李理,潘兆军,梁继珍,王林
(广州市红十字会医院·暨南大学医学院附属广州红十字会医院,广州 510000)
胃癌是常见的消化系统恶性肿瘤,发展中国家较为常见,全球每年新发病例约95万,每年死亡病例约72万[1]。胃癌早期临床症状不明显,多数患者确诊时已处于中晚期,同时伴有局部侵袭和淋巴结转移,患者病死率较高,预后较差[2]。因而深入研究胃癌发生发展的机制,寻找新的早期诊断治疗肿瘤标志物十分必要。长链非编码RNA(LncRNA)是一类长度大于200个核苷酸的RNA调控分子,可分为基因内LncRNA、基因间LncRNA,正义LncRNA及反义LncRNA等多种类型,在多个层次调控基因表达,如其可结合靶基因启动子区抑制基因转录、作为染色质修饰因子介导染色质重构及结合信使RNA的初级转录本抑制翻译过程等[3]。近年研究表明,LncRNA参与炎症、肿瘤、心血管疾病及自身免疫等疾病的发生发展过程[4,5]。POU6F2-AS2为LncRNA的一种,其位于7p14.1,有7个外显子,其可编码产生LncRNA POU6F2-AS2。近年研究表明,LncRNA POU6F2-AS2参与肿瘤的调控过程,如在食管癌中发现LncRNA POU6F2-AS2特异性表达升高,LncRNA POU6F2-AS2与Ybx1蛋白相互作用,调控Ybx1蛋白染色质定位,进而调控DNA损伤修复反应,促进细胞的存活[6]。本研究通过检测胃癌组织中LncRNA POU6F2-AS2表达,分析其与临床病理特征及预后的关系,探讨其临床意义。
1.1 临床资料 收集2015年1月~2016年1月于我院诊治的82例行手术治疗的胃癌患者。纳入标准:①患者均经术后病理检查确诊为胃腺癌;②均为初次诊治,既往未接受过放化疗等治疗;③临床病理及随访资料完整,患者及家属均知情同意并已签署知情同意书;④患者预期寿命≥10年。排除标准:①合并其他恶性肿瘤病史;②合并严重的心肺肝肾等脏器功能不全;③合并类风湿关节炎等免疫系统疾病。其中男45例、女37例,年龄25~88(58.3±7.3)岁;伴淋巴结转移38例,无淋巴结转移44例;肿瘤直径:<5 cm 47例,≥5 cm 35例;肿瘤位置:贲门胃底部16例,胃体部14例,幽门胃窦部52例;肿瘤TNM分期:Ⅰ期15例,Ⅱ期21例,Ⅲ期41例,Ⅳ期5例;组织学分化程度:高中分化43例,低分化39例。随访起始时间2015年1月,以门诊或电话方式随访,随访内容包括患者生存情况及疾病控制情况,无失访病例,随访终止日期为2019年1月。
1.2 胃癌组织中LncRNA POU6F2-AS2表达检测 采用实时荧光定量PCR(qRT-PCR)法对胃癌组织及癌旁(距离癌组织5 cm以上)正常胃黏膜组织中LncRNA POU6F2-AS2表达进行检测。收集术中新鲜获取的癌组织及癌旁组织,冻存管内液氮速冻,转运至实验室后置于-80 ℃冰箱保存。分别取约50 mg组织,将组织冰上研磨后加入1 mL的TRIzol试剂,应用TRIzol法提取组织中总RNA,以总RNA为模板,用反转录试剂盒进行反转录,合成cDNA,分光光度计鉴定cDNA纯度,使A260/A280=1.9~2.1,-20 ℃冰箱保存待测。反应条件:16 ℃ 30 min,42 ℃ 30 min,85 ℃ 5 min。TRIzol试剂及试剂盒均购自美国Invitrogen公司,实验步骤严格按照反转录试剂盒说明书进行。2×SYBR Green PCR Master Mix试剂盒检测LncRNA POU6F2-AS2的表达。LncRNA POU6F2-AS2正向引物:5′-CATACTGAGCACTGTCTGA-3′,反向引物:5′-CTGTGTCCAATACTCCTTCT-3′,内参基因GAPDH正向引物:5′-GGGAGCCAAAAGGGTCAT-3′,反向引物:5′-GAGTCCTTCCACGATACCAA-3′。荧光定量PCR反应体系:2×SYBR Green PCR Master Mix 10 μL,正反向引物各0.5 μL,模板2 μL,加RNAase-free的双蒸水补足体系。反应条件:50 ℃ 2 min,95 ℃ 10 min,95 ℃ 15 s,60 ℃ 1 min,40个循环。所有反应于ABI7500实时定量PCR仪上完成,每个样本重复3次。采用相对Ct值方法进行数据分析,目的基因LncRNA POU6F2-AS2的相对表达量应用2-ΔΔCt法计算。
2.1 胃癌组织与癌旁组织中LncRNA POU6F2-AS2表达比较 胃癌组织与癌旁组织中LncRNA POU6F2-AS2相对表达量分别为1.203±0.341、0.210±0.076,胃癌组织中LncRNA POU6F2-AS2的相对表达量高于癌旁组织(t=37.178,P=0.000)。
