Rad51基因在癌症中的研究进展

2019-01-05 08:47朱琳
中国医药生物技术 2019年2期
关键词:结肠癌抑制剂乳腺癌

朱琳



Rad51基因在癌症中的研究进展

朱琳

430063 湖北,武汉市武昌医院药学部,Email:zhul_1024@ sina.cn

癌症是世界范围内的公共卫生健康问题,位居死亡原因第二位。预计 2019 年美国癌症新发病例 1 762 450 例,死亡病例 606 880 例[1]。当电离辐射、缺氧、化疗药物等因素刺激细胞时可造成 DNA 损伤,其中以 DNA 双链断裂(double strand breaks,DSBs)最为严重,其修复方式包括非同源末端连接(non-homologous end joining,NHEJ)和同源重组(homologous recombination,HR),HR 有效性和准确性较高,对维持基因组的稳定和正常的生命功能起着重要的作用[2-3]。Rad51 是 HR 的中心分子,参与 DNA 损伤应答和细胞周期等信号通路,并在乳腺癌、肺癌、卵巢癌、胰腺癌和结直肠癌等恶性肿瘤中过表达[4],与肿瘤细胞的侵袭转移和化疗抵抗密切相关。本文主要介绍了 Rad51 的结构、功能以及它在多种恶性肿瘤中的研究进展。

1 Rad51 的结构

Rad51 基因定位于第 15 号染色体,具有 9 个外显子和 8 个内含子,编码一条由 339 个氨基酸组成的多肽。DNA 分子大小约 30 kb,具有 DNA 依赖性 ATP 激酶活性[5-6]。它是 DNA 同源重组的主要关键酶之一,对维持基因组稳定具有极其重要的作用。XRCC2、XRCC3、Rad51B(Rad51L1)、Rad51C(Rad51L2)和 Rad51D(Rad51L3)均为 Rad51 的同系物,与 Rad51 共同参与 HR 修复过程[7]。

2 Rad51 的功能

2.1 Rad51 与肿瘤侵袭转移的关系

尽管癌症治疗有了新的进展,但是转移依旧是肿瘤复发的主要原因之一。Woditschka 等[8]比较了 23 对人乳腺癌原发灶和脑转移组织的基因表达谱芯片,发现与 DNA 损伤修复相关的基因在脑转移组织中高表达,包括BARD1 和 Rad51。于 MDA-MB-231 脑转移动物模型中心内注射外源因子 BARD1 或 Rad51,发现脑转移增加了 3 ~ 4倍;相反,于 4T1 细胞中沉默 Rad51,脑转移减少了 2.5 倍,说明 Rad51 表达水平与乳腺癌细胞发生脑转移呈正相关。Wiegmans 等[9]采用免疫组化分析 235 例散发性乳腺癌组织,发现 17.8% 患者细胞核中 Rad51 高表达。沉默 Rad51 基因后,c/EBP β 转录活性降低近 80%,且 MMP11、MMP13、TGFβ 和 SMAD2 启动子处 c/EBP β 富集减少,乳腺癌细胞转移减少,小鼠肿瘤生长受抑,提示 Rad51 可能与 c/EBP β 作为共复合物发挥促乳腺癌细胞转移作用。

