不同浓度尿酸对培养人脐静脉内皮细胞功能的影响
王云开周金华
(南昌大学第一附属医院心血管内科,江西南昌330006)
摘要〔〕目的探讨尿酸对人脐静脉内皮细胞(HUVECs)功能影响及可能机制分泌纤溶酶原激活物抑制剂1(PAI-1)蛋白的作用和可能的信号通路。方法分别用不同尿酸浓度〔蒸馏水(对照组)、119、238、476、952 μmol/L〕(n=6)干预体外培养的HUVECS 24 h,观察其形态、增殖、培养液中PAI-1蛋白的影响。观察476 μmol/L尿酸干预培养时,不同时间(1、3、6、12、24 h)对HUVECs培养液PAI-1蛋白及不同时间(15、30、60、120 min)细胞外信号调节激酶(ERK)1/2磷酸化水平的影响。用ERK1/2通路阻滞剂(PD98059,20 μmol/L)阻断尿酸诱导HUVECS分泌PAI-1蛋白。结果与对照组比较,浓度476、952 μmol/L尿酸使细胞增殖减少,培养液中PAI-1蛋白增加(P<0.05)。浓度为476 μmol/L尿酸作用HUVECs不同时间(1、3、6、12、24 h)对PAI-1蛋白的影响呈时间依赖性。不同时间(15、30、60、120 min)促ERK1/2磷酸化水平升高,与0 min组比较(P<0.05)。预先给予PD98059(20 μmol/L)作用后,尿酸476 μmol/L+ PD98059(20 μmol/L)能阻断PAI-1蛋白生成(P<0.05)。结论尿酸抑制HUVECs增生,增加PAI-1蛋白表达,同时增加ERK1/2磷酸化水平,ERK1/2通路阻滞剂PD98059部分抑制尿酸诱导HUVECS分泌PAI-1蛋白,尿酸通过ERK1/2信号通路诱导HUVECS分泌PAI-1蛋白。
关键词〔〕人脐静脉内皮细胞;细胞外信号通路1/2;纤溶酶原激活物抑制剂-1
中图分类号〔〕R322.1〔
第一作者:王云开(1963-),男,硕士,主任医师,硕士生导师,主要从事冠心病及高血压研究。
血清尿酸浓度的升高与氧化应激、内皮功能障碍、血管平滑肌细胞增殖等有密切联系,认为高尿酸是心血管事件的一项独立危险因素〔1~3〕。正常浓度的尿酸在人体血浆中是重要的抗氧化剂,60%的尿酸具有清除自由基的功能。但尿酸浓度升高到一定程度,达到高尿酸血症水平时,尿酸的抗氧化能力则被氧化应激所掩盖,从而导致心血管事件的发生〔4〕。而另有一些研究认为〔5〕,心血管疾病往往伴随尿酸排泄减少及尿酸产生增加的因素,像肾小球滤过率的下降、高胰岛素血症、肾血管收缩、利尿剂的使用以及组织缺血、氧化应激等,因此认为高尿酸是心血管疾病产生的结果。研究表明,高尿酸与高血压、胰岛素抵抗、肥胖、高脂血症、糖耐量异常等因素协同作用〔6〕,加重动脉硬化,促进心脑血管疾病的发生。本实验以人脐静脉内皮细胞(HUVECs)为模型,探讨尿酸是否激活丝裂原活化蛋白激酶(MAPK)信号途径,使细胞外信号调节激酶(ERK)ERK1/2磷酸化,继而诱导人脐静脉内皮细胞分泌纤溶酶原激活物抑制剂(PAI)-1。
1材料与方法
1.1主要试剂尿酸,PD98059,p-ERK1/2-抗(Santa Cruz公司,美国);SuperECL Plus超敏发光液(北京普利莱基因技术有限公司,中国);PAI-1 ELISA试剂盒(上海太阳生物技术公司,中国);HUVECs(南京凯基生物公司,中国);总蛋白提取试剂盒(江苏碧云天生物技术研究所,中国)。
1.2方法
1.2.1HUVECs的体外培养HUVECs复苏,传代培养,HUVECs的计数处理,按白细胞计数法,计数4个角的4个大方格的细胞总数,细胞浓度(细胞数/ml)=4个大方格内的活细胞/4×104×稀释倍数。
1.2.2细胞增殖的测定接种培养96孔培养板每孔中加入细胞悬液100 μl,密度为1×105/ml置于37℃、5%二氧化碳的孵箱内培养24 h后,将不同浓度的尿酸(119、238、476、952 μmol/L)分别加入长成良好的单层细胞中,每种浓度设6个复孔,对照组(蒸馏水)各6孔,使每孔最终体积为200 μl。MTT法于各孔内加入5 mg/ml MTT液0.02 ml,再培养4 h。在酶联免疫检测仪上测定490 nm波长处的吸光度值。
1.2.3PAI-1蛋白水平的测定将生长良好的HUVES密度调整为3×104个/ml,接种于24孔培养板中,37℃ 5%二氧化碳孵箱中培养,当达到80%的细胞呈汇合状态,换用无血清培养基同步24 h。
