孟亮罗才奎戴小琴陶亮刘山王跃飞
作者单位:430071武汉 武汉市第三医院/武汉大学附属同仁医院1神经外科,2120救治中心,3胸外科
脑胶质瘤是中枢神经系统最常见的恶性肿瘤,3年生存率仅为5%[1]。脑胶质瘤干细胞(glioma stem cells,GSC)具有自我更新能力,是导致肿瘤复发、耐药及治疗失败的关键因素[2-3]。丝裂原活化蛋白激酶(mitogen activated protein kinase,MAPK)是在细胞增殖、分化、凋亡和应激反应中参与细胞内信号传导的蛋白激酶。MAPK激活可介导GSC自我更新、肿瘤启动和放射抗性形成,是脑胶质瘤进展和治疗抗性形成的重要步骤[4]。丝裂原活化蛋白激酶磷酸酶(mitogen-activated protein kinase phosphatase,MAP)受MAPK磷酸酶(MAPK phosphatases,MKPs)家族调控,能使保守基序中的苏氨酸和酪氨酸残基去磷酸化,从而抑制其活性。MKP-1是MKPs家族中功效最高,研究最深入的MAPKs磷酸酶。研究发现MKP-1在卵巢癌、肺癌及乳腺癌等发生发展和化疗耐药中起重要作用[5-6]。然而,MKP-1在肿瘤干细胞及脑胶质瘤中的作用未知。组蛋白去乙酰化酶抑制剂(histone deacetylase inhibitors,HDACi)是一类新的抗肿瘤药物,能促进未分化的癌细胞分化成熟。HDACi在GSC和肿瘤组织中均可发挥抗肿瘤作用,但HDACi的抗肿瘤机制尚未明了,且在不同肿瘤细胞中的抗癌机制不完全相同[7-8]。本研究探讨MKP-1对HDACi杀伤脑胶质瘤干细胞的影响及可能的作用机制。
收集武汉市第三医院神经外科2016年1月至2018年12月收治的53例脑胶质瘤患者的恶性胶质瘤组织及相应健康脑组织。纳入标准:⑴经组织学或细胞学检查确诊为世界卫生组织定义的Ⅳ期胶质瘤患者;⑵未接受放疗、化疗。排除合并精神性疾病,合并心、肺等其他主要脏器功能障碍,自身免疫疾病,以及严重营养不良患者。其中男性35例,女性18例,年龄41~69岁,平均年龄(57.3±11.3)岁。本研究经本院伦理委员会批准,患者及其家属知情同意。
DMEMF12培养基、胎牛血清、青霉素/链霉素购自美国Hyclone公司,人重组表皮生长因子、人重组碱性成纤维细胞生长因子、人白血病抑制因子购自美国Chemicon公司;B27购自美国Life Technologies公司;TRIzol试剂、RT-PCR试剂盒和逆转录试剂购自日本Takara公司;MKP-1及内参GAPDH引物设计和合成均由上海吉玛科技生物有限公司完成;MTT、CCK-8、BCA试剂盒均购自日本Takara公司,CD133/2-PE购自美国Miltenyi Biotech公司;抗Sry相关HMG-box基因家族B亚型(Sry-related HMG box2,SOX2)、抗-SOX9、p38、JNK、ERK1/2抗体及内参GAPDH购自美国Santa公司;酶标仪、分光光度计和PCR仪购自美国Bio-Rad公司。
根据参考文献[9]对脑胶质瘤组织进行机械破碎,获得恶性胶质瘤细胞,以2%的胎牛血清在培养基中预培养1周,然后在含10%胎牛血清和抗生素的正常培养基中培养。通过形态学观察和抗-GFAP单克隆抗体染色确定其胶质源性。将恶性胶质瘤细胞分散成单个并用含0.5%牛血清白蛋白和2 mmol/L乙二胺四乙酸的磷酸盐缓冲溶液重悬,以微磁珠进行磁性标记,然后以磁细胞分离柱分离阳性磁细胞,CD133/2-PE染色后进行流式分析确认。筛选出的CD133+细胞即为GSC,以含有浓度均为20μg/L的人重组表皮生长因子、人重组碱性成纤维细胞生长因子、人白血病抑制因子和2% B27的DMEMF12培养基培养,维持原发性肿瘤分子特征。
转染前1 d,将胶质瘤干细胞用不含抗生素的培养基以1.0×105/孔的密度铺板。细胞用含浓度均为20μg/L的人重组表皮生长因子、人重组碱性成纤维细胞生长因子、人白血病抑制因子和2% B27的DMEMF12培养基培养,当细胞汇合度达70%~90%时,按Lipofectamine 2000转染试剂盒说明书进行转染,实验分为3组:MKP-1组转染MKP-1过表达质粒,对照组转染空载质粒,空白组仅加入等体积的含转染试剂的培养液。各组转染6 h后更换正常培养基,继续培养24 h后验证转染效率,转染后48 h进行RT-PCR检测,转染后72 h进行Western blot实验。