2.2 Rad51 与肿瘤化疗抵抗的关系

化疗药物可致肿瘤细胞 DNA 双链断裂,若 HR 修复过于活跃,将导致肿瘤细胞对化疗耐受;反之,将对化疗增敏。Liu 等[10]分别比较了 TCGA 数据库中 468 例样本和 Bagnoli 数据库中 130 例样本,发现上皮卵巢癌患者 miR-506 高表达,且该群患者具有更优的无进展生存期和总存活例数。使用纳米粒携载miR-506 作用于原位卵巢癌小鼠,发现 miR-506 通过与 Rad51 mRNA 的 3' 端结合降低 Rad51 表达,使肿瘤组织对顺铂和奥拉帕尼增敏。Huang 和 Mazin[11]也发现 Rad51 特异性小分子抑制剂可通过减少 Rad51 表达和 DNA 链间交换,提高顺铂治疗乳腺癌的效果。虾青素具有广泛的药理作用,如抗炎[12]、抗氧化[13]、抗肿瘤[14]以及增强机体免疫活性等[15]。Ko 等[16]将其作用于非小细胞肺癌(non-small-cell lung cancer,NSCLC),发现 Rad51 和 p-AKT 表达降低,细胞存活率和增殖能力减弱;相反,若持续活化 AKT,该下调作用可被逆转。联合应用 P13K 抑制剂或 Rad51 siRNA 可进一步增强虾青素对 NSCLC 的细胞毒性和增殖抑制作用。此外,吉西他滨(gemcitabine,GEM)作为抗嘧啶代谢的化疗药物,临床中也常被用于治疗 NSCLC。Tsai 等[17]发现 NSCLC 经 GEM 处理后,磷酸化丝裂原活化蛋白激酶激酶(mitogen-activated protein kinase kinase,MKK)、胞外信号调节激酶(extracellular signal-regulated kinase,ERK)、AKT、Rad51 mRNA 及蛋白表达水平升高。当分别采用 MKK1/2 和磷脂酰肌醇 3-激酶抑制剂后,吉西他滨诱导的 Rad51 上调被抑制,阻断 ERK1/2 通路、降低 AKT 活性或沉默 Rad51 后,NSCLC 对 GEM 增敏,细胞凋亡增多。以上结果均说明降低 Rad51 表达,可使肿瘤细胞对化疗药物增敏,提高顺铂、奥拉帕尼、虾青素和 GEM 的治疗效果。

合成致死是 1922 年在果蝇中首次观察到的一种遗传现象,是指两个致死基因中任何一个突变不能导致细胞死亡,而当两者同时突变时就会致死[18]。聚腺苷酸二磷酸核糖聚合酶[poly(ADP-ribose)poly-merase,PARP]是一种单链 DNA 修复酶,辐射和致 DNA 损伤药物诱导 PARP 活化,增强 DNA 修复能力,产生原发或继发性耐药[19]。Zhao等[20]研究发现 PTEN 可促进 DNA 修复和 Rad51 表达,若将 Rad51 抑制剂和 PARP 抑制剂同时作用于 PTEN 缺陷型三阴性乳腺癌细胞,发现 Rad51 下调并且该细胞对PARP 抑制剂增敏。尽管 MTT 结果没有表现出显著的差异,但是 Rad51 抑制剂和 PARP 抑制剂合成致死的潜能也为野生型 PTEN 乳腺癌患者的个体化治疗提供了新的思路。此外,另一项研究[21]发现 GEO 数据库中乳腺癌组织 CtIP mRNA 水平显著低于正常乳腺组织,且 CtIP 低表达和 p53 突变、淋巴结转移、PR 期显著相关。当放疗引起 DNA 双链损伤后,若沉默 CtIP,则 Rad51 焦点形成减少,HR 修复能力降低,肿瘤细胞对 PARP 抑制剂增敏,肿瘤生长受抑。miRNA 是一类内源性非编码 RNA,参与肿瘤细胞增殖、凋亡、转移和血管生成等一系列重要过程[22]。Wang 等[23]研究发现,在骨肉瘤、子宫颈癌和 BRCA2 野生型卵巢癌细胞中,miR-96 通过直接靶向 Rad51 编码区发挥负调控作用,减少 HR 有效修复,使多种肿瘤细胞对顺铂和 PARP 抑制剂敏感性提高。

