刺五加多糖纳米乳对小白鼠的急性毒性和细胞毒性研究

2020-05-16 02:51李向辉闫盼盼刘永录
中国饲料 2020年5期
关键词:刺五加毒性多糖

李向辉, 康 宇, 尉 斌, 闫盼盼, 刘永录*

(1.河南牧业经济学院动物医学院,河南郑州 450046;2.华中农业大学动物医学院,湖北武汉430070)

刺五加多糖(ASPS)是一种天然来源的免疫多糖,安全、无毒,具有免疫刺激活性,能诱导并增强机体的细胞免疫和体液免疫应答,可作为一种免疫增强剂提高机体的免疫反应 (杨侃侃等,2013)。目前,已经从剌五加中分离提取出了数种由果糖、葡萄糖、阿拉伯糖等组成的多糖组分。研究表明,刺五加多糖具有良好的免疫调节、抗肿瘤、抗感染、解毒等功效(段雪磊等,2015;刘树民等,2014)。与其他植物多糖一样,刺五加多糖也存在机体代谢快和给药量大的问题;另外,还有部分的碱溶性多糖不容易被吸收。因此,提高刺五加多糖的生物利用度、缓释性及其在体内的吸收、免疫效果显得尤为重要。

纳米乳(NE)是一种由表面活性剂、助表面活性剂、油相、水相在适当比例下经乳化形成的一种粒径为1~100 nm的乳剂,具有粒径小、靶向性强、生物利用度高、能提高难溶性药物的溶解度等优点。

刺五加多糖纳米乳(ASPS-NE)是本课题组采用纳米乳化技术研制成功的一种纳米制剂,有望为兽医临床提供一种安全、有效的免疫增强剂。为进一步确定刺五加多糖纳米乳的安全性,本研究进行了刺五加多糖纳米乳对小白鼠的急性毒性试验和对L929细胞的细胞毒性试验,以期为刺五加多糖纳米乳在兽医临床上的合理安全应用提供参考。

1 材料与方法

1.1 试验材料

1.1.1 主要药品、试剂及设备 刺五加多糖,产地辽宁沈阳,由河南牧业经济学院制药工程学院药理实验室分离提取;无水乙醇、吐温-80、司盘-80(天津市科密欧化学试剂有限公司);液体石蜡、甘油(天津市德恩化学试剂有限公司);肉豆蔻酸异丙脂(浙江物美生物科技有限公司);氯化钠注射液 (山东鲁抗辰欣药业有限公司);10%的胎牛血清(美国Sigma公司);胰酶、RPMI-1640培养液、DMSO(北京索莱宝科技有限公司);CCK-8(日本东仁公司);蒸馏水,实验室自制。

酶标仪(LUX型,美国Thermo Fisher);倒置生物显微镜 (BX43型,日本奥林巴斯);离心机(5424R型,德国Eppendorf);独立送风隔离笼(IR-20 型,苏州冯氏);CO2培养箱(371 型,美国Thermo Scientific);超净工作台(SW-CJ-2FD 型,苏州净化)。

1.1.2 试验动物 Ballc/c小鼠 (体重18~22 g,雌雄各半),郑州大学实验动物中心提供,合格证:SCXK(豫)2017-0001;小白鼠常规饲养管理,温度18~22℃,相对湿度50%~70%;L929细胞,中科院上海细胞库提供。

1.2 试验方法

1.2.1 刺五加多糖纳米乳和空白纳米乳的制备按照袁珍珍等(2017)、宋冠男等(2013)和李树鹏等(2011)的方法制备刺五加多糖纳米乳和空白纳米乳。以吐温-80、司盘-80为表面活性剂,无水乙醇为助表面活性剂,石蜡油和IPM为油相,使吐温-80:司盘-80:无水乙醇:甘油:石蜡油:IPM:水溶液=12:4:1:1:4:3:1(质量比)。将适量的吐温-80、司盘-80、无水乙醇、甘油与适量的液体石蜡、IPM充分混合,然后在磁力搅拌器上搅拌,并逐滴滴加ASPS灭菌水溶液 (空白纳米乳用蒸馏水代替),直至形成澄清透明的纳米乳。制备好的纳米乳,放置 12 h,分装熔封于充氮安瓿瓶内,流通蒸汽灭菌半个小时即可。制得的纳米乳为淡黄色透明澄清液体,平均粒径为30.6 nm,ASPS含量为25.06 mg/mL。

1.2.2 小白鼠急性毒性试验 预试验:按简化寇氏法设计试验 (曹发昊等,2014;杨雪峰等,2011)。先计算出引起小鼠100%死亡和无死亡的剂量。98只小白鼠随机分为空白纳米乳组和ASPS-NE组,每组各49只,雌雄各半,各分为7个剂量组,每个剂量组7只小鼠,分别注射不同浓度的药液 (每20 g体重给药量分别为0.125、0.25、0.5、0.75、1.0、1.25、1.50 mL), 注射之前禁食不禁水12 h,采用肌肉注射的方法,给药后连续观察7 d,找出刺五加多糖纳米乳能使小鼠全部死亡的最小剂量(Dm)和能使小鼠全部存活的最大剂量(Dn)。

