尿激酶原对冠脉结扎大鼠心肌缺血再灌注损伤的保护作用

2021-02-03 06:44刘江波张金盈刘志远仇瑞莉张松雨梅艳阳赵晓宁南阳市中心医院心血管内科南阳473009郑州大学第一附属医院心血管内科郑州450052
西北药学杂志 2021年1期
关键词:低剂量心肌细胞心肌

刘江波,张金盈,刘志远,仇瑞莉,张松雨,梅艳阳,赵晓宁,李 纲(.南阳市中心医院心血管内科,南阳 473009;2.郑州大学第一附属医院心血管内科,郑州 450052)

心肌缺血再灌注损伤(MIRI)是指中断的心肌组织血流恢复正常灌注后,心肌损伤进行性加重的病理过程[1-2]。缺血期可引起心肌超微结构、能量代谢、氧化应激、心肌损伤及线粒体凋亡等一系列损伤性变化,严重者会因心律失常而导致猝死[3]。治疗MIRI的药物较多,其中尿激酶原(PRO)属于第二代溶栓药,是尿激酶的前体物质,具有纤维蛋白特异性[4]。高海英等[5]研究表明,PRO可明显改善急性心肌梗死患者的心肌功能,但目前关于其治疗MIRI的作用机制尚不完全统一。本文旨在探究PRO对冠脉结扎大鼠心肌缺血血流动力学和MIRI的影响,以期了解PRO对MIRI患者的治疗作用机制。

1 仪器与材料

1.1仪器 电子天平,北京赛多利斯仪器有限公司;低温离心机,湖南恒诺离心机有限公司;DW-T6型彩色多普勒超声仪,江苏大为医疗有限公司;小动物Medlab生物信号采集系统,南京美易公司;UV-240型紫外分光光度计,日本Shimadzu公司;Bx50F4型光学显微镜,日本Olympus公司;全自动生化分析仪,日本 Furuno Electric公司;蛋白电泳及转膜仪,美国Bio-Rad公司;凝胶成像系统,以色列DNR公司;流式细胞仪,赛默飞世尔科技有限公司;LD-66型实验室切片机,长沙益广制药机械公司。

1.2试药 肿瘤坏死因子-α(TNF-α)、白细胞介素-6(IL-6)、白细胞介素-1β(IL-1β)试剂盒以及苏木素、伊红,均购自武汉博士德生物工程有限公司;丙二醛(MDA)、超氧化物歧化酶(SOD)、活性氧(ROS)检测试剂盒,均购自上海恒远生物科技有限公司;戊巴比妥钠,中国医药集团上海化学试剂公司;FITC标记Annexin V凋亡检测试剂盒,购自四季青生物工程材料有限公司;Bcl-2相关X蛋白(Bax)、B淋巴细胞瘤-2(Bcl-2)单克隆抗体,购于美国Santa Cruz公司;HRP羊抗兔IgG等二抗,购自美国Thermo公司。

1.3动物 SPF级3周龄SD大鼠60只,购自广东医学院实验动物中心,粤监证字 2015A029。本实验经动物伦理委员会批准。

2 方法

2.1分组及建立模型 将60只大鼠适用性喂养 1 周,随机选15只作为对照组,其余45只大鼠采用冠脉结扎手术制备MIRI模型[6]。给造模大鼠腹腔注射戊巴比妥钠溶液50 mg·kg-1麻醉,切开左胸第 2~5肋之间的皮肤,分离皮下组织及前锯肌和胸大肌后切开第 2~3 肋间肌暴露心脏,结扎,使得心肌细胞缺血,缺血时间为15 min,后灌注10 min,1 h后再次缺血15 min,后灌注10 min,消毒,缝合。动脉结扎后使用心电图检测,结果显示,ST段明显抬高、T波高耸,持续30 min后打开结扎线,恢复血流灌注,心电图显示结扎后ST段逐渐下降、T波逐步恢复视为造模成功。将造模成功的45只大鼠均分为模型组和PRO高、低剂量组(分别静脉注射2,1 mg·kg-1PRO),对照组和模型组分别注射等量生理盐水,每日1次,持续7 d。

2.2检测项目

2.2.1大鼠血流动力学检测 完成药物干预后24 h,采用DW-T6型彩色多普勒超声仪检测各组大鼠平均动脉压(MAP)、左室收缩压(LVSP)和左心室舒张末压(LVEDP)水平。