1.2.4实验分组①不同浓度尿酸作用24 h对HUVECs培养液中PAI-1的影响:对照组(蒸馏水)、尿酸(119、238、476、952 μmol/L)组。②尿酸476 μmol/L组作用不同时间(1、3、6、12、24 h)对HUVECs培养液中PAI-1的影响。③PD98059对尿酸作用HUVECS分泌PAI-1的影响。PD98059预处理1 h后再加尿酸476 μmol/L,每组设为4个复孔,取上清液,-20℃保存备用。
1.2.5ELISA检测PAI-1蛋白含量按试剂盒进行实验:①试剂重建,②加样,③洗涤,④加酶标抗体,⑤洗涤,⑥显色,⑦终止,⑧比色。数据处理:以A490对PAI-1标准品(ng/ml)在双对数坐标系上作标准曲线,待测样品PAI-1含量(ng/ml)可从标准曲线上查出其浓度。
1.2.6ERK1/2磷酸化水平的影响取第三代HUVECs,按照上述方法,以2×105/孔接种于6孔培养板中,用不含血清的RPMI-1640液培养以调节细胞生长的同步,24 h后去上清,并记为0时刻,按照试验分组,改用尿酸476 μmol/L培养细胞120 min,分别在0、15、30、60、120 min收集细胞样本。
1.2.6.1蛋白含量测定①制作标准曲线:按说明书配制。②检测样品蛋白含量。
1.2.6.2测定细胞t-ERK1/2、p-ERK1/2蛋白表达①对齐玻璃板,夹紧,短面朝外,垂直卡在架子上。②配制10%分离胶10 ml三蒸水3.95 ml;30 % 丙烯酰胺 3.3 ml;1.5 mol/L Tris-HCl(pH8.8)2.5 ml。③混匀。④配置5%浓缩胶5 ml;三蒸水3.4 ml;30 % 丙烯酰胺0.83 ml;1.0 mol/L Tris-HCl(pH6.8)0.63 ml。⑤混匀。⑥用流水冲洗浓缩胶。⑦上样。⑧电泳。⑨转膜。⑩膜的封闭和抗体孵育。结果检测:以X光胶片曝光。图片扫描保存为电脑文件,并用Bandscan分析软件将图片上每个特异条带灰度值的数字化。Western印迹结束后进行剥脱实验,然后用相应的total ERK抗体进行检测。X-ray膜扫描。对于每个样品,用p-ERK条带的强度除以t-ERK条带的强度。
1.3统计学方法采用SPSS13.0软件进行单因素方差分析及q检验。
2结果
2.1倒置显微镜HUVECs形态学观察接种于96孔板,至细胞生长贴壁,对照组HUVECs形态为薄椭圆形、多角形或长多角形,形态不一,胞质丰富且清轮廓清晰,细胞融合成单层,贴壁生长,形成典型的“铺路石样”结构。尿酸诱导后HUVECs形态:尿酸(119、238 μmol/L)作用24 h细胞形态基本正常,对照组无明显差别,随着浓度的增加,细胞损伤程度逐渐加重,尿酸476 μmol/L作用24 h后细胞稍被拉长,细胞形态较规则,稍皱缩。尿酸952 μmol/L作用24 h后出现明显的形态变化,细胞明显拉长,皱缩明显,细胞间隙增大。见图1。
图1 各组培养的HUVECs 24 h镜下形态(×100)
2.2不同浓度尿酸作用HUVECs 24 h对细胞增殖影响尿酸(119、238 μmol/L)组(0.679±0.016、0.670±0.028)与对照组(0.689±0.015)相比,对内皮细胞增殖的影响不明显。尿酸(476、952 μmol/L)组(0.584±0.021、0.540±0.020)与对照组相比,细胞增殖随浓度增加而减少(P<0.05)。
2.3不同浓度尿酸作用HUVECS 24 h对培养液中PAI-1蛋白的影响ELISA结果:对照组能诱导HUVECS分泌PAI-1(26.26±3.43)ng/ml,分别与尿酸(119、238 μmol/L)组(30.29±4.41、34.33±1.04)ng/ml比较,差异无统计学意义(P>0.05),分别与尿酸(476、952 μmol/L)组(67.83±6.35、77.4±10.36)ng/ml比较,PAI-1蛋白差异均有统计学意义(P<0.05)。尿酸952 μmol/L组PAI-1蛋白分泌达高峰,与尿酸476 μmol/L组比较,PAI-1蛋白浓度差异无统计学意义(P>0.05)。尿酸诱导HUVECS分泌PAI-1蛋白的量随浓度的增加而增加,呈浓度依赖性。
2.4尿酸(476 μmol/L)组作用HUVECs不同时间对培养液中PAI-1蛋白的影响ELISA结果:随尿酸作用时间的延长,PAI-1蛋白分泌量亦增加,呈时间依赖性。6、12、24 h(9.95±0.13、26.47±3.35、84.90±8.74)ng/ml分别与1 h(1.39±0.01)ng/ml PAI-1蛋白比较,均有统计学意义(P<0.05)。
