赵文兴 王 振 李 磊 于国庆 郑 臻 史志猛
1.泰安市中心医院普外二科,山东 泰安 271000;2.泰安市中心医院消化内科,山东 泰安 271000;3.山东第一医科大学(山东省医学科学院)研究生处,山东 泰安 271016
胃癌目前是世界上最常见的恶性肿瘤之一,2013年,全球大约84.1万人口死于胃癌[1];胃癌在我国发病及死亡人数仅次于肺癌,居于第二位[2-3];胃癌易发生转移,且转移是导致死亡率高的重要原因。胃癌的转移涉及到多阶段、多基因变化与多途径的病变演变过程,包括Fascin1在内的细胞骨架蛋白参与了此过程[4]。Fascin1是一种肌动蛋白结合蛋白,表达于人类多种肿瘤中,但在大多数正常上皮中不表达,Fascin1促进了胃癌等肿瘤细胞丝状伪足的形成、迁移和侵袭过程,与肿瘤的转移有关[5]。目前已证实胃癌的转移与上皮-间质转化(pithelialmesenchymal transition,EMT)、肿瘤干细胞、血管内皮生长因子等因素有关[6-8]。EMT是指上皮细胞在相关因子的刺激下向间质细胞表型转化的过程,上皮细胞EMT化后具有间质细胞特性,进而导致细胞侵袭转移能力增强[9]。Fascin1是否通过促进胃癌细胞的EMT过程进而导致胃癌侵袭转移,目前尚无相关报道。上皮型钙黏附蛋白(E-cadherin)是EMT的标志蛋白,因此检测了人胃癌及癌旁组织中Fascin1与E-cadherin的表达情况,并进一步研究了胃癌细胞中Fascin1与E-cadherin的调控关系,从而为胃癌的转移机制研究作进一步的探讨。
人胃癌组织芯片(购自于西安艾莉娜公司),人胃癌细胞SGC-7901(购自于中科院上海细胞库),小鼠抗人Fascin1抗体(R&D公司),兔抗人E-Cadherin抗体(CST公司),小鼠抗人β-actin抗体(CST公司),Control-siRNA、Fascin1-siRNA(Santa Cruz公司),Transwell小室(康宁公司),Matrigel胶(BD公司),Lipo6000™转染试剂(碧云天公司),胎牛血清、RPMI 1640培养基(GIBCO公司),SABC免疫组化试剂盒(博士德公司)。
1.2.1 免疫组化 SABC法检测胃癌及癌旁组织中Fascin1与E-cadherin的表达情况,具体步骤参照SABC试剂盒说明书进行。应用阳性细胞比例与着色强度综合计分法判断阳性结果,染色强度计分:0分为无色,1分为淡黄色,2分为棕黄色,3分为棕褐色。阳性细胞率计分:阳性细胞<5%为0分,5%~25%为1分,26%~75%为2分,>75%为3分。两种计分相加;<6分为阴性,≥6分为阳性[10]。
1.2.2 细胞培养及转染细胞接种于六孔板中,在5%CO2、37℃培养箱中培养,细胞密度达30%~40%时进行Fascin1-siRNA、Control-siRNA转染,具体步骤参考Lipo6000™转染试剂说明书。
1.2.3 RT-PCR Trizol法提取胃癌SGC-7901细胞中RNA,逆转录成cDNA,聚合酶链式反应(PCR反应扩增),琼脂糖凝胶电泳及结果观察。Fascin1的引物为5′-GCCAGGGTATGGACCTGTCTG-3′和5′-CACGCCACTCGATGTCAAAGTA-3′,E-cadherin的引物为5'-TTAAACTCCTGGCCTCAAGCAATC-3'和5′-TCCTATCTTGGGCAAAGCAACTG-3′,内参β-actin的引物为5′-AGCGAGCATCCCCCAAAGTT-3和5′-GGGCACGAAGGCTCATCATT-3′。
1.2.4 蛋白质免疫印迹BCA法检测细胞蛋白浓度,取50μg蛋白样品经SDS-PAGE电泳后,将蛋白转移到NC膜上,5%脱脂奶粉封闭,一抗4℃孵育12 h,二 抗 室 温 孵 育1 h,ECL显 色,Bio-Rad ChemiDoc MP凝胶系统检测阳性信号。采用β-actin作为内参。
1.2.5 Transwell迁移与侵袭实验 Transwell迁移实验:将100μl无血清培养基稀释的细胞(约5万个)加入到小室上层,下室加入800μl含血清的培养液;Transwell侵袭实验:小室预先铺有Matrigel胶,将100μl无血清培养基稀释的细胞(约2万个)加入到小室上层;培养24 h,取出小室,多聚甲醛固定,结晶紫染色,显微镜下观察(400倍视野)。
Fascin1主要定位于细胞质,其在胃癌组织中的表达阳性率为42.2%(38/90),而在癌旁组织中阳性率为0(0/90),差异有统计学意义(P<0.001);E-cadherin阳性颗粒主要定位于细胞膜与细胞质,其在胃癌组织中的表达阳性率为37.8%(34/90),而癌旁正常组织中阳性率为90%(81/90),差异有统计学意义(P<0.001)。见图1。