2.3 Rad51 与肿瘤放疗敏感性的关系

放疗(ionizing radiation,IR)是直接造成 DNA 双链损伤或通过产生活性氧(reactive oxygen species,ROS)导致 DNA 双链断裂,从而杀灭肿瘤细胞的方法[24]。小檗碱是黄连和其他中药的主要生物碱成分,在多种恶性肿瘤中具有抗癌作用。Liu 等[25]将食管鳞状上皮肿瘤细胞经小檗碱预处理,发现 Rad51 表达水平显著降低,且经 X 射线照射后,肿瘤细胞对放疗敏感性提高,而正常组织无变化。转染 Rad51 siRNA 联合放疗,得到相同结果;而外源性引入 Rad51则结果相反,说明黄连主要是通过调控 Rad51 发挥放疗增敏的作用。Gasparini 等[26]发现 TCGA 数据库中乳腺癌患者 Rad51 高表达,并且三阴性乳腺癌患者miR-155 与 Rad51 显著负相关。当在乳腺癌细胞中稳定地过表达 miR-155 后,Rad51 表达水平降低,HR 修复减少,细胞对放疗增敏,增殖能力减弱。

3 Rad51 在不同肿瘤中的表达

3.1 Rad51 与乳腺癌

Alshareeda 等[27]采用免疫组化技术研究发现,Rad51 定位于乳腺癌细胞核和细胞质。与雌激素受体阴性和 BRCA1 受体阴性乳腺癌细胞相比,雌激素受体阳性和 BRCA1 受体阳性的乳腺癌细胞核中 Rad51 表达水平更高。Rad51 在细胞质中的表达和病理特征呈正相关,细胞核内表达和病理特征呈负相关,同时具有胞质高表达和胞核低表达的乳腺癌亚型预后最差,表现为肿瘤体积较大、高等级核多形性有丝分裂比例较高、生存期较短。

3.2 Rad51 与结肠直肠癌

结肠直肠癌是常见的消化道恶性肿瘤。Tennstedt 等[28]研究 1213 例结肠癌组织微阵列发现 46% 患者结肠癌组织中表达 Rad51,且高中低表达分别占 1%、11% 和 34%。与 Rad51 中低表达患者相比,高表达患者中位生存期较短,并且 Rad51 与其他肿瘤预后因素如 p21、MSH、MLH、β-catenin 和 EGFR 显著相关,提示 Rad51 高表达可能与结肠癌恶性进展相关,可作为结肠癌患者预后评估的独立风险因子。Kara 等[29]提取 54 例结肠癌样本和 42 例结肠组织样本总 RNA,进行高通量实时荧光定量 PCR 检测,研究结肠癌中致癌基因和 miRNA 的表达情况。发现与结肠组织相比,结肠癌组织中 ADAMTS1、Rad51、RUNX1、RUNX2、RUNX3、SIRT1 和 WWOX 表达上调,并且 Rad51 上游因子 miR-155-5p、miR-193b-3p和 miR-96-5p 表达也上调。该研究提供了新的结肠癌相关基因以及 miRNA,为结肠癌靶向治疗提供了新的思路。微型染色体维持蛋白(minichromosome maintenance proteins,MCM)复合体是真核细胞 DNA 复制的核心组成部分,在激发 DNA 复制和合成中发挥关键作用。Huang 等[30]采用质谱分析发现沉默 MCM2 或 MCM6 能够减少 Rad51 染色质定位和焦点形成,影响 Rad51 在结肠癌中的定位和表达,干扰 DNA 损伤修复,阻碍恶性肿瘤发生发展。

3.3 Rad51 与肺癌

Qiao 等[31]采用组织芯片技术分析 383 例 NSCLC 组织样本,收集临床和组织病理学信息如年龄、性别、TNM 分期、肿瘤分级等,研究 NSCLC 中 Rad51 表达情况,评价 Rad51 作为预后指标的价值。结果发现,29.4% 患者 Rad51 蛋白定位于细胞核并且高表达,同时高表达患者的中位生存期和 5 年生存率显著降低,其原因可能与化疗耐受有关,并且确定肺癌独立的预后指标有 Rad51、肿瘤分化和临床分期等,该实验为个体化治疗提供了理论依据。

