吴惠明,郑瑞峰,郭 峰,靳兴军,傅彩霞,陈立本,韩 磊,杜 鹃,王玉田,李 佳
(北京市兽医实验诊断所,北京 朝阳100101)
猪圆环病毒2型(PCV2)是引起断奶仔猪多系统衰竭综合征(PMWS)的主要病原。除PMWS外,猪皮炎与肾病综合征,猪呼吸道综合征,繁殖障碍,肉芽肿性肠炎,坏死性淋巴腺炎,渗出性皮炎,先天性震颤等疾病也证实与PCV2感染有关[1]。
近年来,对PCV2遗传变异情况的报道不断增多。PCV2b基因型已取代PCV2a成为当前的优势基因型毒株[2];PCV2基因组多为1 767nt或1 768 nt,而近年来有文献相继报道了基因组为1 766nt的新毒株[3-5]。为了了解当前北京地区感染猪群中PCV2的基因变异情况,为PCV2的分子流行病学、感染及预防控制提供参考,本研究对2010年北京地区的PCV2PCR检测核酸阳性的病料进行PCV2分离鉴定,并与GenBank登录的序列进行了同源性比较、构建了系统进化树,确定了分离毒株的基因型。
1.1 试剂及细胞株 ExTaqDNA聚合酶、dNTPs、DL-2 000DNA Marker,购自宝生物工程(大连)有限公司;DNA提取试剂盒,购自天根生化科技(北京)有限公司;PCV1和PCV2PCR检测试剂盒,购自北京世纪元亨动物防疫技术有限公司;PCV阴性PK15细胞为农业部兽医诊断中心惠赠;DMEM、新生牛血清,购自Hyclone公司;D-Glucosamine、辣根过氧化物酶葡萄球菌A蛋白标记物、AEC购自Sigma公司;特异性抗PCV2抗血清,购自VMRD公司。
1.2 病料及PCR检测 病料采自2010年北京平谷等地规模化猪场具有PMWS临床症状的病猪的淋巴结、肺脏和脾脏组织。病料按照PCV1和PCV2PCR检测试剂盒说明书进行检测。
1.3 病毒的分离及鉴定 取PCR检测为PCV1阴性且PCV2阳性的组织病料样品,按1∶10(W/V)加入DMEM培养液,将组织研磨后,冻融3次、离心取上清液,过滤除菌。通过用D-氨基葡萄糖处理PK15细胞促进PCV2繁殖和分离[6]。用IPMA方法对分离的病毒进行鉴定,IPMA操作方法参照文献[7]。
1.4 全基因组序列的测定与分析 参考文献[5]合成两条引物PCV2-F(5′-ATCCACGGAGGAAGGGGGCCAGTT-3′)和 PCV2(5′-GTGGATTGTTCTGTAGCATTCTTCCA-3′),提取病毒培养物 DNA,扩增全基因组序列。扩增条件为预变性94℃5min;94℃30s,62℃1min,72℃2min,35个循环;72℃延伸10min。PCR产物经琼脂糖凝胶电泳分析鉴定。将PCR产物送至上海生工生物工程技术服务有限公司进行序列测定。用DNAStar软件包进行全基因组核苷酸同源性分析。用MEGA5进行PCV2ORF2序列比对,并使用Neighbor-Joining算法生成系统进化树。最后,根据PCV2ORF2序列之间的遗传距离假定阈值0.035为标准划分基因型[8-10]。
2.1 PCR检测结果 采自北京平谷等地的2份病料样品中均扩增出为1 154bp的目的条带,表明PCV2检测为阳性,PCV1阴性。
2.2 病毒分离鉴定结果 将经处理的两份组织匀浆,同步接种到PK15细胞后72~120h,没有出现细胞病变,盲传4代。应用IPMA检测F5代病毒时,可见接种的两份分离毒株PK15细胞内出现特异性红棕色沉淀,而空白对照细胞内无红棕色沉淀,说明接种病毒的PK15细胞内有PCV2增殖,待检病毒为PCV2。两个毒株分别命名为BJ2010LC株和BJ2010PG株。图1为BJ2010LC株IPMA试验结果,图2为BJ2010PG株IPMA试验结果,图3为IPMA试验空白对照细胞。
图1 BJ2010LC株IPMA试验结果(200×)
2.3 全基因组序列分析 病毒培养物PCR扩增获得1 800bp左右目的条带。PCR产物测序显示,分离的2株PCV2全基因组序列均为1 767bp,已录入GenBank中,BJ2010LC株登录号为JQ002671,BJ2010PG株登录号为JQ002672。两株病毒ORF2长度均为705bp。BJ2010PG株ORF2有两个终止密码子,编码233个氨基酸;BJ2010LC株ORF2编码234个氨基酸。序列同源性比较表明,本研究分离的2个PCV2分离株与10个PCV2株间的同源性为94.2%~99.5%。参与比较的毒株中,3个毒株分别为PCV2aPCV2bPCV2c的参考毒株,6株分别为2004年至2009年分离至北京的PCV2毒株。其中,BJ2010PG毒株与AF005394(PCV2b参考毒株)和BJ0401同源性较高,分别为99.5% 和 99.3%。BJ2010LC 毒株与 BDH 和BJ0901b同源性较高,均为99%。本次分离获得的2个毒株之间的同源性为96.6%。
2.4 遗传进化树的构建和分离毒株基因分型 参考文献[8-10],利用 MEGA5的 Neighbor-Joining法将所分离2株PCV2的ORF2序列分别与PCV2a PCV2bPCV2c基因型参考毒株进行比对和系统进化分析,结果见图4。由图4可知,上述毒株分为四个基因型,分别为 PCV2a、PCV2b、PCV2c和PCV2d。分离毒株BJ2010LC株属于PCV2d基因型,BJ2010PG属于PCV2b基因型。
图4 PCV2ORF2基因序列构建的遗传进化树