2.2.2大鼠血清炎性因子及氧化应激物质检测 完成大鼠血流动力学检测后从颈总动脉插管接取0.5 mL大鼠血液,严格按照MDA、SOD、ROS、IL-6、IL-1β和TNF-α试剂盒说明书操作,检测各成分水平。

2.2.3HE染色观察大鼠心肌损伤 处死大鼠后,取大鼠心肌组织,用二甲苯浸泡后再用酒精梯度脱水,苏木精浸泡后用盐酸酒精分化、氨水冲洗,用伊红染色,酒精浸泡脱水,中性树胶封片,在400倍镜下观察大鼠的心肌细胞状态。

2.2.4流式细胞仪检测大鼠心肌细胞凋亡 将各组大鼠心肌组织剪碎后用胰酶消化制成细胞悬液,离心机在4 ℃恒温下以3 000 r·min-1离心 5 min,加入Binding Buffer和Annexin V-FITC混匀,室温避光孵育并加入Binding Buffer后用流式细胞仪检测。

2.2.5Western Blot法检测蛋白表达水平 取大鼠心肌组织,用胰蛋白酶消化,提取总蛋白,转移蛋白到PVDF膜,室温封闭2 h后加入对应抗体,孵育2 h,以β-actin作为内参蛋白,对比条带颜色,计算各蛋白的表达水平。

3 结果

3.1大鼠血流动力学检测结果 见表1。由表1可知,与对照组比较,模型组大鼠MAP和LVSP水平显著降低,LVEDP显著升高(P<0.01);与模型组比较,PRO低剂量组大鼠MAP和LVSP水平显著升高,LVEDP水平显著降低(P<0.01);与PRO低剂量组比较,PRO高剂量组大鼠MAP和LVSP水平显著升高,LVEDP水平显著降低(P<0.01)。

3.2大鼠血清炎性因子检测结果 见表2。由表2可知,与对照组比较,模型组大鼠血清IL-6、IL-1β和TNF-α水平均显著升高(P<0.01);与模型组比较,PRO低剂量组大鼠血清IL-6、IL-1β和TNF-α水平均显著降低(P<0.01);与PRO低剂量组比较,PRO高剂量组大鼠血清IL-6、IL-1β和TNF-α水平显著降低(P<0.01)。

表1 大鼠血流动力学检测结果

表2 大鼠血清炎性因子检测结果

3.3大鼠氧化应激水平检测结果 见表3。由表3可知,与对照组比较,模型组大鼠血清MDA和ROS水平显著升高,SOD水平显著降低(P<0.01);与模型组比较,PRO低剂量组大鼠血清MDA和ROS水平显著降低,SOD水平显著升高(P<0.01);与PRO低剂量组比较,PRO高剂量组大鼠血清MDA和ROS水平显著降低,SOD水平显著升高(P<0.01)。

表3 大鼠氧化应激水平检测结果

3.4大鼠心肌损伤HE染色观察结果 见图1。由图1可知,对照组大鼠心肌组织、肌外膜、心肌纤维均正常且完整;模型组大鼠心肌纤维弯曲,肌红蛋白溶解,同时心肌细胞核固缩、溶解,肌束膜破裂;PRO高、低剂量组心肌组织少量肌纤维断裂溶解弯曲。

3.5大鼠心肌细胞凋亡检测结果 见表4和图2。由表4和图2可知,与对照组比较,模型组大鼠心肌细胞凋亡率显著升高(P<0.01);与模型组比较,PRO低剂量组大鼠心肌细胞凋亡率显著降低(P<0.01);与PRO低剂量组比较,PRO高剂量组大鼠心肌细胞凋亡率显著降低(P<0.01)。

表4 各组大鼠心肌细胞凋亡率比较

图1 大鼠心肌损伤HE染色观察结果(×400)

图2 大鼠心肌细胞凋亡检测结果

3.6大鼠凋亡蛋白及c-Jun氨基末端激酶(JNK)信号通路蛋白检测结果 见图3和表5。由图3和表5可知,与对照组比较,模型组大鼠心肌组织Bax和磷酸化c-Jun氨基末端激酶 (P-JNK) 蛋白表达水平显著升高,Bcl-2蛋白表达水平显著降低(P<0.01);与模型组比较,PRO低剂量组大鼠心肌组织Bax和P-JNK蛋白表达水平显著降低,Bcl-2蛋白表达水平显著升高(P<0.01);与PRO低剂量组比较,PRO高剂量组大鼠心肌组织Bax和P-JNK蛋白表达水平显著降低,Bcl-2蛋白表达水平显著升高(P<0.01)。

