黄林晶 侯毅翰 杨立勇 严孙杰 沈喜妹
(福建医科大学附属第一医院内分泌科 福建医科大学代谢病研究所,福建 福州 350005)
高脂状态下Exendin-4对胰岛βTc6细胞内胰-十二指肠同源盒-1表达、细胞增殖功能及胰岛素分泌能力的干预作用
黄林晶 侯毅翰 杨立勇 严孙杰 沈喜妹
(福建医科大学附属第一医院内分泌科 福建医科大学代谢病研究所,福建 福州 350005)
目的 探讨Exendin-4在高脂状态下是否具有抗脂毒性及其相关机制是否涉及胰-十二指肠同源盒(PDX)-1。方法 不同浓度的Exendin-4培育βTc6细胞不同时间,再应用1 mmol/L游离脂肪酸(FFA)干预24 h,检测细胞内PDX-1表达及增殖能力和胰岛素分泌功能。结果 ①Exendin-4干预6 h,各组细胞PDX-1表达、细胞增殖能力和胰岛素分泌功能均未见明显改善;②当Exendin-4干预延长至12~24 h,随着干预浓度增高,细胞内PDX-1逐渐升高,细胞增殖能力和胰岛素分泌功能明显好转。结论 高脂状态下适宜浓度的Exendin-4干预一定时限可上调β细胞内PDX-1的表达,并改善细胞增殖功能及胰岛素分泌能力。
Exendin-4;胰-十二指肠同源盒-1;胰岛素;游离脂肪酸;βTc6细胞
肥胖,尤其是中心型肥胖与2型糖尿病(T2DM)密切相关。大量证据表明血游离脂肪酸(FFA)是T2DM发病重要的危险因素〔1〕。Exendin-4是长效的胰升血糖素样肽(GLP)-1受体激动剂,而胰-十二指肠同源盒(PDX)-1是胰腺发生与发育相关的关键转录因子之一,其在调节胰腺的发育、分化及胰岛素分泌中起着至关的重要作用〔2〕。本研究对高脂状态下的βTc6细胞进行不同浓度和不同时限的Exendin-4干预,并观察细胞内PDX-1、增殖能力和的胰岛素分泌表达情况,旨在探讨Exendin-4在高脂状态下是否能保护胰岛β细胞及其抗脂毒性作用的相关机制。
1.1 一般资料 βTc6细胞购自美国,通过DMEM培养基培养,接种于6孔板中培养,实验分组为空白对照组(NC组)、1.0 mmol/L FFA干预组(1 mmol/L组)、5 nmol/L Exendin-4 +FFA干预组(5 nmol/L组)、10 nmol/L Exendin-4+FFA干预组(10 nmol/L组)、50 nmol/L Exendin-4+FFA干预组(50 nmol/L组)。各组分别加入含有不同浓度的Exendin-4或不含Exendin-4的DMEM培养基培育不同时间(6、12、24 h),再加入1.0 mmol/L FFA继续培养24 h。
1.2 MTT细胞活力分析 收集数生长期的βTc6细胞,计数按5×103/孔接种于96孔板中,培养使其贴壁。加入FFA、Exendin-4等各种实验因素作用后,每孔加入5 g/L四甲基偶氮唑盐(MTT)溶液孵育4 h,吸走培养液,每孔加150 μl的二甲基亚砜(DMSO),置于摇床上低速振荡约10 min,振摇10 min,使结晶溶解后用酶标仪于490 nm波长处测量吸光值(OD值)。细胞增殖抑制率=(对照组OD值-干预组OD值)/对照组OD值。
1.3 放射免疫法检测胰岛素 将βTc6细胞制成4×105/ml 单细胞悬液,接种于6孔板,加入FFA、Exendin-4等各种实验因素作用后,通过用磷酸盐缓冲液(PBS)洗涤后加入含25 mmol/L葡萄糖的DMEM培养基培育60 min,收集上清液,按照胰岛素放射免疫分析试剂盒说明书测定其浓度。
1.4 RT-PCR检测PDX-1 mRNA表达 按照Trizol试剂盒说明进行细胞mRNA总提取,在TaqDNA聚合酶催化下行聚合酶链反应。PDX-1扩增片段长度317 bp:上游:5'CAAGATTGTGCGGTGACCT3',下游:5'CGGCTATACCCAACTGGCT3';β-肌动蛋白(β-actin)扩增片段长度462 bp;按照2-△△Ct计算各组PDX-1相对表达量。实验重复3次,取平均值。