对于PCV2基因型的划分和命名,不同的研究组织常使用不同的划分标准和名称[5,9,11]。针对这种情况,2008年欧盟PCVD联合会(www.pcvd.eu)推荐通过遗传进化分析的方法对PCV2进行基因型命名,将PCV2基因型命名为PCV2a、PCV2b、PCV2c,并且分别将GenBank中最早的报道的原型毒株AF055392和AF055394分别作为PCV2a和PCV2b参考株,将20世纪80年代只有在丹麦发现的PCV2EU148503作为PCV2c的参考株。该方法根据序列间遗传距离(p-distance)不同进行分类,对PCV2ORF2序列进行比对,划分不同PCV2基因型的遗传距离假定阈值设为0.035[8]。Ge X 等[10]依据此方法对我国2001至2010年的68株PCV2进行了分析,结果显示,这些毒株中无PCV2c,有PCV2a、PCV2b和PCV2d。其中PCV2d是依据该方法划分出来的又一新基因型。PCV2d基因型毒株的特点是CAP基因终止密码子发生突变,导致ORF2变为705nt[10]。
本研究分离得到两株PCV2,其中BJ2010LC株属于PCV2d基因型,BJ2010PG属于PCV2b基因型。Ge X 等[10]指出,北京地区存在PCV2a、PCV2b、PCV2d三种基因型毒株。PCV2b已成为我国优势基因型,而PCV2d在我国北京、河北、山东、江西等11个省市存在[10]。
ORF2是PCV2变异最大的一个开放阅读框,有四种长度,分别为696bp、702bp、705bp和708bp,分别编码231、233、234(或233)个氨基酸和235个氨基酸。ORF2基因是主要的结构蛋白基因,编码病毒的衣壳蛋白,多数PCV2毒株的ORF2为702 bp[10,12]。BJ2010PG 和 BJ2010LC 株 ORF2 长 度 为705bp。BJ2010PG有两个终止密码子,编码233个氨基酸;BJ2010LC株编码234个氨基酸。而ORF2长度的不同对其功能的影响还有待进一步研究。
[1]Chae C.A review of porcine circovirus 2 associated syndromes and diseases[J].Vet J,2005,169(3):326-336.
[2]Guo L J,Lu Y H,Wei Y W,etal.Porcine circovirus type 2(PCV-2):genetic variation and newly emerging genotypes in China[J].Virol J,2010,7:273.
[3]Dupont K,Nielsen E O,Bakbo P,etal.Genetic analysis of PCV2isolates from Danish archives and a current PMWS casecontrol study supports a shift in genotypes with time[J].Vet Microbiol,2008,128:56-64.
[4]Shang S B,Jin Y L,Jiang X T,etal.Fine mapping of antigenic epitopes on capsid proteins of porcine circovirus and antigenic phenotype of porcine circovirus type 2[J].Mol Immunol,2009,46(3):327-334.
[5]郭龙军,陆月华,危艳武,等.我国部分地区猪圆环病毒2型分离株的遗传变异分析[J].中国预防兽医学报,2009,31(11):856-859.
[6]Tischer I,Peters D,Rasch R,etal.Replication of porcine circovirus:induction by glucosamine and cell cycle dependence[J].Arch Virol,1987,96(1-2):39-57.
[7]Liu C,Ihara T,Nunoya T,etal.Development of an ELISA based on the baculovirus-expressed capsid protein of porcine circovirus type 2as antigen[J].J Vet Med Sci,2004,66(3):237-42.
[8]Segales J,Olvera A,Grau-Roma L,etal.PCV-2genotype definition and nomenclature[J].Vet Rec,2008,162(26):867-868.
[9]Grau-Roma L,Crisci E,Sibila M,etal.A proposal on porcine circovirus type 2(PCV2)genotype definition and their relation with postweaning multisystemic wasting syndrome(PMWS)occurrence[J].Veterinary Microbiology,2008,128(1-2):23-35.
[10]Ge X,Wang F,Guo X,etal.Porcine circovirus type 2and its associated disease in China [J].Virus Res,2012,164(1-2):100-106.
[11]Hamel A L,Lin L L,Sachvie C,etal.PCR detection and characterization of type-2porcine circovirus[J].Can J Vet Res,2000,64:44-52.
[12]王文秀,吕素芳,朱辉,等.两株猪圆环病毒2型的分离及基因组序列分析[J].动物医学进展,2011,32(9):5-9.