陈英 曾志羽 郑慧蕾 文宏 龚丹萍
【摘 要】目的:检测miR-499a-3p在不稳定型心绞痛(Unstable angina,UA)与疑似心绞痛非冠心病患者血清中的表达差异。方法:收集实验组UA患者(n=30)及对照组疑似心绞痛的非冠心病患者(n=21)外周血。利用HiPure Serum/Plasma miRNA Kit分离方法,获取血清中总RNA。Real-Time PCR检测两组血清miR-499a-3p表达量。结果:通过相对定量分析2-△△Ct法算出两组miR-499a-3p的相对表达量,使用SPSS统计学软件分析,与对照组相比较,UA组血清miR-499a-3p的表达量明显升高(P<0.05)。结论:实验组较对照组血清miR-499a-3p的表达水平增高,可为UA的有效检测指标提供新的策略。
【关键词】UA; miR-499a-3p; cel-mir-39
【中图分类号】R395.3 【文献标识码】A 【文章编号】2095-6851(2018)04-00-02
前言
CHD包括隐匿型或无症状性冠心病、心绞痛、心肌梗死、缺血性心肌病、猝死五型。曾有多项研究表明,miR-499在心肌细胞中富集,当发生急性心肌梗死时,血清miR-499呈现高表达状态[1-3]。冠脉不稳定斑块破裂是急性心肌梗死的常见原因。目前国内外关于UA循环miRNA的研究相对较少,UA缺乏快速、有效的检测指标,所以探索UA患者循环miRNA表达差异意义重大。本文旨在探究miR-499a-3p与UA的关系,为血清miR-499a-3p作为早期诊断UA的潜在生物标记物提供依据,避免因冠脉不稳定斑块破裂、糜烂基础上继发血栓形成导致冠状动脉持续、完全闭塞。
1 实验材料与方法
1.1 材料
1.1.1 试剂:血清miRNA提取试剂盒、miRNA第一链cDNA合成、通用型SYBR GREEN I定量PCR试剂盒、焦磷酸二乙酯(DEPC)、Rnase free water。
1.1.2. 耗材:一次性吸头、0.2ml平盖磨砂PCR管、1.5mlEP管、0.2ml平盖透明八联PCR管。
1.1.3 仪器: 颗粒制冰机、高速冷冻离心机、快速震荡混匀器、PCR仪、定量PCR仪。
1.1.4.实验对象:30名患者冠脉造影证实血管狭窄≥50%,同时满足2012年不稳定心绞痛(UA)/非ST段抬高心肌梗死(NSTEMI)患者管理指南作为实验组。21名患者因心前区或胸骨后疼痛行冠脉造影且结果为阴性作为对照组。
2 方法
2.1 血清的收集和储存:将采取的5ml外周静脉血样收集在促凝管中并在4℃下静置10分钟。将样品在4℃以2500r/min离心5分钟以获得上清液。用移液枪取1ml血清加入到1.5ml离心管,最后放入-80℃低温冰箱保存直至使用。
2.2 血清miRNA 提取:取500ul的血清,加入25fmol/μl的cel-mir-39外参照(购自ABI公司)10μl后,按照说明书提取miRNA,总RNA(含小分子RNA)样品保存-80?C冰箱。
2.3 茎环法逆转录:逆转录引物序列为:cel-miR-39:
5-GTCGTATCCAGTGCAGGGTCCGAGGTATTCGCACTGGATACGACcaagct -3miR-499a-3p:
5- GTCGTATCCAGTGCAGGGTCCGAGGTATTCGCACTGGATACGACagcaca -3
逆轉录步骤和体系按说明书进行。
2.4 荧光定量PCR:cel-miR-39上游引物GGCCTCACCGGGTGTAAATCAG;miR-499a-3p上游引物GGCCAACATCACAGCAAGTCTG;通用下游引物AGTGCAGGGTCCGAGGTAT。反应体系:Mix10ul;上/下游引物0.6ul; cDNA1ul;双蒸水7.8ul。反应条件:95℃ 10min; 95℃ 15s; 60℃ 1min反应结束后,按仪器默认条件40个循环、60℃收集荧光。样本相对表达量的计算:按以上体系以及条件分别测定待测样本目的基因及外参的Ct值。2-△△Ct法计算基因表达的差异。
2.5 统计学分析:采用spss25.0软件进行数据分析,计量资料用均数±标准差 ()表示,两组间采用两独立样本t检验;计数资料组间采用2检验;若p<0.05表示差异有统计学意义。
3 结果
不稳定型心绞痛患者血清miR-499a-3p表达水平
3.1 两组miR-499a-3p相对表达量和年龄情况
3.2 两组性别、民族、高血压、糖尿病、血脂异常情况
上表进行组间四格表卡方检验: 2性别 =0.264,P=0.607;2民族=2.596,P=0.107;2高血压=1.244,P=0.265;2糖尿病=0.400,P=0.527;2血脂异常=0.415,P=0.520。结合1、2可以看出血清miR-499a-3p在两组患者表达存在差异,差异有统计学意义(P<0.05);而性别、年龄、民族、高血压、糖尿病、血脂异常进行统计分析,差异均无统计学意义(P>0.05)。
4 讨论
UA是CHD的一种常见类型;弥漫性动脉粥样硬化导致严重的胸痛,持续时间较长,易于恶化为急性心肌梗死(AMI)或猝死[4]。目前临床上缺乏快速、有效的生物标志物。近年来,miRNA作为生物标志物的研究已成为热点。
循环mirRNA是具有内源性核糖核酸酶活性的短RNA并在人体血清内呈稳定形式存在[5]。miRNA是一组长度为21-25个核苷酸组成的小型非编码RNA[6]。几项研究强调了循环miRNA作为急性冠脉综合征(ACS)诊断和预后生物标志物的潜力[7-10]。miRNA表达谱分析研究表明特定的miRNA在患病心脏中的表达水平发生变化,表明它们参与了心肌病[11,12]。基于miRNA的组织选择性,心肌细胞富含miRNA(诸如miR-1,miR208a,miR-208b,miR-133a),并已经提出miR-133b和miR-499作为急性心肌梗死患者潜在的诊断标志物[13-15]。
