“乳菌宝”益生菌剂对断奶仔猪肠道生理生化指标的影响

2013-09-20 13:24张淑梅钟颖婷林标声沈绍新邱丰艳
东北农业大学学报 2013年12期
关键词:乳酸菌益生菌断奶

王 华,张淑梅,钟颖婷,林标声,沈绍新*,邱丰艳

(1.龙岩学院生命科学学院,福建 龙岩 364012;2.福建省预防医学与兽医生物技术重点实验室,福建 龙岩 364012)

肠道健康对断奶仔猪生产性能的影响极为显著[1],而益生菌剂具有良好的生物学功能,能调节动物消化道微生物菌群的区系平衡,改善动物体内消化酶活性,促进食物消化吸收,提高饲料的利用率,促进仔猪生长发育[2]。益生菌剂还具有调节仔猪机体抵抗疾病能力,减少猪粪排出、改善饲养环境、降低生猪饲养污染等优点[3],对解决日益严重的抗生素耐药性和药物残留问题起到重要作用[4-6]。

本文通过研究断奶仔猪日粮中添加不同浓度的含高活性、高营养物质的乳酸菌、酵母菌、维生素的“乳菌宝”益生菌菌剂,考查其对仔猪排泄粪便、肠道内容物的氨浓度、pH、消化酶活性、微生物总数、腹泻指数等生理生化指标影响,探讨益生菌剂对断奶仔猪肠道作用机理和影响作用,为其在仔猪生产中的应用提供科学依据。

1 材料与方法

1.1 益生菌剂与培养基

“乳菌宝”,市场购买,含乳酸菌、酵母菌等益生菌和单体维生素、载体等,每千克产品含:乳酸菌1.0×1011cfu·mL-1、酵母菌1.5×1012cfu·mL-1、VA 2.4×106IU、VD34.5×105IU、VE 6 400 mg、VK 520 mg、VB1570 mg、VB22 650 mg、VB6650 mg、VB128 mg。

微生物培养基[5]:细菌总数:平板计数琼脂(PCA)培养基;大肠杆菌,麦康凯培养基;沙门氏菌:SS琼脂培养基;乳酸菌:MRS培养基;酵母菌:YPD培养基。

1.2 试验猪场

福建省龙岩市龙马原种猪场。

1.3 动物与设计

实验动物:选取体重(约8~10 kg)相近,健康状况良好的杜×长×大三元杂交断奶仔猪120头,公母各半,随机分为4组,每组10头,3个重复。其中一组为对照组,饲喂基础日粮;另三组为试验组:Ⅰ组饲喂基础日粮+0.1%益生菌剂;Ⅱ组饲喂基础日粮+0.15%益生菌剂;Ⅲ组饲喂基础日粮+0.2%益生菌剂。试验期间,仔猪自由采食与饮水,做好饲养环境卫生和疾病防控。试验时间28 d,试验开始和结束时分别测定各组仔猪的体重,记录所消耗的饲料总量,分析仔猪的日均采食量、日均增重及料肉比。试验期间注意观察和记录仔猪健康状况,于第28天试验结束时的当天早上8点前采集各组样品,用于生理生化指标和微生物数量的测定。

1.4 样品采集与预处理

粪便及肠道内容物的取样[6]:分别从各试验组中采集新鲜粪便、每组随机抽取4头试验仔猪的盲肠、结肠、十二指肠、空肠和回肠的肠道内容物,-20℃密封冷冻保存待用。其中盲肠、结肠肠道内容物用于测定氨浓度和pH;十二指肠、空肠和回肠肠道内容物用于测定肠道酶活力和绒毛长度;盲肠、回肠和粪便用于测定微生物总数。

肠道内容物酶活力测定溶液的准备:将各肠道内容物减碎,取10 g样品用0.14 moL·L-1KCL溶液溶解,匀浆,定容至50 mL,4℃4 000 r·min-1离心10 min,取上清液-20℃低温保存待用。

1.5 样品测定[7-8]

氨浓度测定:纳氏试剂比色法测定。pH测定:pH仪测定(型号FE.20)。

消化酶活性测定:淀粉酶活性采用碘-淀粉比色法测定;总蛋白酶活性采用福林-酚试剂法测定。

微生物总数测定:采用平板菌落计数法测定所采集样品的细菌总数、大肠杆菌、沙门氏菌、乳酸菌和酵母菌。

腹泻指数:腹泻指数的统计方法及评分标准参照Barnet等[7]方法,硬粪便为1级,严重腹泻,不成形,水分高的为5级。

1.6 数据分析

采用SPSS 10.0 One-Way ANOVA中Waller-Duncan多重比较对所得的数据进行分析。

2 结果与分析

2.1 益生菌剂对断奶仔猪生长性能的影响

益生菌剂对断奶仔猪生长性能的影响见表1。结果表明,与对照组相比,添加不同浓度益生菌剂的三个试验组的采食量、日增重、料重比均优于对照组,其中试验Ⅱ、Ⅲ组各项指标差异达到显著水平(P<0.05),但试验Ⅱ、Ⅲ组间各项指标差异不显著(P>0.05),说明基础日粮中添加0.15%益生菌剂(试验Ⅱ组)即可促进仔猪生长,且对仔猪生长影响效果显著。