2.2 胃癌组织中LncRNA POU6F2-AS2表达与患者临床病理特征的关系 胃癌组织中LncRNA POU6F2-AS2表达与肿瘤分期及组织学分级有关(P均<0.05),而与患者性别、年龄、肿瘤直径、肿瘤位置及是否淋巴结转移无关(P均>0.05)。肿瘤分期Ⅲ~Ⅳ期、低分化癌组织中LncRNA POU6F2-AS2表达分别高于肿瘤分期Ⅰ~Ⅱ期、高中分化癌组织(P均<0.05),见表1。
2.3 不同LncRNA POU6F2-AS2表达水平与患者生存预后的关系 患者均完成随访,随访时间2~48(32.1±6.7)个月,以胃癌组织中LncRNA POU6F2-AS2的相对表达量的中位数1.205为临界值,其中高LncRNA POU6F2-AS2表达组43例,低LncRNA POU6F2-AS2表达组39例。高LncRNA POU6F2-AS2表达组、低LncRNA POU6F2-AS2表达组3年生存率分别为34.9%(15/43)、61.5%(24/39),两组3年生存率比较差异有统计学意义(χ2=3.974,P=0.046),见图1。
表1 胃癌组织中POU6F2-AS2表达与患者临床病理特征的关系
图1 不同LncRNA POU6F2-AS2表达水平患者3年生存率比较
胃癌是常见的严重威胁人类健康的消化系统恶性肿瘤,发病率及病死率较高。我国胃癌疾病负担重,发病和死亡病例数约占世界的50%[7]。近年来,随着胃癌研究机制的不断深入,新的分子靶向治疗、免疫治疗及联合化疗在晚期胃癌的治疗中取得良好效果[8]。因此寻找个体化、多学科联合的诊断治疗模式是胃癌诊治发展的趋势。目前胃癌的发生发展机制尚不清楚,深入研究其发病机制,有助于胃癌患者的早期诊断、治疗选择及预后判断。
基因组的非编码序列占97%,其可表达非编码RNA,以往认为是翻译过程中的“垃圾信息”,但近年来大量研究表明,非编码RNA在发育、代谢、分化及进化过程中发挥重要的调节作用[9]。根据非编码RNA核苷酸长度,可分为小的非编码RNAs(<200 nt)和长的非编码RNAs(>200 nt)。反义长链非编码RNA(AS)是从非蛋白编码基因的相反链上转录而来。LncRNA在调节生物学活动时的作用方式具有多样性,如可调节染色质重塑、转录、转录后修饰等过程,影响炎症、自身免疫及肿瘤等疾病的发生发展过程[10]。近年来研究发现,LncRNA POU6F2-AS2在恶性肿瘤中表达升高,促进肿瘤细胞的增殖、侵袭、抑制凋亡等生物学作用,促进肿瘤的发生发展过程,导致患者不良的临床预后[6]。本研究中,胃癌组织中LncRNA POU6F2-AS2的相对表达量高于癌旁组织,差异有统计学意义,与以往研究报道一致[11]。目前其表达升高的机制尚不清楚,可能是胃癌肿瘤微环境中淋巴细胞、肿瘤相关巨噬细胞等分泌产生IL-6、TNF-α等细胞因子,通过相应的细胞信号传导通路,促进肿瘤细胞LncRNA POU6F2-AS2基因的表达,导致LncRNA POU6F2-AS2基因表达增加[12,13]。此外,癌组织中LncRNA POU6F2-AS2表达与肿瘤分期、组织学分级有关,低分化、肿瘤分期Ⅲ~Ⅳ期癌组织中LncRNA POU6F2-AS2表达明显升高,表明癌组织中LncRNA POU6F2-AS2表达参与肿瘤的发生发展过程。其机制一方面是LncRNA POU6F2-AS2作为内源竞争性RNA能抑制下游靶基因如SOX4等的表达[14],SOX4等转录因子表达增加能促进肿瘤细胞增殖、浸润、迁徙及黏附能力增强,促进肿瘤的远处转移[15]。另一方面,LncRNA POU6F2-AS2可能促进肿瘤细胞发生上皮间质转化,促进肿瘤的恶性进展。在宫颈癌中LncRNA HOXA11能促进上皮间质转化的关键转录因子如锌指转录因子(Snail)、E盒结合锌指蛋白1(ZEB1)等的表达,促进肿瘤细胞的侵袭和浸润,而在RNA干扰LncRNA HOXA11基因表达后肿瘤细胞的侵袭和浸润能力下降[16]。胃癌发生发展过程中存在大量差异表达的LncRNA,如HOX转录反义RNA(HOTAIR)、生长特异抑制物5(GAS5)等,在胃癌中参与各自不同的调控过程[17],因此在复杂的RNA调控网络中寻找关键的LncRNA,指导临床诊断、治疗及预后具有重要的意义。本研究中高LncRNA POU6F2-AS2表达患者3年OS明显低于低LncRNA POU6F2-AS2表达患者,表明LncRNA POU6F2-AS2有可能成为预测患者预后的生物学标志。但目前LncRNA POU6F2-AS2调控胃癌发生发展及预后的具体作用机制尚不清楚,有待进一步深入研究。
综上所述,胃癌患者癌组织中LncRNA POU6F2-AS2表达升高,检测胃癌组织中Lnc RNA POU6F2-AS2表达有助于胃癌患者的病情评估及预后判断。