刘 岩,陈琪珍,邹倩茹,陈佳静,张 瑜,陈 雄
(上海市宝山区吴淞中心医院妇产科,上海 200940)
子痫前期(preeclampsia,PE)是妊娠期所特有的一种高血压疾病,在世界范围内孕产妇中的发病率介于3%~5%,是导致孕产妇和围产儿死亡的主要原因[1]。目前,治疗PE最有效的方法是分娩。PE对孕产妇和围产儿的严重危害以及治疗措施的缺乏,使对PE发生发展中相关的分子机制进行深入研究的任务变得十分紧迫。PE的发病机制复杂,现已知胎盘滋养层细胞的凋亡和异常侵袭是PE发生的基础[2]。近年来研究[3-4]发现,母胎界面环状RNAs(circular RNAs,circRNAs)的异常与胎盘绒毛外滋养层(extravillous trophoblasts,EVTs)细胞凋亡、增殖、血管形成、侵袭、迁移、免疫等生物学行为相关,可能参与PE的发生和发展,但此方面研究尚处于起步阶段。有研究[5]显示,circPVT1在胃癌、非小细胞肺癌和乳腺癌等肿瘤中表达升高,促进肿瘤细胞的增殖、迁移、侵袭和血管形成等过程。鉴于胎盘病理在PE中的重要作用,结合EVTs细胞与癌细胞具有相似的生物学功能(增殖、迁移和侵袭等)[6],且目前尚未见circPVT1在PE中的研究报道,本研究拟探究circPVT1在PE胎盘组织中的表达意义,以及在EVTs细胞中的作用及作用机制,为探索PE诊疗的新靶点提供参考依据。
选取2018年1月至2020年12月上海市宝山区吴淞中心医院收治的无宫缩行剖宫产分娩的孕妇60例为研究对象,其中PE组和Con组(拒绝阴道试产的健康孕妇)各30例。入组标准:1)符合PE诊断标准[7];2)孕妇本人签署知情同意书。排除标准:双胎妊娠、妊娠合并内外科疾病和其他妊娠并发症。本研究经本院伦理委员会审批通过。
1.2.1 胎盘样本采集
标本采集于胎盘娩出后5 min内迅速完成。从胎盘母面的中心区域切取大小约1 cm×1 cm×1 cm 组织,置于-80 ℃冰箱保存备用。
1.2.2 细胞培养和稳转细胞株的建立
人绒毛膜滋养层细胞株(HTR-8/SVneo)购于美国模式培养物集存库(American type culture collection,ATCC),细胞复苏后,在含10%FBS(胎牛血清,赛默飞世尔科技(中国)有限公司)的RPMI-1640培养基(赛默飞世尔科技(中国)有限公司)中培养,培养条件37 ℃,5%CO2。将circPVT1过表达、干扰和相应的对照含有嘌呤抗性的慢病毒(购自上海吉玛制药技术有限公司)分别转染适宜密度的HTR-8/SVneo细胞,72 h后,使用嘌呤霉素对稳转细胞株进行筛选,定期换液、细胞传代。2周后,利用qRT-PCR技术,对circPVT1稳定表达的效率进行检测,获得circPVT1的稳定干扰细胞株(lv-shcircPVT1)和稳定过表达细胞株(oe-circPVT1),用于后续实验。
1.2.3 RNA提取和qRT-PCR分析
使用Total RNA提取试剂盒(生工生物工程(上海)股份有限公司)提取胎盘组织和EVTs细胞的total RNA,并使用逆转录试剂盒(宝生物工程(大连)有限公司)将1 mg RNA用于合成cDNA。使用SYBR Premix Ex Taq检测circPVT1和miR-145-5p的表达。GAPDH和u6分别用于使circRNA和miRNA的相对表达水平正常化。使用2-ΔΔCt方法计算不同基因的相对表达水平。所有引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成,引物序列如下:circPVT1,上游认识5′-GGTTCCACCAGCGTTATTC-3′,下游5′-CAACTTCCTTTGGGTCTCC-3′;GAPDH(内参照),上游5′-GGA-GCGAGATCCCTCCAAAAT-3′,下游5′-GGCTG-TTGTCATACTTCTCATGG-3′;U6(内参照),上游5′-CTCGCTTCGGCAGCACA-3′,下游5′-AAC-GCTTCACGAATTTGC-3′;MiR-145-5p,上游5′-GUCCAGUUUUCCCAGGA-3′,下游5′-GTGCA-GGGTCCGAGGT-3′;Wnt3a,上游5′-ATGAACC-GCCACAACAAC-3′,下游5′-GCTTCTCCACCA-CCA-TCT-3′;Wnt5a,上游5′-CTTGGTGGTCG-CTAGGTA-3′,下游5′-TCGGAATTGATACTGGCATT-3′;β-catenin,上游5′-ACACCAAGAAGCAGAGATG-3′,下游5′-CGAATCAATCCAAC-AGTAGC-3′。
1.2.4 细胞增殖能力测定
