TG 水平升高且不伴有甲状腺肿大,其原因可能与TG 折叠错误或不完全的UPR有关。

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