贾 振, 孙 建, 李鸿珠, 李宏霞, 彭 雪, 邵洪江, 杨金霞, 徐长庆, 白淑芝△
(1. 黑龙江中医药大学附属第一临床医院周围血管病科, 哈尔滨 150040; 2. 牡丹江医学院机能学教研室, 黑龙江 牡丹江 157011;3. 哈尔滨医科大学基础医学院病理生理学教研室, 黑龙江 哈尔滨 150086)
钙敏感受体对大鼠糖尿病性心肌病的影响*
贾 振1, 孙 建2, 李鸿珠3, 李宏霞3, 彭 雪3, 邵洪江3, 杨金霞3, 徐长庆3, 白淑芝3△
(1. 黑龙江中医药大学附属第一临床医院周围血管病科, 哈尔滨 150040; 2. 牡丹江医学院机能学教研室, 黑龙江 牡丹江 157011;3. 哈尔滨医科大学基础医学院病理生理学教研室, 黑龙江 哈尔滨 150086)
目的:观察钙敏感受体(CaSR)在大鼠糖尿病性心肌病中的作用。方法:30只雄性Wistar大鼠随机分为对照组、糖尿病4周组和糖尿病8周组(n=10)。高糖高脂饮食4周后腹腔注射STZ(30 mg/kg)建立糖尿病模型。通过透射电镜观察心肌超微结构的变化,通过Western blot检测心肌组织CaSR、肌浆网 Ca2+-ATPase (SERCA)和受磷蛋白(PLN)的蛋白表达。结果:与对照组相比,随着病程的延长糖尿病组大鼠心肌CaSR、SERCA蛋白表达降低,PLN表达增加,心肌结构损伤逐渐加重。结论:在大鼠糖尿病性心肌病进展过程中CaSR的表达逐渐降低,并可能导致钙稳态紊乱参与糖尿病心肌病的发生。
钙敏感受体;糖尿病性心肌病;大鼠
糖尿病性心肌病(diabetic cardiomyopathy,DCM)是糖尿病的严重合并症之一[1],发病机制复杂,迄今尚未完全阐明。钙敏感受体(calcium-sensing receptor, CaSR)属于G蛋白耦联受体,目前,关于CaSR的研究已经成为国际上的热点,国内则刚起步不久,对其研究主要集中在慢性肾衰[2]和甲状旁腺等疾病上,在心血管系统研究的较少[3],有关CaSR在DCM发生发展中的作用更是鲜见报道。本实验旨在观察大鼠DCM不同时间点心肌组织CaSR蛋白表达的变化及心肌损伤的程度,拟进一步揭示DCM的发生机制。
1.1 主要试剂与器材
蛋白定量试剂盒(北京碧云天),CaSR抗体(Alpha Diagnostic International Inc., USA);PLN、SERCA、GAPDH多克隆抗体(Santa Cruz Biotechnology, Santa Cruz, CA);其他试剂为国产分析纯。主要器材包括BECKMAN 低温离心机,紫外凝胶检测和成像系统( Bio -Rad),酶标仪( DG3022 A),Western blot电泳槽(北京六一厂)等。
1.2 实验动物与分组
健康 Wistar 雄性大鼠180~250 g,由哈尔滨医科大学附属二院动物研究所提供。30只雄性大鼠,饲养在22℃~24℃、12 h∶12 h昼夜循环的安静环境中。适应1周后,动物随机分为3组:(1)正常对照组(Control);(2)糖尿病4周组(Dia-4w);(3)糖尿病8周组(Dia-8w)(n=10)。对照组大鼠给予正常的饮食饮水。糖尿病组大鼠喂养高糖高脂饮食(成分:20%糖,10%猪油,2%胆固醇,1%胆酸钠,67%基础饲料)。一个月后,大鼠禁食12 h,糖尿病组通过腹腔注射低剂量佐链脲菌素( STZ, 30 mg/kg,溶于0.1 mol/L枸橼酸钠溶液中)。对照组给予单独注射枸橼酸钠。三天后检测血糖高于16.7 mmol/L为造模成功。观察大鼠一般状态,每周监测血糖、饮食、饮水量,直至实验结束。
1.3 血糖、甘油三酯、胆固醇和胰岛素测定
实验结束前1 d,从下腔静脉采血离心,于4℃冰箱静置15 min,然后用低温离心机离心3 000 r/min×5 min后取上清。甘油三酯和胆固醇通过全自动生化检测仪检测。血清胰岛素通过商业化ELISA试剂盒(ADL,USA)检测,步骤完全按照试剂盒说明书操作。通过大鼠尾静脉采血用血糖仪(ACCU CHEK,Roche,Germany)检测血糖。
1.4 电镜观察超微结构
取心室肌组织,PBS 洗涤 1 遍,4℃,2.5% 戊二醛固定;1% 锇酸固定,常规乙醇、丙酮逐级脱水,环氧树脂包埋,超薄切片,铅-铀双重染色,用H-7650型透射电镜观察并摄片。
1.5 Western blot 检测蛋白的表达
取各组大鼠心室肌组织,液氮研磨后加入组织裂解液,4℃ 裂解 1 h,提取蛋白。取 50 μg 总蛋白样品进行 10% 变性聚丙烯酰胺凝胶电泳,随后转印至 PVDF 膜,分别用 CaSR 抗体(1∶2 000)、PLN(1∶500)、SERCA(1∶1 000)、GAPDH(1∶500)抗体, 4℃ 震荡过夜。 再用二抗(1∶1 000 的羊抗兔 IgG 二抗;1∶1 000 的兔抗鼠 IgG 二抗,碱性磷酸酶标记)孵育1 h后显色,在凝胶成像系统下拍照、分析。计算各蛋白条带的光密度值,蛋白表达水平用其与内参 GAPDH 光密度比值来表示。
1.6 统计学处理