将上述circPVT1过表达或者干扰的稳转细胞株(oe-circPVT1组、lv-shcircPVT1组),以及对应的阴性对照细胞系(lv-NC组)分别接种在96孔板中,待细胞完全贴壁后进行检测(每12 h),检测前2 h,每孔加10 μL的CCK-8试剂(江苏凯基生物技术股份有限公司),酶标仪采集OD450值。
1.2.5 细胞迁移能力检测
细胞消化、重悬后,将上述稳转细胞系均匀接种于6孔板中,次日待细胞贴壁后用微量加样器枪头垂直于6孔板底做标记,分别于划痕后0、24和48 h拍照,划痕愈合率代表细胞迁移能力。
1.2.6 细胞侵袭能力检测
基质胶溶液均匀铺在transwell上室(康宁(上海)管理有限公司),向24孔板孔内加入含10%FBS的培养基作为趋化因子诱导细胞穿膜。将各组细胞消化、收集、离心并重悬在不含FBS的培养基中,接种至上室内,培养24 h,用棉签擦去残留在上室的细胞,已侵入底部隔室的细胞经固定、染色后,在显微镜下拍照并计数。
1.2.7 MicroRNA的合成与瞬时转染
miR-145-5p的mimics和inhibitor试剂由上海吉玛制药技术有限公司设计并合成,引物序列如下:Mimics NC,上游5′-UUAUCAGAAUCUCCAGG-GGUAC-3′,下游5′-GUACCCCUGGAGAUUCU-GAUAA-3′;MiR-145-5p mimics,上游5′-GUCCAGUUUUCCCAGGAAUCCCU-3′,下游5′-AGGG-AUUCCUGGGAAAACUGGAC-3′;Inhibitor NC,5′-AUAUCUUAAUCUCUCUCAUCCAA-3′;MiR-145-5p inhibitor,5′-AGGGAUUCCUGGGA-AAACUGGAC-3′。利用Lipofectamine3000(美国英杰生命技术有限公司)进行瞬时转染HTR-8/SVneo细胞,构建表达miR-145-5p NC、miR-145-5p mimics、miR-145-5p inhibitor的绒毛膜滋养层细胞株。
1.2.8 双荧光素酶报告系统验证miR-145-5p与circPVT1的靶向调控关系
环状RNA相互作用数据库(https://circinteractome.nia.nih.gov和http://starbase.sysu.edu.cn)预测circPVT1与miR-145-5p之间有结合位点,利用双荧光素酶报告系统实验进行验证。通过分子克隆技术将WT-circPVT1和MUT-circPVT1分别克隆进入荧光素酶报告质粒(pGL3-basic)中,筛选阳性克隆,测序,扩增克隆并提纯质粒备用,将WT-circPVT1、MUT-circPVT1分别转染上述构建的表达miR-145-5p NC(WT-circPVT1+miR-145-5p NC组、MUT-circPVT1+miR-145-5p NC组)、miR-145-5p mimic(WT-circPVT1+miR-145-5p mimics组、MUT-circPVT1+miR-145-5p mimics组)的绒毛膜滋养层细胞株,24 h后荧光素酶报告实验检测细胞内的荧光素酶活性。
1.2.9 免疫印迹实验
用RIPA裂解液裂解各组细胞,收集各组细胞总蛋白,蛋白定量后进行聚丙烯酰胺凝胶电泳和转膜。4 ℃封闭膜过夜、洗膜、4 ℃摇床孵育一抗过夜、洗膜、室温摇床避光孵育二抗1 h、洗膜、化学发光显色、灰度值分析(β-actin作为内参)。
2组孕妇的分娩年龄、分娩时体重指数(body mass index,BMI)和是否吸烟比较,差异均无统计学意义(P>0.05),2组孕妇收缩压、舒张压、尿蛋白、分娩孕周和新生儿出生体重比较,差异有统计学意义(P<0.05),见表1。
表1 Con组和PE组孕妇一般临床资料比较
胎盘组织中circPVT1 mRNA表达与孕妇收缩压、舒张压和尿蛋白呈负相关(均P<0.01),与孕妇分娩孕周和新生儿出生体重呈正相关(均P<0.01),与孕妇年龄和分娩时BMI无明显相关性(均P>0.05)。见表2。
表2 circPVT1表达与孕妇一般临床资料相关性分析
qRT-PCR实验结果显示,Con组和PE组胎盘组织中circPVT1相对表达量分别为1.00±0.08、0.517±0.07,2组比较差异有统计学意义(t=7.569,P=0.002)。
