雷明霞,徐 凯,彭 娟,李 梅,蒋 凛,余 姣
(内江市动物疫病预防控制中心,四川内江 641000)
当前,猪繁殖与呼吸综合征、猪瘟、猪圆环病毒病、猪伪狂犬病是猪群中最常发生且危害较为严重的传染病[1],临床上非典型和多病原混合感染现象较为普遍[2-5],制约着猪养殖业的健康发展。本研究采用荧光PCR/RT-PCR方法,以无害化处理收集点的病死猪为检测对象,进行猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)、猪瘟病毒(CSFV)、猪圆环病毒(PCV-2和PCV-3)、猪伪狂犬病病毒(PRV)5种病原的核酸检测,旨在了解内江市秋冬季病死猪群中这5种病毒的感染情况,以期为该市猪病防控提供依据。
在内江市5个辖区的无害化处理收集点,每天采集1~2个收集点,根据采样当日无害化收集量及死猪来源,每个来源点随机采集3头(不足3头全采)病死猪组织病料(腹股沟淋巴结)。其中:秋季于2020年10月21—26日,在10个无害化处理收集点,共采集58份样品,来源于22个规模场和7个散养户;冬季于2020年12月1—7日,在14个无害化处理收集点,共采集50份样品,来源于18个规模场和5个散养户。采集的108份样品信息详见表1。
表1 内江市秋冬季无害化处理病死猪样品采集信息统计
从每份组织病料(腹股沟淋巴结)的3个位置取样品共约1 g,用眼科剪剪碎混匀后装入2 mL无酶离心管中;在全自动组织研磨仪中,加入1 mL PBS和金属研磨珠研磨2 min;待匀浆后,置于高速冷冻离心机8 000 r/min离心2 min;取上清液600 µL于1.5 mL灭菌离心管中,-20 ℃保存备用。
TGuide磁珠法病毒RNA/DNA提取试剂盒,购自北京天根生化科技有限公司(批号U8319)和西安天隆科技有限公司(批号20011710T913);PRRSV和CSFV双重实时荧光RT-PCR检测试剂盒(批号PRRSV&CSFV20200922P),购自哈尔滨元亨生物药业有限公司;PCV-2和PCV-3型双重荧光PCR检测试剂盒(批号040332002)、PRV-gE基因荧光PCR检测试剂盒(批 号040042006),均购自青岛立见诊断技术发展中心。
旋涡混匀器、单道微量移液器(德国Brand公司)、Ⅱ级生物安全柜(赛默飞世尔科技中国有限公司)、荧光定量PCR仪(Bio-Rad Laboratories Inc)、全自动组织研磨仪(上海净信实业发展有限公司)、高速冷冻离心机(赛默飞世尔科技中国有限公司)。
1.5.1DNA/RNA抽提 参照磁珠法病毒RNA/DNA提取试剂盒说明书,在第1孔加入20.0 mL蛋白酶K和200.0 mL样品,执行DP604-Virus或VIRUS RNA/DNA程序进行DNA/RNA抽提;抽提完毕后,在第5孔/第6孔取出RNA/DNA,用封板膜封好置于-20 ℃环境中备用。
1.5.2荧光PCR/RT-PCR扩增 PRRSV/CSFV反应体系:无菌无核酸酶水5.6 µL、RT-PCR反应液12.5 µL、酶混合液1.0 µL、荧光探针3.9 µL。在反应管中分别加入反应体系23.0 µL和DNA/RNA模板2.0 µL,做好标记,轻弹混匀并瞬时离心;将反应管置于荧光PCR仪中,分别选择FAM通道和HEX通道进行如下反应:42 ℃ 5 min,95 ℃ 10 s;95 ℃ 5 s,60 ℃ 35 s,循环40次,每次在循环第2步(60 ℃ 35 s)收集荧光信号。