幽门螺旋杆菌感染与胃癌患者血清IL-1β、IL-8、IL-32的关系

2020-10-13 04:45郭辉程广坤张晓雪季洁如
海南医学 2020年18期
关键词:受检者呼气尿素

郭辉,程广坤,张晓雪,季洁如

上海健康医学院附属浦东新区人民医院检验科1、消化内科2,上海 201299

胃癌是临床上常见的恶性肿瘤,具有较高的致死率,近年来随着人们生活节奏的加快和不良饮食习惯的增加,我国胃癌发病率呈逐年上升趋势,最新报道显示,目前我国胃癌的发病率位于所有恶性肿瘤的第二位,死亡率位于第三位,且发病呈年轻化趋势[1]。胃癌的病因和发病机制复杂,幽门螺旋杆菌(Helicobacter pylori,Hp)感染被认为是胃癌发生的重要危险因素[2]。相关研究表明,Hp 可以引起胃黏膜炎症反应和癌前病变,最终发展为胃癌[3]。白细胞介素-1β(interleukin-1β,IL-1β)、白细胞介素-8(interleukin-8,IL-8)和白细胞介素-32(interleukin-32,IL-32)均是与肿瘤发生密切相关的细胞因子。有报道显示,IL-1β广泛参与机体组织破坏和慢性炎症,被认为是驱动癌症炎症的细胞因子[4]。IL-8 是趋化因子家族的重要成员,在胃癌的发生中起到重要作用[5]。而IL-32 主要由胃黏膜组织分泌,在胃癌的发生和发展中扮演重要的角色[6]。本研究通过探讨Hp 感染与胃癌患者血清IL-1β、IL-8、IL-32 的关系,旨在为胃癌的诊断和早期治疗提供依据。

1 资料与方法

1.1 一般资料 选取2017年1月至2019年10月浦东新区人民医院收治的胃癌患者100 例作为研究组。纳入标准:(1)所有患者均经胃镜诊断为胃癌;(2)均接受碳14 尿素呼气试验;(3)无碳14 尿素呼气试验禁忌。排除标准:(1)合并其他器官恶性肿瘤者;(2)试验前经手术、放疗或化疗者;(3)合并免疫系统疾病及感染者;(4)妊娠哺乳期女性。根据是否存在Hp感染将患者分为Hp阳性胃癌组66例,Hp阴性胃癌组34例。Hp阳性胃癌组中男性40例,女性26例;年龄45~78岁,平均(61.23±7.37)岁。Hp 阴性胃癌组中男性19 例,女性15 例;年龄43~79 岁,平均(60.53±6.41)岁。另选取同期于我院体检时行胃镜检查的非胃癌者100例作为对照组。纳入标准:(1)受检者均经胃镜检查无胃癌及胃炎;(2)受检者均接受碳14尿素呼气试验;(3)无碳14尿素呼气试验禁忌。排除标准:(1)合并其他器官恶性肿瘤者;(2)试验前经手术、放疗或化疗者;(3)合并免疫系统疾病及感染者;(4)妊娠哺乳期女性。根据是否存在Hp感染分为Hp阳性非胃癌组31例,Hp阴性非胃癌组69 例。Hp 阳性非胃癌组中男性17 例,女性14 例;年龄42~78岁,平均(61.88±6.12)岁。Hp阴性非胃癌组中男性42 例,女性27 例;年龄44~79 岁,平均(62.11±7.67)岁。各组受检者的一般资料比较差异均无统计学意义(P>0.05),具有可比性。本研究经医院伦理委员会批准,所有受检者均对研究知情同意。

1.2 检查方法

1.2.1 胃镜检查 所有受检者均在胃镜下钳取胃黏膜组织,将所取胃黏膜组织,经10%甲醛溶液固定、石蜡包埋制成连续切片,应用Giemsa法进行染色,并在1 000 倍显微镜下观察,如切片组织染成紫红色则为Hp阳性。

1.2.2 碳14尿素呼气试验 所有受检者空腹状态下进行碳14尿素呼气试验,用水吞服尿素(碳14)胶囊1粒(厂家:深圳市中核海得威生物科技有限公司;批准文号:国药准字H20068129;规格:40粒),休息15 min后取出呼气卡,受检者向呼吸卡吹气3 min,直至呼吸卡由白色变为橘黄色,然后将呼吸卡插入Hp检测仪,5 min后打印结果,若碳14 尿素呼气试验Hp 感染U 值超过100 dpm可判定为阳性[7]。