與cTnI和CK-MB相比,miR-499早在胸痛发作后1小时就存在于血浆中,甚至在胸痛发作后9小时仍继续增加,而CK-MB和cTnI需要在胸痛2小时后才能检测到,表明 miR-499水平可用于早期检测AMI,这支持了miR-499可能作为AMI的早期生物标志物的证据[3]。以上发现为血清miRNA-499a-3p作为潜在生物标志物用于辅助诊断 UA提供了实验依据。
本研究发现UA组血清miRNA-499a-3p 升高,这是支持血清miRNA-499a-3p作为UA的早期生物标志物的证据,能够早期诊断UA加以药物、手术等干预措施,减少UA进一步发展为AMI。但是考虑到样本量不是十分充足,血清miRNA-499a-3p作为潜在生物标志物用于UA临床诊断的价值尚需进一步研究。
综上所述,本研究分析不稳定型心绞痛与疑似心绞痛的非冠心病患者血清miR-499a-3p的表达差异,为血清miR-499a-3p作为潜在生物标志物用于临床辅助诊断UA提供了一种新的策略。
参考文献
Xin,Y.,C.Yang,and Z.Han,Circulating miR-499 as a potential biomarker for acute myocardial infarction.Ann Transl Med,2016.4(7):p.135.
Chistiakov,D.A.,A.N.Orekhov,and Y.V.Bobryshev,Cardiac-specific miRNA in cardiogenesis,heart function,and cardiac pathology (with focus on myocardial infarction).J Mol Cell Cardiol,2016.94:p.107-121.
Zhang,L.,et al.,Circulating miR-499 are novel and sensitive biomarker of acute myocardial infarction.J Thorac Dis,2015.7(3):p.303-8.
Galimberti,D.,et al.,Circulating miRNAs as potential biomarkers in Alzheimer's disease.J Alzheimers Dis,2014.42(4):p.1261-7.
Koberle,V.,et al.,Differential stability of cell-free circulating microRNAs:implications for their utilization as biomarkers.PLoS One,2013.8(9):p.e75184.
Ebert,M.S.and P.A.Sharp,Roles for microRNAs in conferring robustness to biological processes.Cell,2012.149(3):p.515-24.
Rognoni,A.,et al.,Novel biomarkers in the diagnosis of acute coronary syndromes:the role of circulating miRNAs.Expert Rev Cardiovasc Ther,2014.12(9):p.1119-24.
Sayed,A.S.,et al.,Diagnosis,prognosis and therapeutic role of circulating miRNAs in cardiovascular diseases.Heart Lung Circ,2014.23(6):p.503-10.
Li,J.,et al.,Circulating microRNAs as mirrors of acute coronary syndromes:MiRacle or quagMire? J Cell Mol Med,2013.17(11):p.1363-70.
Ahlin,F.,et al.,MicroRNAs as circulating biomarkers in acute coronary syndromes:A review.Vascul Pharmacol,2016.81:p.15-21.
Chen,J.F.,et al.,Targeted deletion of Dicer in the heart leads to dilated cardiomyopathy and heart failure.Proc Natl Acad Sci U S A,2008.105(6):p.2111-6.
Thum,T.,et al.,MicroRNAs in the human heart:a clue to fetal gene reprogramming in heart failure.Circulation,2007.116(3):p.258-67.
Wang,G.K.,et al.,Circulating microRNA:a novel potential biomarker for early diagnosis of acute myocardial infarction in humans.Eur Heart J,2010.31(6):p.659-66.
D'Alessandra,Y.,et al.,Circulating microRNAs are new and sensitive biomarkers of myocardial infarction.Eur Heart J,2010.31(22):p.2765-73.
Corsten,M.F.,et al.,Circulating MicroRNA-208b and MicroRNA-499 reflect myocardial damage in cardiovascular disease.Circ Cardiovasc Genet,2010.3(6):p.499-506.