曹 婕,高润娣,李和权,周建英
(浙江大学医学院附属第一医院呼吸内科,浙江杭州 31003)
最近,我们建立了一种在头戴式放大镜直视下进行的小鼠气管插管的方法。本文拟简要描述该方法的操作要点和过程,以期与广大同道共同学习、分享和探讨。
1.1 动物 NIH小鼠30只,♂,年龄6~8周,体质量(23±2)g,购自浙江大学动物中心,本院实验动物中心饲养,环境温度25℃,湿度70%。
1.2 材料 0.04 mol·L-1戊巴比妥钠溶液、美蓝、头戴式放大镜、冷光源射灯、24号静脉留置针(BD公司)以及自行制作的小鼠固定及口腔撑开装置。如Fig 1所示。
1.3 方法
1.3.1 小鼠气管插管的制作 取24号静脉留置针,用锉刀磨掉金属针芯的针头(以免插管时损伤气管)并将其适当弯曲,即可用作小鼠气管插管。
1.3.2 在头戴式放大镜下施行小鼠气管插管 按50 mg·kg-1的剂量腹腔注射0.04 mol·L-1戊巴比妥钠溶液,5~7 min后观察夹趾反射,如阳性则追加10% ~20%初始剂量。如Fig 2所示,仰卧位固定小鼠并使其颈部尽量后仰伸展,依靠钩住小鼠门齿的橡皮筋打开上、下颌,并以带橡皮筋的小铁钩将小鼠口腔左右两侧拉开。操作者佩戴头戴式放大镜,左手持直头镊牵拉小鼠舌头,右手按压小鼠胸廓以充分暴露声门(Fig 3)。透过头戴式放大镜,操作者可清晰地观察到小鼠的声门随呼吸而开启、闭合。在小鼠吸气的瞬间,操作者迅速将自制的气管插管插入气道约3 cm,之后,退出针芯并用胶带将套管固定。
Fig 1 The main instruments used for endotracheal intubation of mice
Fig 2 The body position and the oral distraction method of mouse during endotracheal intubation
Fig 3 Intubating the trachea of mouse under direct vision through head-wearing kind magnifying glass
2.1 气管插管成功率
2.1.1 插管成功的标准 若插管成功:可见置于气管插管管口的细棉丝可受小鼠呼吸气流的影响而飘动;封堵管口30 s左右小鼠即出现躁动、口唇紫绀等缺氧表现;将0.5 ml美蓝经套管注射,处死小鼠后解剖可见蓝色物质浸染气管和肺部。
2.1.2 结果 根据上述方法判断,所有小鼠插管均成功;小鼠处死后解剖可见气管下端至肺部均有蓝色物质均匀浸染,见Fig 4。
Fig 4 The picture of trachea and lungs after injection with methylene blue through catheter
2.2 并发症的发生情况 所有小鼠在插管过程中均未出现呼吸急促、口唇紫绀等征象,解剖后检查也未见气管损伤、肺部出血等情况。B组小鼠经多次插管操作仍能健康生长,与C组比较未发现生长迟缓、体重明显减低等情况。
在开展肺部疾病药理学研究时,常常因为制备动物模型、测定气道压力以及气道给药等各种需要而施行气管插管术。小鼠是最常用的医学实验动物,但很难通过口腔直视气管的开口[1],而盲插法易误入食管。因此,大部分研究者采用手术暴露颈部气管的方式[1-2]。这种方法虽然直观、易操作,但损伤较大,难以重复。
近年来,国内外均有非手术小鼠气管插管方法的报道,如自制喉镜检查片引导下气管插管法[3-4]以及关节镜下气管插管法等[5-6]。我们也曾报道在体视显微镜下施行小鼠气管插管[7],该方法成功率高,重复性好,但其操作费时(约15 min)、需要较长时间(2~3周)的技能学习。因此,我们对该法进行了改良,主要包括:(1)术时小鼠采用仰卧位更易于固定以及小鼠声门的观察。(2)利用橡皮筋的弹性从上、下、左、右4个方向撑开小鼠的口腔以充分暴露声门。(3)改用头戴式放大镜,术者在操作过程中能自行调整其附带光源的照射角度,利于充分、快速地看清声门位置和运动。
综上所述,在头戴式放大镜直视下进行的小鼠气管插管的方法操作简单、易学、可重复性强,值得推广应用。
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