抑制自噬可以增强七叶皂苷钠对肝细胞性肝癌的抑制作用

2022-01-17 01:24周大臣耿小平
安徽医科大学学报 2021年12期

方 超, 周大臣,崔 笑,魏 昇, 耿小平

原发性肝癌的发病率在癌症中位于第6位,病死率位于第4位,其中,肝细胞性肝癌(hepatocellular carcinoma, HCC)占了75%~85%。对于HCC患者来说,主要的治疗方法包括肝脏切除、肝脏移植、射频消融、经导管动脉化疗栓塞术和药物治疗,但是这些治疗都存在一定的局限性。自噬(在此特指巨自噬)是细胞内一个重要的高度保守的分解代谢过程,可以为细胞的生长发育提供营养物质。它能够保护正常肝细胞,阻止其发生癌变,但是当HCC形成后,自噬会促进癌细胞的生长。七叶皂苷钠是中药娑罗子的一种自然提取物,先前的研究已经表明了它在HCC中的抗肿瘤作用。这篇文章主要研究七叶皂苷钠对HCC细胞自噬流的影响及自噬抑制剂氯喹对七叶皂苷钠作用效果的影响。

1 材料与方法

1.1 材料

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主要试剂 七叶皂苷钠购自美国APExBIO公司;氯喹购自美国MCE公司;HCC细胞系Huh7、HepG2和Hep3B购自中国科学院上海细胞库;胎牛血清购自美国Gibco公司;青霉素/链霉素、BCA试剂盒和4%多聚甲醛购自上海碧云天生物技术有限公司;DMEM购自美国Hycolne公司;0.25%胰酶购自美国Wisen公司;β-Actin,PI3K (p85),AKT,4E-BP1,Phospho-4E-BP1 (Thr37/46)购自美国CST公司;LC3B购自美国Abcam公司;山羊抗鼠或抗兔二抗购自北京中杉金桥公司;MTT购自美国Sigma公司;二甲基亚砜(DMSO)和0.1%结晶紫购自北京索莱宝科技有限公司;Annexin V-异硫氰酸荧光素(FITC)/碘化丙啶(PI)细胞凋亡检测试剂盒购自美国BD公司。

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主要仪器 细胞培养箱购自美国Thermo Fisher公司;酶标仪购自上海科华生物工程股份有限公司;CytoFLEX 流式细胞仪购自美国Beckman Coulter公司。

1.2 方法

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细胞培养 3种细胞系(Huh7、 HepG2和Hep3B)均在含有10%胎牛血清和1%青霉素/链霉素的DMEM中培养,并放置于细胞培养箱中,培养温度为37 ℃,含有5% CO。细胞培养液每2 d更换1次,每3~5 d传1次代,用0.25%胰酶消化,所有细胞培养不超过10代。

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细胞蛋白提取及Western blot 分析 RIPA裂解液、蛋白酶抑制剂和磷酸酶抑制剂按照100 ∶10 ∶1的比例配制成所需的蛋白提取液,裂解细胞15 min后收集所有液体在4 ℃离心机中离心20 min,转速为13 000 r/min,吸取上清液,置于-80 ℃冰箱保存。使用BCA试剂盒测定蛋白浓度,将蛋白液和上样缓冲液按照比例混合,于100 ℃变性10 min。将变性后的蛋白样品进行SDS-PAGE电泳、转膜。将蛋白条带置于5%胎牛血清白蛋白中,在室温孵育1 h,在4 ℃冰箱孵育一抗过夜,第2天在室温孵育相应鼠抗或兔抗1 h,使用显影仪进行蛋白条带显影。

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MTT检测 细胞种植于96孔板中,每孔3 000 个细胞,100 μl培养液。第2天,用药物处理细胞48 h之后,在每个孔中加入10 μl MTT(5 mg/ml),于细胞培养箱中孵育4 h。然后吸净培养液,每孔加入150 μl DMSO溶解结晶,振荡10 min混匀,使用酶标仪在570 nm和630 nm处测定吸光度,最终吸光度为两者差值。细胞生存率计算方法:处理组吸光度/对照组吸光度。

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克隆形成实验 细胞种植于6孔板中,每孔1 000个细胞。第2天,用药物处理细胞12 h后换成正常培养基,之后每隔2~3 d换1次培养液,并于显微镜下观察,直到形成50个细胞左右的细胞团。吸弃培养基,加入1 ml 4%多聚甲醛固定10 min。然后吸弃多聚甲醛,加入1 ml 0.1%结晶紫染色15 min,拍照,使用Image-J软件计数。

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细胞凋亡检测 使用药物处理6孔板中的细胞48 h后,消化,离心收集细胞,洗涤细胞,将5 μl Annexin V-FITC和5 μl PI分别加入每一个流式管中,在室温避光孵育15 min。然后,使用CytoFLEX 流式细胞仪在1 h内检测细胞凋亡。

2 结果

2.1 七叶皂苷钠对HCC细胞自噬流的促进作用

根据先前的研究结果,确定了七叶皂苷钠的浓度为40 μmol/L。在其处理3种细胞系(Huh7、HepG2和Hep3B)24 h后,Western blot结果显示,与对照组相比,七叶皂苷钠上调了LC3B蛋白的表达水平(图1)。另外,当七叶皂苷钠和氯喹联合使用12 h后,联合处理组的LC3B蛋白表达量高于七叶皂苷钠和氯喹单独处理组(图2)。