取对数生长期的MKP-1组、对照组、空白组脑胶质瘤干细胞,以5 000/孔的密度接种于96孔板,每组6个复孔,同时设无细胞的空白对照组,以梯度浓度的HDACi MS-275处理,药物终浓度依次为1.0 nmol/mL、2.0 nmol/mL、5.0 nmol/mL、10.0 nmol/mL、20.0 nmol/mL、40.0 nmol/mL、80.0 nmol/mL、160.0 nmol/mL。48 h后,每孔加入5μg/mL MTT溶液20μL,孵育4 h后弃上清液,加入DMSO 200μL/孔,振荡10 min,酶标仪读取吸光度A490值,计算HDACi MS-275的IC50值。实验重复3次。
取对数生长期的MKP-1组、对照组、空白组脑胶质瘤干细胞,制成细胞悬液并计数,以4 000/孔的密度接种于96孔板。将培养板置于37℃、5% CO2培养箱培养24 h。24 h后每孔加入CCK-8溶液10μL,继续孵育1~4 h。采用酶标仪检测各孔450 nm波长处的吸光度(A)值。根据吸光度值计算3组细胞增殖能力,实验重复3次。在检测HDACi对细胞增殖影响的实验中分为HDACi组和对照组,HDACi组中各孔加入含1/2 IC50HDACi MS-275培养液100μL,对照组加入等体积培养液,其余步骤同上。
用Trizol法提取待测细胞总RNA后逆转录为cDNA,进行RT-PCR。PCR体系(20μL):待测cDNA 2μL,上游引物、下游引物各0.8μL,ROX 0.4μL,TB Green Premix Ex TaqⅡ10μL,ddH2O 6μL;反应条件:95℃30 s,95℃5 s、60℃34 s 40个循环。以ABI 7500实时定量PCR系统进行实验,引物序列见表1。收集荧光信号,并建立PCR产物的熔解曲线,以2-△△Ct法分析,进行半定量比较。以GAPDH为内参。实验重复3次。
表1 PCR引物序列Tab.1 PCR primer sequence
提取各组细胞总蛋白,以BCA试剂盒测定蛋白浓度。将各组蛋白与Loading buffer充分混合后于100℃煮沸5 min变性,每孔50μL并加入SDS-PAGE凝胶上样孔进行电泳和转膜,5%脱脂奶粉封闭。加入按使用说明稀释后的待测一抗(目的蛋白SOX2、SOX9、p38、JNK,稀释比例均为1∶1 000,ERK1/2稀释比例为1∶2 000),4℃孵育过夜。TBST清洗后加入辣根过氧化物酶标记的羊抗鼠IgG(稀释比例1∶5 000)。37℃孵育1 h,TBST清洗后以ECL发光液显影,采用自动凝胶成像系统采集图像,以GAPDH为内参,分析各蛋白表达水平。
采用SPSS 20.0统计软件分析数据。计量资料用均数±标准差(±s)表示,两组间比较采用独立样本t检验,多组间比较采用单因素方差分析,若组间差异有统计学意义,进一步的两两比较采用Bonferroni检验。以双侧P<0.05为差异有统计学意义。
RT-PCR实验显示,脑胶质瘤组织中MKP-1的表达水平较对照健康脑组织明显降低,差异有统计学意义(0.31±0.06 vs 1.00±0.10,P<0.001),见图1。
图1 MKP-1在脑胶质瘤组织及健康脑组织中的表达Fig.1 Expression of MKP-1 in glioma tissues and healthy brain tissues
以MKP-1过表达质粒转染脑胶质瘤干细胞后,RT-PCR实验结果显示,MKP-1组中MKP-1表达较对照组和空白组明显升高(2.46±0.43 vs 0.99±0.10 &1.01±0.10,P<0.001),对照组和空白组MKP-1表达量差异无统计学意义(0.99±0.10 vs 1.01±0.10,P=0.990),见图2A。CCK-8实验结果显示,MKP-1组胶质瘤干细胞增殖能力较对照组和空白组明显降低,差异有统计学意义(0.64±0.06 vs 1.01±0.10 & 0.99±0.11,P<0.001),见图2B。
图2 转染后脑胶质瘤干细胞中MKP-1的表达及细胞增殖能力Fig.2 Expression of MKP-1 in GSC and cell proliferation ability after transfection
MTT实验结果显示,HDACi MS-275处理脑胶质瘤干细胞的IC50为(55.12±7.31)nmol/mL。HDACi处理后,CCK-8实验显示,HDACi组脑胶质瘤干细胞的增殖能力较对照组明显降低(0.63±0.05 vs 1.01±0.10,P<0.001),见图3A。RT-PCR结果显示,HDACi组MKP-1表达较对照组明显增加(2.01±0.23 vs 0.99±0.08,P<0.001),见图3B。HDACi MS-275处理过表达MKP-1胶质瘤干细胞的IC50明显较空白组和对照组降低[(33.12±6.12)nmol/mL vs 53.13±5.36)nmol/mL &(55.12±7.31)nmol/mL,P<0.001],见图3C。