图3 大鼠凋亡蛋白及JNK信号通路蛋白检测结果

表5 大鼠凋亡蛋白及JNK信号通路蛋白检测结果

4 讨论

MIRI会导致心律失常,影响血流动力学[7]。本研究发现,与模型组相比,PRO低剂量组大鼠MAP和LVSP水平显著升高,LVEDP显著降低,说明PRO可有效改善大鼠MIRI后的血流动力学。这可能是因为PRO含有纤溶酶原激活剂抑制剂的作用位点,可有效抑制缺血后的心脏出现血栓,同时可较好地溶解血凝块从而改善血流动力学。同时PRO可以通过缓解心脏的损伤,改善心肌的供血能力,从而改善血流动力学。温且木·阿布都拉等[8]研究表明,PRO可有效缓解大鼠MIRI,改善血流动力学,与本研究结论一致。

MIRI后会发生一系列免疫反应[9],促炎性细胞因子主要包括TNF-α、IL-1β、IL-6 和白细胞介素-8(IL-8)。其中IL-6和TNF-α由单核细胞、巨噬细胞和非免疫细胞等分泌,是主要的促炎症因子[10-11]。由本研究结果可知,与模型组比较,使用PRO处理后大鼠血清中IL-6、IL-1β和TNF-α水平均显著降低,说明PRO可有效抑制大鼠体内的炎症反应。这可能是因为PRO可以作用JAK2/STAT3信号通路,通过调节该信号通路调节其下游炎症因子的分泌,有效缓解大鼠心肌细胞缺血后的炎症反应。王晓亚[12]研究表明,PRO可有效缓解心肌梗死患者炎症反应,与本研究结论类似。

心肌细胞缺血后会产生大量的ROS,使得机体发生氧化应激[13]。发生氧化应激后,细胞膜的通透性会改变并使得细胞内酶MDA和ROS大量释放到血液中[14]。本研究发现,与模型组比较,使用PRO处理后MDA和ROS水平显著降低。这可能是由于PRO具有抗氧化性,可有效抑制ROS对细胞膜的损伤,防止细胞内酶MDA和ROS大量释放到血液中。刘志远等[15]研究表明,PRO可有效缓解大鼠MIRI和氧化应激反应,与本研究结论相一致。

细胞凋亡是MIRI中常见的现象之一,Bcl-2家族是常见的凋亡控制基因[16]。该家族主要包括Bcl-2基因和Bax基因,Bcl-2为抑凋亡基因,Bax为促凋亡基因[17]。研究发现,使用PRO处理后Bcl-2蛋白表达水平显著升高、Bax蛋白表达水平显著降低,说明使用PRO处理后大鼠缺血后心肌细胞的凋亡得到缓解。这可能是因为PRO能有效抑制凋亡基因的表达,并促进抗凋亡基因的表达,防止MIRI后的心肌细胞凋亡。罗敏等[18]研究表明,降低MIRI后细胞的凋亡可有效缓解MIRI,与本研究结论类似。

JNK 信号通路调控炎症反应在MIRI病理过程中起重要的作用[19-20]。研究表明,激活JNK信号通路后会促进白细胞介素-1 (IL-1)和转化生长因子-β(TGF-β)的表达,激活 TGF-β激酶 1和 Toll 样受体,使得转化生长因子激酶(TAK1)被激活,最终反作用于JNK 通路,使之激活。本研究发现,使用PRO处理后,大鼠心肌组织P-JNK蛋白表达水平显著降低。说明PRO可有效抑制JNK信号通路,并通过JNK信号通路抑制下游的炎症反应及氧化应激反应。张国明[21]研究表明,缓解MIRI可通过抑制JNK信号通路的活化、降低炎症反应得以实现,与本研究结论一致。

综上所述,PRO可抑制JNK信号通路的活化,从而缓解大鼠MIRI。但本实验涉及到的样本量较少,在后续的实验中还需扩大样本量进行实验。

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