1.2.3 血清学检查 所有受检者均采集清晨空腹外周静脉血5 mL,经3 500 r/min 离心10 min,离心半径12 cm分离血清,保存于-80℃冰箱中待测。应用酶联免疫吸附法测定血清IL-1β、IL-8、IL-32 水平,试剂盒购自北京万泰德瑞诊断技术有限公司,严格按照相关试剂盒说明书进行操作。

1.3 结果判定 结合组织Giemsa染色和碳14尿素呼气试验两项结果,如两者均为阳性则判定为Hp感染。

1.4 统计学方法 应用SPSS26.0 统计学软件进行统计学分析,计量资料以均数±标准差(x-±s)表示,组间比较采用t检验,计数资料比较采用χ2检验,应用Pearson相关性分析Hp感染与受检者血清IL-1β、IL-8、IL-32的相关性,以P<0.05为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 研究组和对照组受检者的血清IL-1β、IL-8、IL-32 水平及Hp 感染U 值比较 研究组患者的血清IL-1β、IL-8、IL-32 水平及Hp 感染U 值明显高于对照组,差异均有统计学意义(P<0.05),见表1。

表1 研究组和对照组受检者的血清IL-1β、IL-8、IL-32 水平及Hp感染U值比较(±s)

表1 研究组和对照组受检者的血清IL-1β、IL-8、IL-32 水平及Hp感染U值比较(±s)

组别研究组对照组t值P值例数100 100 IL-1β(ng/L)136.12±29.45 29.17±8.59 34.863<0.05 IL-8(ng/L)206.05±38.35 46.74±12.36 39.538<0.05 IL-32(ng/L)129.39±26.54 58.43±10.75 24.781<0.05 Hp感染U值228.38±56.86 89.71±28.78 21.759<0.05

2.2 Hp 阳性或阴性受检者的血清IL-1β、IL-8、IL-32 水平及Hp 感染U 值比较 Hp 阳性胃癌组患者的血清IL-1β、IL-8、IL-32 水平及Hp 感染U 值明显高于Hp阴性组、Hp阳性非胃癌组,差异均有统计学意义(P<0.05);Hp阳性非胃癌组受检者的血清IL-1β、IL-8、IL-32水平及Hp感染U值明显高于Hp阴性非胃癌组,差异均有统计学意义(P<0.05);Hp 阴性胃癌组患者的血清IL-1β、IL-8、IL-32 水平明显高于Hp 阴性非胃癌组,差异均有统计学意义(P<0.05),但Hp 感染U 值比较差异无统计学意义(P>0.05),见表2。

表2 Hp阳性或阴性受检者的血清IL-1β、IL-8、IL-32水平及Hp感染U值比较(±s)

表2 Hp阳性或阴性受检者的血清IL-1β、IL-8、IL-32水平及Hp感染U值比较(±s)

注:与Hp阳性非胃癌组比较,aP<0.05;与Hp阴性非胃癌组比较,bP<0.05。

组别Hp阳性胃癌组Hp阴性胃癌组t值P值Hp阳性非胃癌组Hp阴性非胃癌组t值P值IL-1β(ng/L)175.84±26.89a 18.97±4.32b 33.712<0.05 64.18±14.36 9.21±2.19 31.187<0.05 IL-8(ng/L)268.28±22.56a 24.65±5.31b 61.949<0.05 107.79±18.92 12.54±2.55 41.242<0.05 IL-32(ng/L)158.28±19.81a 35.27±7.27b 34.943<0.05 124.03±19.42 20.49±3.17 43.280<0.05例数66 34 31 69 Hp感染U值285.54±35.27a 50.26±10.61 37.940<0.05 152.75±23.92 48.38±8.92 31.804<0.05

2.3 Hp 感染与受检者血清IL-1β、IL-8、IL-32 的相关性 经Pearson相关性分析,Hp阳性者血清IL-1β、IL-8、IL-32与Hp感染U值均呈正相关(P<0.05),Hp阴性者血清IL-1β、IL-8、IL-32 与Hp 感染U 值均无相关性(P>0.05),见表3。