PCV-2/PCV-3/PRV反应体系:将引物探针和酶反应液瞬时离心后,将1 000.0 µL酶反应液全部移至引物探针管中,颠倒混匀6次,充分混匀,配制成50份PCR反应液。根据样品量,在每个反应管中各加入反应体系20.0 µL,再分别加入5.0 µL样品DNA/RNA模板和阴阳性对照模板,做好标记,轻弹混匀并瞬时离心;将反应管置于荧光PCR仪中,分别选择FAM通道和HEX通道进行如下反应:95 ℃ 30 s;95 ℃ 10 s,60 ℃ 20 s,循环40次,每次在循环第2步(60 ℃20 s)收集荧光信号。
根据试剂盒说明书进行结果判定。PRRSV/CSFV:阳性对照Ct ≤30并出现特定的扩增曲线,阴性对照无Ct值并且无特定扩增曲线,试验结果成立;被检样品FAM荧光信号Ct ≤30并出现特异性扩增曲线,判为PRRSV核酸阳性;被检样品HEX荧光信号Ct ≤30并出现特异性扩增曲线,判为CSFV核酸阳性;若被检样品病毒含量较低,30 <Ct <36并出现特定扩增曲线,判为可疑,需重新提取样本后进行扩增,若仍为疑似,则判为阳性,其余为阴性。PCV-2/PRV-gE/PCV-3:阳性对照Ct ≤35并出现特异扩增曲线,阴性对照无Ct值并且无特定扩增曲线,试验结果成立;被检样品FAM荧光信号Ct ≤38并出现典型的扩增曲线,判为PCV-2/PRV-gE核酸阳性;被检样品HEX荧光信号Ct ≤38并出现典型的扩增曲线,判为PCV-3核酸阳性,其余为阴性。
根据样品数及检测结果,采用Office Excel 2007软件计算阳性率。
不同病种统计结果(表2)显示:PCV-2和PRRSV阳性检出率较高,样品阳性检出率分别为44.4%和33.3%,场户阳性检出率分别为46.2%和34.6%;其次是PCV-3和CSFV,样品阳性检出率分别为12.9%和7.4%,场户阳性检出率分别为11.5%和7.7%;未检出PRV。
表2 秋冬季5种病毒核酸阳性检出率统计结果 %
不同来源场点统计结果(表3)显示:规模场的PRRSV、CSFV、PCV-3场户阳性检出率高于散养户,其中PRRSV和CSFV未在散养户中检出;散养户的PCV-2场户阳性检出略高于散养户。
表3 秋冬季不同来源场点的场户病原阳性统计结果
混合感染统计结果(表4)显示,检测样品的混合感染率为20.4%,其中二重感染率为18.5%,主要是“PCV-2+PRRSV”“PCV-2+PCV-3”;三重感染率为1.9%,为“PCV-2+PRRSV+PCV-3”。
表4 检测样品多病原混合感染阳性率统计结果 %
不同生长阶段统计结果(表5)显示,CSFV阳性主要在保育阶段被检出,PRRSV、PCV-2、PCV-3阳性主要在育肥阶段被检出。
表5 猪只不同生长阶段病原阳性样品占比分布 %
本次检测从4个不同规模养殖场检出CSFV,样品阳性检出率为7.4%,与四川省南充市(临床病料,9.21%)[6]、四川省绵阳市(病死猪组织,5.71%)[7]的检测结果类似,表明四川省实施的猪瘟过渡期政策取得较好的防控效果,尤其是散养户中未检出阳性。本次检出的CSFV阳性病料主要来源于保育仔猪。这可能同母源抗体衰减、免疫失败或注射疫苗后抗体未及时起效有关。因此,应加强母源抗体监测,及时注射猪瘟疫苗,加强疫苗运输、贮存管理,强化疫苗免疫技术培训。