图1 七叶皂苷钠处理细胞24 h后LC3B蛋白表达量Con:对照组;SA:七叶皂苷钠处理组,浓度为40 μmol/L

图2 七叶皂苷钠和氯喹联合用药12 h后LC3B蛋白表达量

2.2 七叶皂苷钠对PI3K/AKT信号通路的抑制作用

七叶皂苷钠抑制了Huh7和HepG2细胞内PI3K/AKT信号通路。Western blot结果表明,七叶皂苷钠抑制了PI3K以及AKT的表达。此外,七叶皂苷钠还下调了蛋白4EBP1的表达并抑制了其磷酸化水平(图3)。

图3 七叶皂苷钠处理细胞48 h后PI3K/AKT通路蛋白表达量Con:对照组;SA:七叶皂苷钠处理组,浓度为40 μmol/L

2.3 氯喹对七叶皂苷钠抗肿瘤效果的增强作用

在HCC细胞系(Huh7、HepG2和Hep3B)中,七叶皂苷钠和氯喹联合应用48 h后,与对照组或者单独用药相比,细胞生存率降低,差异有统计学意义(3种细胞系中,

F

值分别为711.90、63.89和146.30,

P

<0.05)(图4)。此外,联合用药48 h后,Huh7[

F

=17.33;七叶皂苷钠

vs

联合用药:(5.52±2.33)%

vs

(13.53±3.19)%,

P

=0.006 7]和HepG2[

F

=158.00;七叶皂苷钠

vs

联合用药:(31.15±3.56)%

vs

(51.76±2.51)%,

P

<0.001]细胞的早期凋亡率增加(图5)。同时,七叶皂苷钠和氯喹联合处理细胞12 h后,Huh7[

F

=1 789.00;七叶皂苷钠

vs

联合用药:(71.00±3.61)

vs

(9.00±3.61),

P

<0.001]和HepG2[

F

=1 731.00;七叶皂苷钠

vs

联合用药:(225.30±22.19)

vs

(95.00±9.17),

P

<0.001]的细胞克隆数减少(图6)。

图4 药物处理48 h后MTT检测结果

图5 药物处理48 h后细胞凋亡检测结果

图6 药物处理12 h后细胞克隆形成能力测定结果

3 讨论

LC3B-II蛋白是自噬小体形成的一个重要标志,主要是通过细胞内的LC3B-I蛋白与磷脂酰乙醇胺(PE)结合而形成。在该研究中,七叶皂苷钠作用后的HCC细胞,LC3B-II蛋白的表达水平明显增加,间接表明七叶皂苷钠可以诱导HCC细胞产生大量的自噬小体。而自噬小体的大量增加一般有两个原因,一是因为自噬流的分解过程被阻断,自噬小体不能被降解,沉积在细胞内;另一个原因是自噬流增加,自噬小体的合成增加了。当氯喹被使用去抑制自噬流的分解过程时,七叶皂苷钠诱导形成的LC3B-II蛋白表达量反而比单独用药时更高,表明自噬小体的增加是由于它的合成增加,而不是自噬小体的降解被抑制。因此,综合这些研究结果可以证实七叶皂苷钠确实能够诱导HCC细胞的自噬流。

至于具体的分子机制,该研究表明七叶皂苷钠可以下调PI3K和AKT蛋白,而且mTOR的下游蛋白4EBP1的磷酸化也被抑制了。通过这个结果,可以推测七叶皂苷钠抑制了PI3K/AKT信号通路,并且也抑制了mTOR蛋白的表达,因此,其促进了HCC细胞的自噬流。

尽管已经证实七叶皂苷钠确实促进了HCC细胞的自噬流,但是这个上调的自噬流在HCC细胞中所起的作用以及对七叶皂苷钠的影响还不是很明确。从目前已知的情况来看,自噬在HCC中所发挥的作用是十分复杂多变的。它能够将细胞内衰老的细胞器,错误折叠的蛋白等降解成小分子物质(核苷、氨基酸、脂肪酸等),这样既可以维持细胞内环境的稳定,也可以为细胞提供生长所必需的营养物质,所以从这个角度来看,它可以促进HCC细胞的生长,帮助癌细胞在一些应激环境下生存,甚至适应这些环境。然而另一方面,自噬能够通过抑制HCC细胞中的炎症反应来抑制癌细胞生长,并且自噬介导的自噬性细胞死亡也是杀伤癌细胞的一种方式,一些研究表明促进自噬流可以延缓HCC的发展,而抑制自噬流则有利于HCC的发展。

为了弄清楚七叶皂苷钠诱导的自噬流对HCC细胞的影响,氯喹被用来抑制HCC细胞的自噬流。实验结果显示,当自噬流被抑制时,七叶皂苷钠可以进一步降低癌细胞的生存率,促进细胞早期凋亡,抑制细胞克隆形成能力。这些发现表明抑制自噬可以增强七叶皂苷钠的作用效果,也就是说七叶皂苷钠诱导的自噬是保护性的。当七叶皂苷钠杀伤癌细胞时,细胞会产生更多的自噬流,为其自身提供营养物质,维持生长,保护细胞,在一定程度上抵消了药物的作用效果。因此,当HCC细胞的自噬流被氯喹阻断时,癌细胞失去了这个保护作用,导致七叶皂苷钠的抗肿瘤效果变强了。

综上所述,七叶皂苷钠可以增加HCC的自噬流,并且通过阻断自噬流,可以增强七叶皂苷钠的作用效果。