1.5 统计学方法 应用SPSS17.0统计软件进行单因素方差分析。
2.1 高脂状态下Exendin-4干预对βTc6细胞PDX-1 mRNA表达的影响 不同浓度的Exendin-4作用βTc6细胞6 h后,再予FFA 1 mmol/L干预24 h,细胞内PDX-1 mRNA表达与1 mmol/L组差异无统计学意义(P>0.05),各浓度组表达量均明显低于NC组(P<0.05)。当Exendin-4作用时间延长至12 h,5 nmol/L组PDX-1 mRNA表达量与1 mmol/L组差异无统计学意义(P>0.05);干预浓度为10 nmol/L时PDX-1 mRNA表达较5 nmol/L组增加(P<0.05);当浓度进一步升到50 nmol/L时,PDX-1 mRNA表达量继续上升(P<0.05),但与NC组相比仍较低(P<0.05)。干预24 h,5 nmol/L组PDX-1 mRNA表达与1 mmol/L组差异无统计学意义(P>0.05);10 nmol/L组PDX-1 mRNA的表达量较5 nmol/L组升高(P<0.05),但50 nmol/L组PDX-1 mRNA的表达未较10 nmol/L组进一步升高(P>0.05),这两组表达量均低于NC组(P<0.05)。见图1。
2.2 高脂状态下Exendin-4干预对βTc6细胞增殖活性的影响 当Exendin-4干预时间设定为6或12 h,5 nmol/L组βTc6细胞的增殖能力明显下降,与1 mmol/L组差异无统计学意义(P>0.05);10 nmol/L组细胞增殖活性较前改善,与1 mmol/L组相比OD值明显改善(P<0.05);50 nmol/L组OD值未较10 nmol/L组进一步升高。当Exendin-4干预时间增加到24 h,5 nmol/L组βTc6细胞的增殖活性较1 mmol/L组有所恢复(P<0.05);10 nmol/L组和50 nmol/L组βTc6细胞的增殖活性明显改善,两组OD值均较5 nmol/L组进一步升高(P<0.05)。在脂毒性状态下,当Exendin-4干预浓度固定时,在6、12 h干预组中βTc6细胞的增殖活性差异无统计学意义(P>0.05),但在24 h干预组其细胞增殖活性明显较前两组改善(P<0.05),见表1。
1~5分别为:NC,1 mmol/L,5 nmol/L,10 nmol/L,50 nmol/L组图1 Exendin-4干预12、24 h βTc6细胞PDX-1 mRNA的表达
分组6h12h24hNC组1.33±0.171.31±0.151.29±0.111mmol/L组0.35±0.031)0.36±0.041)0.34±0.051)5nmol/L组0.43±0.051)0.46±0.041)0.57±0.051)2)4)5)10nmol/L组0.75±0.061)2)3)0.75±0.131)2)3)0.94±0.101)2)3)4)5)50nmol/L组0.72±0.081)2)3)0.76±0.151)2)3)1.01±0.101)2)3)4)5)
与NC组相比:1)P<0.05;与1 mmol/L组相比:2)P<0.05;与5 nmol/L组相比:3)P<0.05;与6 h组相比:4)P<0.05;与12 h组相比:5)P<0.05;下表同