2.5尿酸对HUVECs ERK1/2磷酸化水平的影响Western印迹结果显示,HUVECs同时表达ERK蛋白的2种亚型,即ERK1和ERK2,分子量分别为42和44 kD。对照组p-ERK1/2蛋白表达活性很低,与尿酸476 μmol/L刺激HUVECS不同时间段比较,总ERK1/2蛋白没有变化,但p-ERK1/2蛋白表达明显增高,尿酸作用30 min组p-ERK1/2表达条带增强最明显,与对照组相比较差异有统计学意义(P<0.05)。见图2。
2.6PD98059对尿酸作用HUVECS分泌PAI-1的影响ELISA结果显示,对照组PAI-1蛋白表达很低(26.26±3.43)。尿酸476 μmol/L组较对照组明显增多(67.83±6.35,P<0.05);预先给予ERK1/2通路阻滞剂PD98059(20 μmol/L)作用后,与尿酸组476 μmol/L 比较,阻断尿酸诱导的PAI-1蛋白生成差异有统计学意义(50.04±4.34,P<0.05)。
p-ERK1/2:(both bands)细胞外信号调节酶1/2 Western印迹条带;t-ERK1/2:(total)细胞外信号调节酶1/2 Western印迹条带 图2 尿酸476 μmol/L作用HUVECs 不同时间对ERK1/2磷酸化水平的影响(n=3)
3讨论
本实验说明高浓度的尿酸对HUVECs有损害作用。组织型纤溶酶原激活物(t-PA) 和尿激酶纤溶酶原激活剂(u-PA)是纤溶激活系统的主要激活剂,使纤溶酶原变成纤溶酶,而纤溶酶的形成的调节主要通过PAI-1,PAI-1是t-PA和u-PA生理性抑制剂〔7〕。也有研究发现一些细胞因子通过ERK1/2通路诱导人平滑肌内皮细胞〔8〕、鼠肾小球膜细胞〔9〕分泌PAI-1。
在冠状动脉循环中,t-PA和u-PA与血栓调节素结合起主要的内源性防止血栓形成作用,因此,PAI-1的增加有可能增加冠状动脉血栓形成的危险,有实验和流行病学数据支持PAI-1导致缺血性心血管疾病的发展〔10〕,在年轻的急性心肌梗死生存者中测定PAI-1明显增加,在心梗生存者中血浆PAI-1活性亦增加,导致再发心肌梗死,在中年男女中,PAI-1抗原与活性增加了心梗的风险〔11〕,且独立于其他传统的危险因素,低血浆纤溶活性反映了PAI-1活性的增加,有可能增加年轻男性患缺血性心脏病的风险〔12〕。也有实验证据支持这些流行病学数据,使用转基因小鼠产生稳定型人类PAI-1过表达,发展成冠状动脉血栓形成和心肌梗死〔13〕。
本实验发现尿酸呈时间及浓度依赖性的诱导HUVECs PAI-1分泌。MAPK信号转导通路是尿酸的重要信号通路之一。PD98059可以有效地减弱尿酸对PAI-1蛋白合成的促进作用,说明ERK通路是PAI-1合成的上游调节因素,参与尿酸上调PAI-1表达的机制。本文发现ERK1/2通路拮抗剂PD98059不能完全阻断尿酸促进PAI-1的合成作用,其原因可能是任何一条信号通路的作用都不是独立的,胞内各信号之间相互协同、相互制约的关系对完成刺激的传递过程十分重要。尿酸可能同时激活了细胞内(包括P38、PI-3激酶通路等)的多条信号转导通路,而各信号通路之间普遍存在的信号串话现象,使得尿酸的刺激作用不能完全被PD98059阻断。
近年来尿酸与心血管疾病间的关系越来越受关注,目前公认的观点是高浓度的尿酸具有致心血管疾病的作用。本研究初步证实了尿酸通过ERK1/2途径诱导内皮细胞PAI-1合成,有助于更好地理解尿酸与冠心病之间的关系。
4参考文献
1Okura T,Higaki J,Kurata M,etal.Elevated serum uric acid is an independent predictor for cardiovascular events in patients with severe coronary artery stenosis:subanalysis of the Japanese Coronary Artery Disease (JCAD)Study〔J〕.Circ J,2009;73(5):885-91.
2Holme I,Aastveit AH,Hammar N,etal.Uric acid and risk of myocardial infarction,stroke and congestive heart failure in 417734 men and women in the Apolipoprotein Mortality Risk study(AMORIS)〔J〕.Intern Med,2009;266(6):558-70.