表3 Hp感染与受检者血清IL-1β、IL-8、IL-32的相关性分析

3 讨论

胃癌发病早期缺乏特异性临床表现,大部分患者确诊时已经处于中晚期,丧失了手术根治的最佳时机,导致胃癌死亡率居高不下。近年来,随着胃镜检查技术的普及,使部分胃癌患者可在早期即确诊,在一定程度上提高了胃癌早期诊断率。但由于胃镜需要在麻醉状态下插管,操作有一定难度,且可能引起受检者恐惧和不适,使部分人不愿意接受胃镜检查[8]。研究胃癌早期诊断具有重要的临床价值。研究表明,胃癌的发生、发展是一个多因素、多阶段的漫长复杂过程,其发病与遗传因素、环境、Hp感染、饮食不规律、吸烟、酗酒等不良生活习惯有密切关系[9-10],其中Hp 感染被认为是导致胃癌发生的重要因素,Hp已被世界卫生组织确认为Ⅰ类致癌原。研究表明,Hp 可以引起胃黏膜组织萎缩和化生,导致胃黏膜恶性病变[11]。由于Hp 是一种微生物,当机体感染Hp 后可以引起机体免疫应答,因此通过检测相关细胞因子可以为胃癌诊断提供依据。

另有研究表明,慢性炎症在胃癌的发生及患者预后有密切关系[12]。IL-1β是白介素1的亚型,主要由内皮细胞、单核细胞和成纤维细胞生成[13]。研究表明,IL-1β可以促进B淋巴细胞增殖和分化,进而促进免疫球蛋白的分泌[14]。IL-1β能够刺激集落刺激因子、血小板生长因子的产生,激活T淋巴细胞,在机体免疫应答和组织修复中发挥重要作用[15]。魏茜等[16]报道,胃癌组织中存在IL-1β异常高表达,并且IL-1β发挥抗Hp感染的作用。IL-8主要由单核细胞、内皮细胞和成纤维细胞合成分泌,具有趋化T 淋巴细胞和嗜碱性粒细胞的作用[17]。IL-8可以增强机体非特异性炎症反应程度,与慢性胃炎、胃癌的发生有密切关系[18]。IL-32 是近年来新发现的细胞因子,主要由NK 细胞和T 淋巴细胞分泌[19]。而IL-32 可以激活NF-κB、丝裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinase,MAPK)等多个信号通路,引起IL-1β、IL-8和肿瘤坏死因子等炎症因子释放[20]。本研究通过对胃癌患者和非胃癌者血清IL-1β、IL-8、IL-32 水平及Hp 感染U 值检测发现,胃癌患者血清IL-1β、IL-8、IL-32水平及Hp感染U值均高于非胃癌者,提示IL-1β、IL-8、IL-32、Hp 感染与胃癌的发生有密切关系。究其原因,大部分胃癌患者存在Hp 感染,导致血清IL-1β、IL-8、IL-32 水平及Hp感染U 值升高[21]。进一步分析显示,无论是否患有胃癌,Hp 阳性者血清IL-1β、IL-8、IL-32 水平及Hp 感染U值均高于Hp阴性者,证实IL-1β、IL-8、IL-32、Hp感染与胃癌的发生有密切关系。WU等[22]报道Hp的Cag可以活化NF-κB 和MAPK 信号通路,引起炎症反应。而IL-32也可以激活NF-κB和MAPK信号通路,引起IL-1β、IL-8释放。笔者分析,Hp感染后可能通过活化NF-κB 和MAPK 信号通路,引起血清IL-1β、IL-8、IL-32 水平升高[23]。本研究结果还显示,Hp 阳性胃癌组血清IL-1β、IL-8、IL-32 水平及Hp 感染U 值均高于Hp 阳性非胃癌组;Hp 阴性胃癌组血清IL-1β、IL-8、IL-32 水平均高于Hp 阴性非胃癌组。表明除与Hp 有关外,胃癌患者血清IL-1β、IL-8、IL-32 水平均高于非胃癌者。分析胃癌患者存在细胞免疫活化,T 淋巴细胞和NK 细胞发挥抗癌作用,导致血清IL-1β、IL-8、IL-32水平升高[24]。

另外,本研究发现Hp 阳性者血清IL-1β、IL-8、IL-32 与Hp 感染U 值均呈正相关,其主要原因可能在于:Hp 感染可通过调控相关的信号通路,引起血清IL-1β、IL-8、IL-32 水平升高[25]。而对于Hp 阴性者,如未发生胃癌,血清IL-1β、IL-8、IL-32 可能处于较低水平,如发生胃癌,由于存在细胞免疫活化,血清IL-1β、IL-8、IL-32水平升高,因此其水平与Hp感染U值并无相关性[26]。

综上所述,Hp 感染是胃癌发生的重要病因之一,Hp 感染与胃癌患者血清IL-1β、IL-8、IL-32 水平异常升高存在密切联系,在Hp 感染后胃癌的发病过程中IL-1β、IL-8、IL-32 发挥重要作用。临床工作中可能通过联合检测IL-1β、IL-8、IL-32 与碳14 尿素呼气试验,达到早期有效诊断因Hp感染导致的胃癌的目的。

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