2.1 大鼠一般状态
实验期间,正常对照组大鼠精神状态良好、反应敏捷、动作迅速、色光泽。糖尿病组大鼠全部出现了大量饮水,饮食增多,精神萎靡不振,反应迟钝,动作缓慢,毛色晦暗,视力下降(表1)。
GroupWaterintake(ml/day)Foodintake(g/day)Control28.0±2.112.5±1.1Dia-4w180.0±5.6*38.5±2.3*Dia-8w230.0±6.2*#45.0±2.9*#
*P<0.05vscontrol;#P<0.05vsdia-4w
2.2 血糖、胰岛素、甘油三酯和胆固醇测定
与正常对照组大鼠相比,糖尿病组大鼠随机血糖显著升高(P<0.05),血清胆固醇(cholesterol, Chol)、甘油三酯(triglyceride, TG)和胰岛素显著升高(P<0.05),尤其糖尿病大鼠8周组血清胰岛素水平更高(P<0.05,表2)。
GroupGlucose(mmol/L)Chol(mmol/L)TG(mmol/L)Insulin(pmol/L)Control5.2±0.21.15±0.130.34±0.05268.70±12.01Dia-4w29.6±2.8*21.07±2.61*4.09±0.37*575.25±46.25*Dia-8w26.8±2.5*19.87±1.31*3.79±0.57*658.40±32.96*#
Chol: Cholesterol; TG: Triglyceride; Dia: Diabetic
*P<0.05vscontrol;#P<0.05vsdia-4w
2.3 透射电镜下各组心肌组织超微结构的改变
正常对照组心肌细胞排列整齐,心肌细胞质膜连续、完整,肌丝排列整齐,线粒体丰富,大小均一、排列整齐。糖尿病组心肌细胞排列紊乱,心肌细胞质膜模糊、断裂,线粒体肿胀,空泡样变,大小不一,排列紊乱,糖尿病8周组更为明显(图1)。
Fig. 1 Ultrastructure alteration of rat myocardium in different goups (×5 000)
2.4 心肌组织 CaSR、SERCA、PLN 蛋白表达的变化
与正常对照组相比,糖尿病组大鼠心肌组织CaSR表达量随病程延长逐渐降低(P<0.05,图2A),同时SERCA表达逐渐减少,PLN表达升高,SERCA/PLN比值逐渐降低,说明钙泵的活性逐渐降低(图2B)。
Fig.. 2 Protein expression of CaSR(A), SERCA and PLN(B) in heart CaSR: Calcium-sensing receptor; SERCA: Ca2+-ATPase; PLN: Phospholamban; Dia: Diabetic*P<0.05vscontrol;#P<0.05vsdia-4w
本实验通过复制大鼠DCM 动物模型,观察大鼠的一般状态及超微结构变化,并检测心肌组织CaSR及相关钙调控蛋白的表达来探讨CaSR在大鼠DCM发生中的作用。
本研究采用高糖高脂饮食联合小剂量STZ腹腔注射的方法来复制大鼠2型DCM 动物模型。与对照组相比,模型组大鼠出现与临床糖尿病患者类似的表现(多食和多饮),血糖、甘油三酯、胆固醇显著升高,血清中胰岛素水平也明显升高,表明出现了胰岛素抵抗。上述结果,说明本实验成功建立了大鼠2型DCM 动物模型。
与正常大鼠相比,糖尿病大鼠心肌超微结构发生明显的改变,出现了线粒体肿胀、肌原纤维断裂和细胞核染色质的浓缩和边集化。心肌超微结构的损伤符合Cooper GJ[4]、林中民等[5]报道的DCM的特点。由此可见,我们成功地复制了2型糖尿病大鼠诱导的DCM模型。
DCM 的发生机制十分复杂,迄今尚不十分清楚。本文采用Western blot 方法检测了糖尿病大鼠4周和8周时心肌CaSR蛋白的表达,结果发现糖尿病大鼠心肌CaSR蛋白的表达呈时间依赖性降低,这一变化和心肌超微结构损伤的程度密切相关。Ward等用STZ复制的大鼠糖尿病模型,2周后发现肾脏CaSR表达降低约50%。Weston 等发现,ZDF大鼠肠系膜动脉CaSR表达降低是引起糖尿病血管合并症的重要原因之一[6]。看来,糖尿病或肥胖症大鼠其他器官同我们观察到的心肌相同,CaSR的表达也是降低的。
目前认为,DCM与慢性心力衰竭一样,伴有Ca2+调控蛋白表达及活性异常,这是造成心肌舒缩功能异常的主要原因[7]。PLN和SERCA是心肌细胞 Ca2+调控的重要蛋白,在糖尿病状态下发生失调,必然引起心肌功能受损[8]。本研究发现,2型糖尿病大鼠4周和8周心肌组织 SERCA表达减少,PLN表达增强。SERCA活性降低可引起肌浆网摄取Ca2+能力下降,直接导致心肌细胞钙稳态紊乱从而造成心脏功能异常、引起心肌损伤。
综上,本研究发现2型糖尿病大鼠心肌组织CaSR表达呈时间依赖性降低,DCM大鼠心肌出现钙稳态紊乱,造成心肌的进一步损伤,这将为临床DCM的治疗提供新的理论基础。