3Chen JH,Chuang SY,Chen HJ,etal.Serum uric acid level as an independent risk factor for all-cause,cardiovascular,and ischemic stroke mortality:a Chinese cohort study〔J〕.Arthritis Rheum,2009;61(2):225-32.
4Strazzullo P,Puig JG.Uric acid and oxidative stress:relative impact on cardiovascular risk〔J〕.Nutr Metab Cardiovasc Dis,2007;17(6):409-14.
5薛丽,张爱伦.高尿酸血症与心血管疾病研究进展〔J〕.医学综述,2006;12(2):90-1.
6Chu NF,Wang DJ,Lion SH,etal.Relationship between hyperuricemia and other cardiovascular disease risk factors among adult males in Taiwan〔J〕.Eur J Epidemiol,2000;16(1):13.
7Fay WP.Plasminogen activator inhibitor-1,fibrin,and the vascular response to injury〔J〕.Trends Cardiovasc Med,2004;14:196-202.
8Demyanets S,Kaun C,Rychli K,etal.The inflammatory cytokine oncostatin M induces PAI-1 in human vascular smooth muscle cells in vitro via PI3-kinase and ERK1/2-dependent pathways〔J〕.Am J Physiol Heart Circ Physiol,2007;293(3):H1962-8.
9Guo B,Inoki K,Isono M,etal.MAPK/AP-1-dependent regulation of PAI-1 gene expression by TGF-beta in rat mesangial cells〔J〕.Kidney Int,2005;68(3):972-84.
10Kohler HP,Grant PJ.Plasminogen-activator inhibitor type 1 and coronary artery disease〔J〕.N Engl J Med,2000;342:1792-801.
11Hamsten A,Wiman B,de Faire U,etal.Increased plasma levels of a rapid inhibitor of tissue plasminogen activator in young survivors of myocardial infarction〔J〕.N Engl J Med,1985;313:1557-63.
12Hamsten A,de Faire U,Walldius G,etal.Plasminogen activator inhibitor in plasma:risk factor for recurrent myocardial infarction〔J〕.Lancet,1987;2:3-9.
13Thogersen AM,Jansson JH,Boman K,etal.High plasminogen activator inhibitor and tissue plasminogen activator levels in plasma precede a first acute myocardial infarction in both men and women:evidence for the fibrinolytic system as an independent primary risk factor〔J〕.Circulation,1998;98:2241-7.
〔2013-10-29修回〕
(编辑赵慧玲/曹梦园)