3.4 Rad51 与头颈部鳞癌

Connell 等[32]研究发现 Rad51 定位于人头颈癌(head and neck cancer,HNC)细胞核,并伴随着 PCNA 蛋白表达的升高而升高,且 Rad51 高表达患者较低表达患者存活率更低,其相关机制有待进一步研究。

3.5 Rad51 与软组织肉瘤

Hannay 等[33]采用组织化学分析技术检测 62 例人原发性、复发性、转移性软组织肉瘤(soft tissue sarcoma,STS)中 Rad51 的表达情况,发现仅 3 例无 Rad51 表达,其余细胞核、核周以及细胞质中均有表达。当 STS 中外源性引入野生型 p53 后,Rad51 启动子活性减弱,mRNA 和蛋白表达水平降低,STS对阿霉素增敏。同时发现在 p53 存在下,激活蛋白 2(activator protein 2,AP2)可结合到 Rad51 启动子区域。提示 p53 和 AP2 可通过调控 Rad51 表达影响 STS 化疗的效果,影响 STS 发展进程。

3.6 Rad51 与宫颈癌

Chen 等[34]采用免疫组织化学技术研究宫颈癌(cervical carcinoma,CC)和宫颈组织中 Rad51 表达情况。发现宫颈组织中 Rad51 阳性染色率占 13.95%,CC 组织中 Rad51 阳性染色率占 73.44%。与普通宫颈细胞相比,HeLa 细胞和 Siha 细胞中 Rad51 蛋白表达水平上调。Chen 等进一步研究 Rad51 抑制剂对 CC 细胞增殖的影响,结果发现与对照组相比,抑制剂组细胞生长和细胞活力显著降低。同时在体外移植瘤实验中,抑制剂组肿瘤生长显著受抑。该机制与 Rad51 抑制剂阻碍细胞 G0/G1期向 S 期转变,下调cyclin D1 和上调 p21 抑制肿瘤增殖有关。说明,Rad51 作为 CC 致癌基因,将是一个新的潜在的治疗靶点。

4 问题与展望

电离辐射、缺氧和化疗药物等均可致 DNA 损伤,其中 DSBs 最为严重。若 DSBs 不能修复将导致染色体断裂以及细胞死亡;若修复不当将导致基因组稳定性降低,表现为染色体重排或缺失,最终导致肿瘤的发生。DSBs 的修复方式主要有 HRR 和 NHEJ,其中 HRR 保真度高,对维持基因组的稳定发挥关键作用。研究发现Rad51 作为 HRR 的关键因子,在乳腺癌、结直肠癌、肺癌、头颈部鳞癌、软组织肉瘤和宫颈癌等恶性肿瘤中高表达,导致 DNA 损伤修复能力增强,引起肿瘤细胞对放化疗耐受、侵袭转移能力增强和抗肿瘤治疗疗效不佳。已有很多文献报道,特异性降低 Rad51 表达可使肿瘤细胞对放化疗增敏、减少肿瘤细胞侵袭转移,且 Rad51 抑制剂与 PARP 抑制剂联合治疗具有潜在的临床治疗价值。但是,Rad51 在各肿瘤中的信号通路和相关作用靶点尚未完全阐明。因此,需要进一步探索 Rad51 的作用方式,为Rad51 靶向治疗提供理论依据。

[1] Siegel RL, Miller KD, Jemal A. Cancer statistics, 2019. CA Cancer J Clin, 2019, 69(1):7-34.

[2] Kakarougkas A, Jeggo PA. DNA DSB repair pathway choice: an orchestrated handover mechanism. Br J Radiol, 2014, 87(1035): 20130685.

[3] Srivastava M, Raghavan SC. DNA double-strand break repair inhibitors as cancer therapeutics. Chem Biol, 2015, 22(1):17-29.