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[4] Cooper GJ, Phillips AR, Choong SY,etal. Regeneration of the heart in diabetes by selective copper chelation [J].Diabetes, 2004, 53(9): 2501-2508.
[5] 林中民, 焦立卓, 郑 怡, 等. 姜黄素衍生物B06对2型糖尿病大鼠心肌的保护作用及其机制探讨[J]. 中国应用生理学杂志, 2014, 30(1): 38-42.
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Decreased expression of calcium-sensing receptor involved in the progression of diabetic cardiomyopathy
JIA Zhen1, SUN Jian2, LI Hong-zhu3, LI Hong-xia3, PENG Xue3, SHAO Hong-jiang3,YANG Jin-xia3, XU Chang-qing3, BAI Shu-zhi3△
(1.Department of Peripheral Angiopathy, the First Affiliated Hospital of Heilongjiang University of Chinese Medicine, Harbin 150040;2. Mudanjiang Medical College, Mudanjiang 157011; 3. Department of Pathophysiology, Harbin Medical University, Harbin 150086, China)
Objective: To observe the dynamic expression of calcium-sensing receptor(CaSR) in myocardium of diabetic rats. Methods: Thirty male Wistar rats were randomly divided into 3 groups including control, diabetic-4 week and diabetic-8 week groups(n=10). The type 2 diabetes mellitus models were established by intraperitoneal injection of streptozotocin (STZ, 30 mg/kg) after high-fat and high-sugar diet for one month. The cardiac morphology was observed by electron microscope. Western blot analyzed the expression of CaSR, phospholamban (PLN), a calcium handling regulator, and Ca2+-ATPase(SERCA) in cardiac tissues. Results: Compared with control group, the expressions of CaSR and SERCA were decreased, while the expression of PLN was significantly increased in a time-dependent manner in diabetic groups. Meanwhile diabetic rats displayed abnormal cardiac structure. Conclusion: These results indicate that the CaSR expression of myocardium is reduced in the progression of DCM, and its potential mechanism may be related to the impaired intracellular calcium homeostasis.
calcium-sensing receptor; diabetic cardiomyopathy; Wistar rat
国家自然科学基金(81200160,81270273,81270311, 81070123,81300163);黑龙江省自然科学基金(QC2011C022)
2014-07-17 【修回日期】2014-10-17
R363.2
A
1000-6834(2015)01-035-03
10.13459/j.cnki.cjap.2015.01.011
△【通讯作者】Tel: 0451-86674548; E-mail: baishuzhi12@163.com