正式试验:参照预试验结果设计正式试验。98只小白鼠随机分为空白纳米乳组和ASPS-NE组,每组各49只,雌雄各半,各分为7个剂量组,每个剂量组7只小鼠,用药剂量换算成刺五加多糖 分 别 为 625、875、1125、1375、1625、1875、2125 mg/(kg.bw)。根据李向辉等(2013)的计算方法算出各组小白鼠的用药量,以此药量对小白鼠进行肌肉注射。注射给药后连续7 d观察小鼠的精神状况、行为活动、粪便等情况,记录各组的死亡数。最后剖检各组小鼠,观察内脏器官有无病变。将试验结果用Bliss软件进行分析,得出空白纳米乳和刺五加多糖纳米乳的LD50和95%的可信限。根据文献(夏鹏飞等,2017)的分级标准,进行急性毒性分级,并评价刺五加多糖纳米乳急性毒性的强弱。

1.2.3 L929细胞的细胞毒性试验 将小鼠成纤维细胞(L929细胞)传代后取对数生长期细胞制成1×105个/mL浓度的细胞悬液接种96孔培养板,并将细胞分为正常对照、阳性对照、多糖溶液、空白纳米乳和ASPS-NE 5个组,ASPS-NE组、阳性对照组、空白纳米乳组和多糖溶液组每孔加100μL细胞悬液,正常对照组只加100μL RPMI-1640培养液,每组三个重复,待细胞贴壁生长后去除原培养液,阳性对照组加DMSO 100μL,空白纳米乳组、刺五加多糖纳米乳组、多糖溶液组各加入不同浓度梯度的受试药物100μL,使各组浓 度 为 250、125、62.5、31.25、15.625、7.8125、3.9 μg/mL,于37℃、5%CO2培养箱中培养44 h左右后,倒置显微镜下观察细胞的生长状态及形态,然后每孔加10μL CCK-8,孵育2 h左右,用酶标仪于450 nm测各孔的OD值,参考刘昌孝等(2006)的方法计算细胞毒性分级(RGR)。

RGR/%=(试验组OD值-空白对照组OD值)/(正常对照组OD-空白对照组OD);

细胞毒性分级(RGR)标准为:0级(RGR≥100)或 1级(RGR 为 75~99)为合格。 2级(RGR为50~74)视细胞形态情况而定,3到5级(RGR为0~49)为不合格。

2 结果与分析

2.1 急性毒性试验 小鼠肌肉注射给药后,高剂量组小鼠1~2 h内出现呼吸困难、震颤惊厥、运动失调等症状,约7 h陆续有死亡小鼠,其他剂量组小鼠在7 d内都有部分小鼠死亡,剖检后观察内脏未见明显病理变化,存活小鼠逐渐恢复正常。

预试验结果:经预试验发现,ASPS-NE组和空白纳米乳组的Dm为1.72 g/mL、Dn为0.32 g/mL,按Dm量注射小鼠全部死亡,按Dn剂量注射小鼠均未出现死亡。正式试验结果:采用简化寇氏法 (杨慧等,2019)计算得空白纳米乳的LD50为1008.2 mg/(kg·bw) ,95% 可 信 限 为 777.04~1198.2 mg/(kg·bw);刺五加多糖纳米乳的 LD50为1157 mg/(kg·bw),95%的可信限为 949~1347.2 mg/(kg·bw)。具体试验结果见表 1。

2.2 细胞毒性试验 如表2所示,正常对照组RGR为102、0级毒、合格;阳性对照组RGR为22.7、4级毒、属于重毒;空白纳米乳组在剂量≥15.625μg/mL时RGR≤99、1级毒、合格;当浓度≤7.8125μg/mL时,RGR≥99、0级毒、 合格;ASPS药液组在浓度≥62.5μg/mL时RGR≤99、1级毒、合格;当浓度≤31.25μg/mL时RGR≥100、0级毒、合格;ASPS-NE组在浓度≥62.5μg/mL时RGR≤99、1级毒、合格;当浓度≤31.25μg/mL时RGR≥100、0级毒、合格;结果表明与空白纳米乳和正常对照组相比,ASPS-NE组毒性低,在低于31.25μg/mL浓度范围内ASPS-NE对细胞为0级毒。

3 小结与讨论

药物的安全性评价是研发新药的一个重要环节,安全性评价的目的在于了解药物单次或短时间多次给药后,动物产生的毒性反应及其严重程度,为临床安全用药及检测提供参考。

本研究在刺五加多糖纳米乳急性毒性预试验中发现,空白纳米乳与刺五加多糖纳米乳的Dm与Dn相同,均为1.72 g/mL和0.32 mg/mL,在正式试验中,刺五加多糖纳米乳的半数致死量为1157 mg/(kg·bw),而空白纳米乳为 1008.2 mg/(kg·bw),根据急性毒性试验分级标准(彭丽等,2019;邹绍宇等,2019),结果表明,空白纳米乳和ASPS-NE为低毒药物。细胞毒性试验结果表明ASPS-NE组在浓度≥62.5μg/mL时RGR≤99,为1级毒;当浓度≤31.25μg/mL时RGR≥100,0级毒,说明当浓度≤250μg/mL时ASPS-NE对细胞没有毒性,并且ASPS-NE比空白纳米乳和正常对照组毒性更低,说明刺五加多糖纳米乳降低了毒性。

表1 空白纳米乳、ASPS-NE急性毒性试验结果

表2 各用药组L929成纤维细胞的相对增值率RGR及毒性级数

经过对刺五加多糖纳米乳急性毒性、细胞毒性等方面的研究,表明ASPS-NE毒性低,LD50为1157 mg/(kg·bw),而空白纳米乳的 LD50为 1008.2 mg/(kg·bw)。另外,刺五加多糖纳米乳细胞毒性低,在药物浓度≤31.25μg/mL时为0级毒,对内脏器官无病理损害,在兽医临床上使用安全,具有很高的临床使用价值。

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