CCK-8增殖实验表明,在HTR-8/Svne细胞中,与lv-NC组相比,oe-circPVT1组细胞增殖能力显著增加、lv-shcircPVT1组细胞增殖能力显著降低(P<0.01),见图1A。细胞划痕实验表明,在HTR-8/Svne细胞中,与lv-NC组[24、48 h划痕愈合率分别为(61.67±2.89)%、(79.33±1.15)%]相比,oe-circPVT1组[24、48 h划痕愈合率分别为(75.00±5.00)%、(87.67±2.52)%]细胞迁移能力显著增加(P=0.016、P=0.006),lv-shcircPVT1组[24、48 h划痕愈合率分别为(54.00±3.61)%、(65.00±5.00)%]细胞迁移能力显著降低(P=0.045、P=0.008),见图1B。Transwell实验表明,在HTR-8/Svne细胞中,与lv-NC组(343.33±35.19)相比,lv-shcircPVT1组(466.67±30.55)细胞侵袭能力显著增加(P=0.010),而lv-shcircPVT1组(240.00±20.00)细胞侵袭能力显著降低(P=0.011),见图1C。
A:CCK-8增殖实验检测circPVT1过表达或抑制circPVT1表达后HTR-8/Svneo细胞增殖能力的变化,n=3,*P<0.05,**P<0.01; B:细胞划痕实验检测circPVT1过表达或抑制circPVT1表达后HTR-8/Svneo细胞迁移能力的变化。
C:transwell实验检测circPVT1过表达或抑制circPVT1表达后HTR-8/Svneo细胞侵袭能力的变化。
公共数据库预测提示miR-145-5p与circPVT1之间存在结合位点,见图2A。双荧光素酶报告基因实验结果显示,在HTR-8/Svneo细胞中,WT-circPVT1+miR-145-5p NC组和WT-circPVT1+miR-145-5p mimics组相对荧光素酶活性分别为1.00±0.10、0.40±0.10,2组比较差异有统计学意义(t=7.348,P=0.002),而MUT-circPVT1+miR-145-5p NC组和MUT-circPVT1+miR-145-5p mimics组相对荧光素酶活性分别为1.00±0.17、1.00±0.10,2组比较差异无统计学意义(P=1.000),见图2B。同时,qRT-PCR结果显示,miR-145-5p在Con组和PE组患者胎盘组织中相对表达量分别为1.00±0.20、1.93±0.40,2组比较差异有统计学意义(t=-3.585,P=0.023),见图2C;在HTR-8/Svneo细胞中,与lv-NC组(1.00±0.20)相比,oe-circPVT1组(0.50±0.10)miR-145-5p的表达降低(P=0.018),而lv-shcircPVT1组(2.50±0.50)miR-145-5p的表达增加(P=0.008),见图2D。
A:miR-145-5p与circPVT1和突变的miR-145-5p预测结合位点示意图;B:在HTR-8/Svneo细胞中,利用双荧光素酶报告实验验证circPVT1与miR-145-5p的结合关系,n=3;C:qRT-PCR检测miR-145-5p在Con组(n=30)和PE组(n=30)患者胎盘组织中的表达情况;D:qRT-PCR检测circPVT1过表达和抑制circPVT1表达后miR-145-5p的表达情况,n=3。*P<0.05,**P<0.01。
qRT-PCR和western blot实验分别显示,circPVT1过表达能够促进Wnt3a、Wnt5a和β-catenin mRNA和蛋白表达,然而这种情况可以被miR-145-5p的类似物所抑制(P<0.01),见图3A—B。CCK-8实验显示,miR-145-5p抑制物能够挽救circPVT1沉默介导的HTR-8/Svneo细胞增殖能力降低(P<0.01),见图3C。
A:western bolt实验检测HTR-8/Svneo细胞转染oe-circPVT1和(或)miR-145-5p mimics后Wnt3a、Wnt5a和β-catenin蛋白表达情况;B:qRT-PCR实验检测HTR-8/Svneo细胞转染oe-circPVT1和(或)miR-145-5p mimics后Wnt3a、Wnt5a和β-catenin mRNA表达情况;C:CCK-8实验检测,HTR-8/Svneo细胞转染lv-shcircPVT1和(或)miR-145-5p inhibitor后细胞增殖能力的变化。n=3,*P<0.05,**P<0.01。1:lv-NC组;2:oe-circPVT1组;3:oe-circPVT1+miR-145-5p mimics组。