[4] Ward A, Khanna KK, Wiegmans AP. Targeting homologous recombination, new pre-clinical and clinical therapeutic combinations inhibiting RAD51. Cancer Treat Rev, 2015, 41(1):35-45.

[5] Shi J, Wang YJ, Wang N. Rad51 and the occurrence of breast cancer. J Med Res, 2010, 39(11):15-17. (in Chinese)

石静, 王雅杰, 王宁. Rad51与乳腺癌的发生. 医学研究杂志, 2010, 39(11):15-17.

[6] Feng SY, Du HZ, Huang Y, et al. Relationship between targeting RAD51 and cancer treatment. Prog Mod Biomed, 2017, 17(15): 2993-2995. (in Chinese)

冯书云, 杜鸿志, 黄悦, 等. 靶向RAD51与肿瘤治疗的研究进展. 现代生物医学进展, 2017, 17(15):2993-2995.

[7] Taylor MRG, Špírek M, Chaurasiya KR, et al. RAD51 paralogs remodel pre-synaptic RAD51 filaments to stimulate homologous recombination. Cell, 2015, 162(2):271-286.

[8] Woditschka S, Evans L, Duchnowska R, et al. DNA double-strand break repair genes and oxidative damage in brain metastasis of breast cancer. J Natl Cancer Inst, 2014, 106(7):dju145.

[9] Wiegmans AP, Al-Ejeh F, Chee N, et al. RAD51 supports triple negative breast cancer metastasis. Oncotarget, 2014, 5(10):3261-3272.

[10] Liu G, Yang D, Rupaimoole R, et al. Augmentation of response to chemotherapy by microRNA-506 through regulation of RAD51 in serous ovarian cancers. J Natl Cancer Inst, 2015, 107(7):djv108.

[11] Huang F, Mazin AV. A small molecule inhibitor of human RAD51 potentiates breast cancer cell killing by therapeutic agents in mouse xenografts. PLoS One, 2014, 9(6):e100993.

[12] Fassett RG, Coombes JS. Astaxanthin, oxidative stress, inflammation and cardiovascular disease. Future Cardiol, 2009, 5(4):333-342.

[13] Naguib YM. Antioxidant activities of astaxanthin and related carotenoids. J Agr Food Chem, 2000, 48(4):1150-1154.

[14] Maoka T, Yasui H, Ohmori A, et al. Anti-oxidative, anti-tumor-promoting, and anti-carcinogenic activities of adonirubin and adonixanthin. J Oleo Sci, 2013, 62(3):181-186.

[15] Park JS, Chyun JH, Kim YK, et al. Astaxanthin decreased oxidative stress and inflammation and enhanced immune response in humans. Nutr Metab, 2010, 7:18.

[16] Ko JC, Chen JC, Wang TJ, et al. Astaxanthin down-regulates Rad51 expression via inactivation of AKT kinase to enhance mitomycin C-induced cytotoxicity in human non-small cell lung cancer cells. Biochem Pharmacol, 2016, 105:91-100.

[17] Tsai MS, Kuo YH, Chiu YF, et al. Down-regulation of RAD51 expression overcomes drug resistance to gemcitabine in human non-small-cell lung cancer cells. J Pharmacol Exp Ther, 2010, 335(3): 830-840.

[18] Lord CJ, Tutt AN, Ashworth A. Synthetic lethality and cancer therapy: lessons learned from the development of PARP inhibitors. Annu Rev Med, 2015, 66:455-470.

[19] Lee SB, Segura-Bayona S, Villamor-Payà M, et al. Tousled-like kinases stabilize replication forks and show synthetic lethality with checkpoint and PARP inhibitors. Sci Adv, 2018, 4(8):eaat4985.

[20] Zhao Q, Guan J, Zhang Z, et al. Inhibition of RAD51 sensitizes breast cancer cells with wild-type PTEN to olaparib. Biomed Pharmacother, 2017, 94:165-168.