2.3 高脂状态下Exendin-4干预对βTc6细胞胰岛素分泌功能的影响 当Exendin-4干预时间设定为6或12 h,5 nmol/L干预组βTc6细胞的胰岛素分泌(GSIS)与1 mmol/L组无明显差异(P>0.05);10 nmol/L组的GSIS有所恢复,其虽然低于对照组(P<0.05),但较1 mmol/L组明显改善(P<0.05);50 nmol/L组的GSIS未较10 nmol/L组进一步升高(P>0.05)。当干预时间设定为24 h,5 nmol/L组的GSIS高于1 mmol/L组(P<0.05),而10、50 nmol/L组的GSIS较5 nmol/L组明显改善(P<0.05)。当Exendin-4干预浓度稳定时,随着干预时限的延长,细胞内GSIS逐渐改善。另经析因设计的方差分析表明,在高脂状态下,随着Exendin-4干预时限的延长及干预浓度的增加,βTc6细胞内GSIS得到更加明显改善,见表2。
表2 高脂状态下Exendin-4干预βTc6细胞的GSIS功能改变
长期高FFA血症可导致胰岛β细胞脂质过载,诱导细胞凋亡和坏死,从而使胰岛β细胞数目减少;也可使胰岛β细胞分泌功能损伤,胰岛素分泌减少〔3〕。既往研究表明,1 mmol/L FFA干预24 h对胰岛βTc6细胞的功能产生明显的抑制作用,细胞呈现出明显的凋亡趋势,细胞增殖能力和胰岛功能均受到明显抑制,细胞内转录因子PDX-1表达明显减少〔4,5〕。
本研究发现,高脂状态下βTc6细胞PDX-1 mRNA的表达、细胞增殖能力及胰岛分泌功能与Exendin-4存在明显的浓度及时间依赖性。不同浓度Exendin-4干预6 h不能有效拮抗高浓度FFA对细胞的脂毒性作用,且PDX-1基因表达未见好转,但10、50 nmol/L Exendin-4干预组内的细胞增殖能力和胰岛素分泌功能已较1 mmol/L高FFA组有一定程度提高,表明细胞增殖能力和胰岛分泌功能有所改善。这种PDX-1细胞转录因子的基因表达并未改善但β细胞相关功能却出现适当的恢复,考虑与Exendin-4干预时间较短不能激活PDX-1及其相关调控基因表达有关,但可能通过调控其他信号转导途径使β细胞的功能微弱改善〔6〕。但当干预时间延长至12~24 h,βTc6细胞PDX-1 基因表达明显改善,其增殖能力和胰岛素分泌功能也得到明显修复。本研究也显示低浓度Exendin-4干预12 h虽然PDX-1基因表达改善,但细胞增殖活性和分泌功能并未出现好转,考虑PDX-1作为胰岛β细胞内重要的转录调控因子,其发挥生物学效应须转位至细胞核内,虽然PDX-1表达改善,但胰岛β细胞内仍有大量脂质堆积,神经酰胺合成增加,致使另一个转录因子探讨叉头状转录因子(Fox)01与其竞争转位,从而使PDX-1转位至细胞核内受限无法完全发挥其生物学效应有关〔7〕。本研究也发现了50 nmol/L Exendin-4干预24 h PDX-1表达和胰岛细胞相关功能并未比10 nmol/L组得到改善,考虑可能与β细胞膜表面的GLP-1受体饱和性有关〔8〕。
Exendin-4在β细胞中发挥生物学效应与PDX-1密切相关。研究显示,Exendin-4要发挥其生物学效应必须与细胞膜上GLP-1受体相结合,而PDX-1是其发挥生物学作用所必需的重要转录因子〔9〕。Wang等〔10〕认为Exendin-4与GLP-1受体结合后通过cAMP/PKA这条信号转导通路上调β细胞内PDX-1的表达与核定位,从而发挥其生物学功能,并且腺苷酸环化酶激活剂Forskolin及8-溴-cAMP可以模拟GLP-1对PDX-1的正性作用〔11〕。
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〔2015-02-19修回〕
(编辑 苑云杰)
国家自然科学基金(81500632);福建省青年科研基金(2015-1-48)
杨立勇(1957-),男,博士生导师,教授,主任医师,主要从事糖尿病研究。
黄林晶(1982-),男,硕士,主治医师,主要从事糖尿病研究。
R341.6;R977.6
A
1005-9202(2016)20-4945-03;
10.3969/j.issn.1005-9202.2016.20.003