图1 Fascin1与E-cadherin在胃癌及癌旁组织中的表达情况
Fascin1在胃癌组织中的表达与性别、年龄无关,与TNM分期、淋巴结转移、浸润深度呈正相关;E-cadherin在胃癌组织中的表达与性别、年龄无关,与TNM分期、淋巴结转移、浸润深度呈负相关,见表1。
表1 Fascin1、E-cadherin在胃癌组织中的表达及其与临床病理参数的关系
Fascin1与E-cadherin在胃癌中共同表达阳性者7例,共同表达阴性者25例,Fascin1表达阳性而E-cadherin表达阴性者31例,Fascin1表达阴性而E-cadherin表达阳性者27例,两者在胃癌组织中的表达呈显著负相关(r=-0.341,P=0.001)。
RT-PCR结果显示,SGC-7901细胞转染Fascin1-siRNA后,Fascin1 mRNA表达水平明显降低,E-cadherin mRNA水平明显增高,而Normal组(正常组)与Control-siRNA组没有明显变化(F=32.49,P=0.001;F=20.095,P=0.002)。见图2。
蛋白质免疫印迹结果显示,SGC-7901细胞转染Fascin1-siRNA后,Fascin1蛋白表达水平明显降低,E-cadherin蛋白水平明显增高,而Normal组与Control-siRNA组没有明显变化(F=15.1,P=0.005;F=22.509,P=0.002),见图2。由此可见Fascin1可以负向调控E-cadherin的表达。
胃癌SGC-7901细胞分别转染Fascin1-siRNA与Control-siRNA24 h后,相比Control-siRNA组,Fascin1-siRNA组细胞的迁移及侵袭能力明显降低(t=4.821,P=0.009;t=5.429,P=0.006)。见图3。
胃癌是目前世界上最常见的第四种恶性肿瘤,每年有100万人诊断为胃癌,每年70万人死于胃癌[11-12]。胃癌患者死亡的主要原因是转移,因此,了解胃癌细胞从原发肿瘤逃逸、侵袭周围组织、经过淋巴管播散、远处转移成为胃癌研究的焦点。为了局部浸润和转移,肿瘤细胞具有较高的运动性和侵袭性,细胞具有明显的形态特征(如伸长、极化、细胞突起的出现等)以及细胞与细胞接触的紊乱[13]。所有上述改变均与细胞骨架(尤其肌动蛋白)的改变和重排有关[14]。作为一种丝状肌动蛋白结合蛋白,Fascin1与肿瘤细胞的丝状伪足形成、细胞粘附及运动迁移等生物学行为有关,进而影响肿瘤细胞的侵袭转移[15]。
图2 Fascin1对E-cadherin mRNA及蛋白表达水平的影响
图3 Fascin1对SGC-7901运动能力的影响
Fascin1是FSCN1编码的肌动蛋白集束蛋白,与恶性肿瘤的增殖、迁移和转移呈正相关,Fascin1在胃癌中的表达明显高于正常黏膜组织[16]。本研究中,Fascin1在胃癌组织中明显高表达,且表达与肿瘤的TNM分期、淋巴结转移及浸润深度呈显著正相关,说明Fascin1与胃癌的侵袭转移有关。且在人胃癌SGC-7901细胞中证实了敲低Fascin1的表达水平可以降低细胞的侵袭迁移能力,进一步说明了Fascin1与胃癌转移有关。目前Fascin1在胃癌转移中的分子机制尚不明确。
上皮细胞具有间充质细胞特征的过程称为上皮间质转换(EMT)[17],EMT过程中,上皮细胞极性丢失,伴随着细胞之间接触减少,细胞间的连接随之破坏,细胞骨架重塑,因此表现为E-cadherin表达下调和波形蛋白表达上调[18]。EMT与肿瘤转移有关,研究已证实EMT过程涉及了胃癌的侵袭转移[19-20]。E-cadherin是EMT的标志性分子,也是控制正常细胞粘附和组织完整性的重要分子,E-cadherin的丢失与胃癌的进展、侵袭和转移有关[21-22]。本研究中,E-cadherin在胃癌中阳性表达率明显低于癌旁组织,且在胃癌中表达与肿瘤TNM分期、淋巴结转移及浸润深度呈负相关。
因此,本研究检测了胃癌组织中Fascin1与E-cadherin的表达情况,且经相关性分析得出二者在胃癌中表达呈显著负相关;进一步行细胞实验得出,在胃癌细胞中,Fascin1可以负向调控E-cadherin的表达,且Fascin1敲低后胃癌细胞的侵袭迁移能力下降,综上,可以推测出Fascin1可能参与了胃癌细胞EMT过程进而调节胃癌的转移。
利益冲突 所有作者均声明不存在利益冲突