[21] Wang J, Ding Q, Fujimori H, et al. Loss of CtIP disturbs homologous recombination repair and sensitizes breast cancer cells to PARP inhibitors. Oncotarget, 2016, 7(7):7701-7714.

[22] Di Leva G, Garofalo M, Croce CM. MicroRNAs in cancer. Annu Rev Pathol, 2014, 9:287-314.

[23] Wang Y, Huang JW, Calses P, et al. MiR-96 downregulates REV1 and RAD51 to promote cellular sensitivity to cisplatin and PARP inhibition. Cancer Res, 2012, 72(16):4037-4046.

[24] Czochor JR, Glazer PM. microRNAs in cancer cell response to ionizing radiation. Antioxid Redox Sign, 2014, 21(2):293-312.

[25] Liu Q, Jiang H, Liu Z, et al. Berberine radiosensitizes human esophageal cancer cells by downregulating homologous recombination repair protein RAD51. PLoS One, 2011, 6(8):e23427.

[26] Gasparini P, Lovat F, Fassan M, et al. Protective role of miR-155 in breast cancer through RAD51 targeting impairs homologous recombination after irradiation. Proc Natl Acad Sci U S A, 2014, 111(12):4536-4541.

[27] Alshareeda AT, Negm OH, Aleskandarany MA, et al. Clinical and biological significance of RAD51 expression in breast cancer: a key DNA damage response protein. Breast Cancer Res Treat, 2016, 159(1):41-53.

[28] Tennstedt P, Fresow R, Simon R, et al. RAD51 overexpression is a negative prognostic marker for colorectal adenocarcinoma. Int J Cancer, 2013, 132(9):2118-2126.

[29] Kara M, Yumrutas O, Ozcan O, et al. Differential expressions of cancer-associated genes and their regulatory miRNAs in colorectal carcinoma. Gene, 2015, 567(1):81-86.

[30] Huang J, Luo HL, Pan H, et al. Interaction between RAD51 and MCM complex is essential for RAD51 foci forming in colon cancer HCT116 cells. Biochemistry (Mosc), 2018, 83(1):69-75.

[31] Qiao GB, Wu YL, Yang XN, et al. High-level expression of RAD51 is an independent prognostic marker of survival in non-small-cell lung cancer patients. Br J Cancer, 2005, 93(1):137-143.

[32] Connell PP, Jayathilaka K, Haraf DJ, et al. Pilot study examining tumor expression of RAD51 and clinical outcomes in human head cancers. Int J Oncol, 2006, 28(5):1113-1119.

[33] Hannay JA, Liu J, Zhu QS, et al. RAD51 overexpression contributes to chemoresistance in human soft tissue sarcoma cells: a role for p53/activator protein 2 transcriptional regulation. Mol Cancer Ther, 2007, 6(5):1650-1660.

[34] Chen Q, Cai D, Li M, et al. The homologous recombination protein RAD51 is a promising therapeutic target for cervical carcinoma. Oncol Rep, 2017, 38(2):767-774.

2018-12-26

10.3969/j.issn.1673-713X.2019.02.014

猜你喜欢
结肠癌抑制剂乳腺癌
绝经了,是否就离乳腺癌越来越远呢?
免疫检查点抑制剂相关内分泌代谢疾病
SGLT2抑制剂对血尿酸影响的研究进展
探讨腹腔镜手术在横结肠癌治疗中的临床应用效果
乳腺癌是吃出来的吗
胸大更容易得乳腺癌吗
别逗了,乳腺癌可不分男女老少!
结肠内支架联合腹腔镜结肠癌根治术在结肠癌合并急性梗阻中的短期及中期疗效分析
腹腔镜下横结肠癌全结肠系膜切除术的临床应用
选择性Bcl-2抑制剂ABT-199对乳腺癌细胞MDA-MB-231的放疗增敏作用