本次检测从18个不同规模养殖场中检出PRRSV,样品阳性检出率为33.3%,高于南充市(临床病料,17.11%)[6]、遂宁市(病死猪组织,22.22%)[7]等四川省内其他地区,表明四川省部分地区PRRSV感染现象较为普遍。PRRSV在哺乳、育肥两个年龄段均有检出,其中在育肥阶段检出最多。经进一步调查发现,75%(12/16)的养猪场未免疫PRRSV疫苗,故应重视疫苗免疫,加强病原和抗体检测,推进PRRSV净化。散养户中未检出PRRSV,这可能跟饲养方式及饲养环境和密度有关。
PCV-2主要侵害猪免疫系统造成免疫抑制,对猪危害极大,已被证实能引起包括断奶仔猪多系统衰竭综合征(PMWS)、皮炎肾病综合征(PDNS)、呼吸道综合征、仔猪先天性震颤、母猪繁殖障碍等一系列病症[8-9]。现临床上多采用全病毒灭活苗或亚单位疫苗在仔猪断奶后免疫[10],起到一定的防控效果[11]。本次检测发现,PCV-2样品阳性检出率为44.4%,与四川省巴中市和乐山市(病死猪组织,40%)的检测结果类似[7],表明猪群中PCV-2感染极为普遍。内江市散养户PCV-2检出率略高于规模场,且在猪只保育和育肥阶段均有检出,其中育肥阶段尤其严重,占比91.3%,多呈混合感染状态。这可能是因为部分规模场和散养户防疫意识不到位,基本没有进行PCV-2免疫;PCV-2阳性检出多在猪只育肥后期,说明仅在断奶后免疫1次PCV-2疫苗,不足以保护育肥阶段猪只免受PCV-2侵袭。由此建议,可根据抗体水平衰减情况,在育肥阶段加强免疫1次。此外,PCV-2存活力极强,在75 ℃加热15 min后仍具有传染性[12],因此应注意合理采取消毒灭源措施。
PCV-3是2016年在美国首次报道被检出的新型圆环病毒[13],随后在国内也检测到[14-15]。PCV-3感染可引起心脏、呼吸系统、生殖系统等多系统炎症[16-17]。此次检测的阳性检出率为12.9%,与南充市(病死猪组织,10.53%)[6]、资阳市(病死猪组织,15%)和乐山市(病死猪组织,10%)[7]的检测结果类似,说明PCV-3零星存在。内江市规模场PCV-3阳性率略高于散养,主要在育肥阶段检出,这可能跟地域分布、饲养环境和密度以及猪只对疫病的抵抗力有关。此外,该病毒在环境中广泛存在,且具备跨种传播能力[18],需引起重视。
PRV是猪伪狂犬病病原,为自然疫源性病原[19],主要引起神经和呼吸系统方面的疾病[20]。此次在内江市猪群中未检测到PRV野毒感染,与四川省13个地区病死猪组织检出率为0[7]的结果一致,说明PRV-gE基因缺失苗免疫取得了较好的防控效果,为后续猪伪狂犬病净化起到积极的推动作用。此外,动物疫病发生是一个动态的发展过程,因此内江市仍需要持续加强PRV检测,实时掌握其感染情况。
本次检测结果表明,内江市存在PRRSV、PCV-2、PCV-3和CSFV这4种病原的混合感染,混合感染率为20.4%,其中双重和三重感染率分别为18.5%和1.9%,同四川泸州、遂宁、资阳、广安等13个市(28.67%)[7]、南充市(13.82%)[6]检测结果类似,表明双重感染现象普遍存在。其中双重混合感染以“PRRSV+PCV-2”“PCV-2+PCV-3”为主。PCV-2、PRRSV可引起机体免疫抑制[21],导致对原发性和继发性病原体感染的易感性增加[22],进而增加发病率和死亡率。所以单靠疫苗免疫来实现疫病防控是不够的,应从猪场生物安全管理角度出发进行疫病综合防控,进而实现疫病净化。
检测发现,四川省内江市病死猪群中PRRSV、PCV-2感染较为严重,PCV-3零星分布,且呈现一定的混合感染状态,而CSFV和PRV感染得到有效控制。因此,应加强PRRSV、PCV-2、PCV-3感染的监测与控制。