图3 MKP-1对HDACi作用脑胶质瘤干细胞的影响Fig.3 Effect of MKP-1 on glioma stem cells treated by HDACi
RT-PCR及Western blot实验结果显示,MKP-1组脑胶质瘤干细胞中干细胞相关因子SOX2、SOX9 mRNA和蛋白表达较对照组和空白组明显降低(0.61±0.05 vs 1.01±0.11 & 0.99±0.09,P<0.05;0.53±0.09 vs 0.98±0.09 &1.01±0.11,P<0.005),见图4。
图4 MKP-1过表达对脑胶质瘤干细胞中SOX2和SOX9表达的影响Fig.4 Effect of MKP-1 overexpression on SOX2 and SOX9 in glioma stem cells
Western blot实验结果显示,MKP-1组脑胶质瘤干细胞中JNK和p38的表达较对照组和空白组明显降低(P<0.001),而ERK1/2在3组中的表达差异无统计学意义(P>0.05),见图5。
图5 MKP-1过表达对脑胶质瘤干细胞中p38、JNK和ERK1/2表达的影响Fig.5 Effect of MKP-1 overexpression on p38,JNK and ERK1/2 in glioma stem cells
MKP-1在各种肿瘤细胞中普遍表达,其转录随着生长因子、氧化应激、细胞因子、缺氧以及DNA损伤而迅速增加[10]。目前研究认为MKP-1与肿瘤发生有关,但在各类肿瘤中的作用不一。有研究报道MKP-1过表达可促进前列腺癌、胰腺癌、结肠癌、膀胱癌、胃癌、乳腺癌和肺癌发生[11-14]。MKP-1通过诱导上皮间充质转换和蛋白酶C途径可促进乳腺癌进展,还可调控ERK活性而影响肝细胞癌进展[15]。其中在肝细胞癌和头颈部肿瘤的发生中MKP-1主要发挥抑制作用[16]。本研究亦发现脑胶质瘤组织中MKP-1表达明显较健康脑组织降低,说明MKP-1与胶质瘤发生有关。
HDACi是一组表观遗传分子,其中Bellinostat已获FDA批准用于治疗皮肤T细胞淋巴瘤。HDACi在胶质瘤,特别是胶质母细胞瘤的临床前和临床试验中展现出良好的应用前景[17-18]。本研究采用HDACi MS-275作用胶质瘤干细胞后其增殖能力明显降低,且MKP-1表达明显上调,在构建的MKP-1过表达胶质瘤干细胞中发现HDACi的杀伤效果在MKP-1过表达的胶质瘤干细胞中更明显。GIL-ARAUJO等[15]采用HDACi SAHA处理脑胶质瘤细胞时,亦发现MKP-1表达升高2~15倍。提示MKP-1有望成为监测脑胶质瘤对HDACi敏感性的生物标志物。
MKP-1具有核定位,其主要底物是氨基末端激酶(c-Jun N-terminal kinase,JNK)、p38和细胞外信号调节激酶1/2(extracellular signal regulated kinase 1/2,ERK1/2),但对这些底物的偏好取决于组织或特定细胞类型[5-6]。MKP-1可使p38和JNK通路激酶去磷酸化而失活。本研究发现MKP-1在GSC中过表达可降低其增殖能力,抑制肿瘤干细胞相关因子SOX2、SOX9的表达,从而导致GSC的自我更新能力降低,这可能是MKP-1过表达抑制胶质瘤发生和发展的机制之一。MKP-1的活性与GSC维持呈负相关,MKP-1可能调节GSC增殖、自我更新和分化之间的相互作用,除SOX因子外,这些活动极可能由JNK激酶介导。本研究进一步检测过表达MKP-1 GSC中p38和JNK的表达情况,发现高水平的MKP-1可下调p38和JNK表达。JNK活性增加是GSC诱导肿瘤启动的动力,同样JNK途径的激活可使GSC维持在未成熟阶段并促进放射治疗抗性[19-21]。因此HDACi的杀伤效果在MKP-1过表达的GSC中更明显可能通过下调p38和JNK表达实现。
本研究发现,HDACi MS-275对GSC细胞亚群具有确切的杀伤效果,MKP-1过表达时HDACi杀伤作用更明显,这可能通过降低干细胞标志物SOX2、SOX9表达,减少GSC的自我更新实现。此外,MKP-1还可降低GSC中p38和JNK的活化,这可能是其抑制GSC维持和诱导肿瘤启动能力的机制之一。后续将进一步通过动物实验分析HDACi及MKP-1表达对GSC成瘤能力的影响,探索HDACi杀伤脑胶质瘤干细胞的分子机制及MKP-1在其中的作用。