近年来,学界普遍认为PE发生的首要病因是胎盘发育异常,滋养细胞浅植入和不完全浸润是PE的基本病因[8]。CircRNAs是共价闭合的单链转产物,随着高通路测序和生物信息学技术的发展,circRNAs被证实参与调控多种细胞类型的不同生物学过程[9]。例如,ZHOU等[10]发现circZDHHC20通过结合miR-144上调GRHL2的表达,从而阻断滋养细胞的增殖、迁移和侵袭能力。另有研究[11]报道,环状RNA circ_0111277通过调控miR-494/HTRA1/Notch-1信号通路减弱PE人滋养细胞的侵袭和迁移。以上研究显示,circRNAs的异常表达与胎盘滋养细胞的生物学行为异常相关,提示circRNAs可能在PE发病机制中发挥重要作用。
CircPVT1又称hsa_circ_0001821,源于癌基因长链非编码RNA PVT1的第2个外显子,该基因位于chr8:128902834—128903244,一个癌症易感基因座[5],circPVT1可充当miR-125a、miR-145-5p、miR-149和miR-203等miRNAs的海绵,还可调节PI3K/AKT和Wnt5a/Ror2等信号通路的活性,在胃癌、非小细胞肺癌和乳腺癌等多种肿瘤的发生、药物耐药和预后过程中发挥至关重要的作用[12]。胎盘滋养层细胞与癌细胞有相似的生物学活性,即增殖、迁移和侵袭性等,胎盘滋养细胞的功能失调被认为是PE的基本病因[2]。CircPVT1在PE及其胎盘滋养层细胞中表达水平和临床意义尚未见报道。本研究利用qRT-PCR检测,发现相比于正常胎盘组织,circPVT1在PE胎盘组织中低表达,临床数据统计分析结果显示,胎盘组织中circPVT1表达与孕妇收缩压、舒张压和尿蛋白呈负相关,与孕妇分娩孕周和新生儿出生体重呈正相关。提示circPVT1可能参与了PE的发生,可能是PE不良妊娠结局的潜在分子标志物。有研究[13]报道,在胃癌中,circPVT1通过miR-423-5p/Smad3通路介导上皮-间充质转化调控细胞迁移和侵袭。本研究为探讨circPVT1在PE胎盘滋养层细胞中的生物学功能,首先利用慢病毒侵染并构建了circPVT1的稳定干扰细胞株(lv-shcircPVT1)和稳定过表达细胞株(oe-circPVT1),并进行了一系列细胞功能实验,结果显示,circPVT1过表达后EVTs细胞的增殖、迁移和侵袭能力增强,而抑制circPVT1表达后EVTs细胞的增殖、迁移和侵袭能力降低。
CircPVT1促进EVTs细胞增殖、迁移和侵袭能力的作用已经明确,但其中的作用机制尚需进一步探讨。MicroRNA(miRNAs)是一种非编码的小RNA,在转录后水平调控基因的表达,与疾病的发生发展密切相关[14]。有研究[15]显示,circRNAs通过对miRNAs海绵吸附作用,阻止miRNAs对特定mRNAs结合,进而影响细胞功能,导致疾病的发生。本研究通过生物信息学分析,发现miR-145-5p是circPVT1潜在的靶miRNAs之一。应用双荧光素酶报告实验和挽救实验在EVTs细胞中检验circPVT1与miR145-5p之间的相互作用,结果显示circPVT1可以海绵吸收并负向调控miR-145-5p。Wnt信号通路是一种复杂的途径,以高度依赖细胞和组织的方式调节许多信号转导途径,并调节多种生物功能,在人类中有3种Wnt信号通路:典型的Wnt/β-catenin通路,非典型的Wnt/Ca2+通路和非典型的平面细胞极性通路[16]。最近的研究[17]表明,Wnt/β-catenin信号通路的失调可能与PE有关。另有研究[18]报道,miR-145-5p通过调控Wnt/β-catenin信号通路抑制银屑病的发展。此外,circRNA和Wnt/β-cateinin通路在多种生物学过程之间有很多联系[19]。例如,ZHANG等[20]证实,circRNA_069718通过激活Wnt/β-cateinin通路介导三阴性乳腺癌的进展。本研究发现,在EVTs细胞中circPVT1显著促进Wnt/β-Catenin mRNA和蛋白表达,然而这种情况可以被miR-145-5p的类似物所抑制。随后的细胞增殖实验显示miR-145-5p抑制物能够挽救circPVT1沉默介导的EVTs细胞增殖能力降低。以上结果表明,circPVT1可能通过调控miR-145-5p/Wnt/β-catenin信号通路促进EVTs细胞增殖和侵袭参与PE发生。
综上所述,circPVT1在PE患者胎盘中低表达,与PE患者的不良妊娠结局相关。CircPVT1过表达后EVTs细胞的增殖、迁移和侵袭能力增强,而抑制circPVT1表达后EVTs细胞的增殖、迁移和侵袭能力降低,可能是通过miR-145-5p/Wnt/β-catenin信号通路发挥作用。这些发现可为探索PE诊疗的潜在靶点提供参考。然而本研究尚存在一定的局限性,如样本量偏少、circPVT1具体的作用机制有待完善,需要更深入的体内外实验进一步验证其在PE中的临床价值。