2.2 益生菌剂对断奶仔猪肠道氨浓度及pH影响

pH影响动物体内消化环境,较低的pH有利于有益菌群生长,而病原微生物的生长则受到抑制。而肠道内的氨对动物有毒副作用,会破坏肠细胞表明,肠道内氨浓度的降低,有利于仔猪机体健康生长[5]。

益生菌剂对断奶仔猪肠道氨浓度及pH影响见表2。结果表明,添加不同浓度益生菌剂的3个试验组的肠道(盲肠、结肠)氨浓度及pH均与对照组差异显著(P<0.05),说明添加益生菌剂能降低仔猪肠道氨浓度及pH的作用,且效果显著。

表1 益生菌剂对断奶仔猪生长性能的影响Table1 Effect of probiotics on growth performance of weaned piglets

表2 益生菌剂对仔猪肠道氨浓度、pH的影响Table2 Effect of probiotics on intestinal ammonia concentration and pH of weaned piglets

2.3 益生菌剂对断奶仔猪肠道酶活性的影响

益生菌剂对断奶仔猪肠道酶活性的影响见表3,结果表明,与对照组相比,添加不同浓度益生菌剂的3个试验组十二指肠、空肠的淀粉酶、总蛋白酶活性均显著提高(P<0.05),但3个试验组组间差异均不显著(P>0.05);回肠的淀粉酶、总蛋白酶活性提高不显著(P>0.05),但也表现出更好的趋势性。表明益生菌剂中添加的乳酸菌、酵母菌等能分泌出相应的淀粉酶、蛋白酶,提高仔猪肠道消化酶的活性,帮助仔猪肠道消化,促进物质吸收。

表3 益生菌剂对仔猪肠道淀粉酶、总蛋白酶活性的影响Table3 Effect of probiotics on intestinal amylase and total protease activity of weaned piglets

2.4 益生菌剂对断奶仔猪肠道绒毛高度的影响

仔猪断奶后,饮食由液体乳汁变成固体饲料,其绒毛长度会受到固体物质的磨损而变短,影响仔猪的消化和吸收能力[10]。添加不同浓度的益生菌剂能改善受损肠粘膜的修复,提高仔猪肠道绒毛高度,从而促进小肠的发育成熟,促进其物质吸收。结果见表4。结果表明,3个试验组的十二指肠、空肠与回肠的绒毛高度均比对照组试验有所提高,其中试验Ⅱ、Ⅲ组与对照组的差异达到显著水平(P<0.05)。

2.5 益生菌剂对断奶仔猪肠道、粪便微生物数量的影响

益生菌剂对断奶仔猪肠道、粪便微生物数量的影响结果见表5。

表4 益生菌剂对仔猪肠道绒毛高度的影响Table4 Effect of probiotics on intestinal villus height of weaned piglets(μm)

表5 益生菌剂对仔猪肠道、粪便微生物数量的影响Table5 Effect of probiotics on intestinal and dejecta microbial population of weaned piglets

由表5可知,添加不同浓度益生菌剂的3个试验组盲肠、回肠、粪便的致病菌(大肠杆菌、沙门氏菌数量要明显小于对照组,其中盲肠、粪便中的数量差异达到显著水平(P<0.05);各样品有益菌乳酸菌、酵母菌的数量也明显高于对照组,尤其是当益生菌添加量达到0.2%的Ⅲ组,其数量差异均达到显著水平(P<0.05)。试验表明,添加乳酸菌、酵母菌的益生菌剂能起到改善仔猪肠道微生物区系平衡,增加有益菌数量、抑制有害致病菌生长的作用。

2.6 益生菌剂对断奶仔猪腹泻的影响

益生菌剂对断奶仔猪腹泻的影响见表6,结果表明:与对照组相比,添加不同浓度益生菌剂的3个试验组的腹泻情况均有所改善,其腹泻指数均降低,且均达到显著差异(P<0.05)。说明益生菌剂对改善仔猪肠道平衡,提高仔猪肠道健康,减少腹泻有显著作用。

表6 益生菌剂对仔猪腹泻的影响Table6 Effect of probiotics on diarrhea of weaned piglets

3 讨论与结论

本文研究益生菌剂改善仔猪肠道健康、提高采食量、促进生长的作用机制,在断奶仔猪基础日粮中添加0.15%益生菌剂即可促进仔猪生长。与对照组组比,添加0.5%、0.1%、0.15% 3个不同浓度益生菌剂的试验组(Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ组),其盲肠、结肠肠道氨浓度、pH下降显著(P<0.05),十二指肠、空肠的淀粉酶、总蛋白酶活性提高显著(P<0.05)、但回肠的淀粉酶、总蛋白酶活性提高不显著(P>0.05)。三个试验组的肠绒毛高度均比对照组有所提高,其中试验组Ⅱ、Ⅲ组差异达到显著水平(P<0.05)。三个试验组的盲肠、回肠、粪便的致病菌数量均比对照组降低、有益菌数量增多,其中试验组Ⅲ组各微生物数量与试验组相比差异均达到显著水平(P<0.05)。3个试验组的腹泻指数均比对照组显著降低(P<0.05),仔猪肠道健康得到改善。

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