p38 MAPK信号通路在尼古丁诱导的血管内皮细胞自噬中的作用

2018-12-12 10:49王瑞玲刘雯霞刘彩红郭蕊王亚静
中国医学创新 2018年26期
关键词:自噬尼古丁心血管疾病

王瑞玲 刘雯霞 刘彩红 郭蕊 王亚静

【摘要】 目的:探讨丝裂原活化蛋白激酶(MAPK)通路在尼古丁诱导人脐静脉内皮细胞(HUVECs)自噬中的作用。方法:不同浓度尼古丁(6×10-9、6×10-8、6×10-7、6×10-6 mol/L)处理HUVECs,采用CCK-8和LDH试剂盒检测尼古丁对血管内皮细胞增殖和活性的影响,运用蛋白免疫印迹(Western blot)技术检测尼古丁作用下Beclin-1和LC3Ⅱ的表达及ERK1/2、JNK、p38 MAPK的磷酸化水平。

结果:与正常对照组相比,较高浓度尼古丁(≥6×10-7 mol/L)抑制HUVECs的增殖能力(P<0.01),增加上清中LDH的活性(P<0.05),且在尼古丁浓度为6×10-6 mol/L时作用最明显。与正常对照组相比,尼古丁(6×10-6 mol/L)作用下LC3Ⅱ表達显著增加(P<0.01),而Beclin-1的表达减少(P<0.05);同时尼古丁磷酸化MAPK信号,其中ERK1/2和p38 MAPK的磷酸化水平分别增加了0.77倍和2.91倍(P<0.01),而JNK的磷酸化水平没有明显变化。与尼古丁组相比,SB+尼古丁组中LC3Ⅱ与Beclin-1蛋白表达均增加(P<0.05)。结论:尼古丁可导致人脐静脉内皮细胞损伤并抑制细胞自噬,此过程中p38 MAPK信号通路可能起了重要作用。

【关键词】 人脐静脉内皮细胞; 尼古丁; 自噬; 心血管疾病; MAPK

The Role of p38 MAPK Signaling Pathway in Nicotine-induced Vascular Endothelial Cells Autophagy/WANG Ruiling,LIU Wenxia,LIU Caihong,et al.//Medical Innovation of China,2018,15(26):0-045

【Abstract】 Objective:To investigate the differential role of mitogen-activated protein kinase(MAPK) pathway signaling in nicotine-induced vascular endothelial cells autophagy.Method:HUVECs were treated with different doses of nicotine(6×10-9,6×10-8,6×10-7,6×10-6 mol/L) .The effect of nicotine on the proliferation and activity of vascular endothelial cells was detected by CCK-8 and LDH kit.The protein expression level of Beclin-1 and LC3Ⅱand the phosphorylation of ERK1/2、p38 and JNK induced by nicotine were detected by Western blot.Result:Compared to the control group,the results indicated that higher doses of nicotine(≥6×10-7 mol/L) inhibited the ability of cell proliferation(P<0.01),and increased the activity of supernatant LDH (P<0.05),especially the 6×10-6 mol/L of nicotine had obvious effects.Compared with normal control group,nicotine(6×10-6 mol/L) significantly increased the LC3Ⅱ protein expression(P<0.01),while decreased the protein expression of Beclin-1(P<0.05).Meanwhile,nicotine contributed to the phosphorylation of MAPK,among them,the phosphorylation of ERK1/2 and p38 MAPK increased by 0.77-fold and 2.91-fold(P<0.01),while the phosphorylation of JNK had no change.Compared to nicotine group, the LC3Ⅱand Beclin-1 protein expression of SB+nicotine group all increased(P<0.05).Conclusion:Nicotine can damage human umbilical vein endothelial cells and inhibit autophagy,and p38 MAPK signaling pathway may play an important role in this process.

【Key words】 HUVECs; Nicotine; Autophagy; Cardiovascular disease; MAPK

First-authors address:Shanxi Medical University,Taiyuan 030001,China

doi:10.3969/j.issn.1674-4985.2018.26.010

心血管疾病死亡率居全球之首,而吸烟与心血管疾病有密切联系[1]。香烟的主要成分尼古丁,可以影响血管内皮细胞的增殖、迁移、炎症、血管再生及凋亡,从而引起血管内皮功能紊乱[2]。但是,尼古丁引起血管内皮功能紊乱的确切机制还有待进一步研究。自噬是真核生物中进化保守,降解多余、衰老或受损胞内物质的过程[3]。正常情况下很少发生自噬,但当缺血缺氧、代谢压力、蛋白质折叠错误等情况下可诱发自噬[4-6]。此外,自噬生成或降解受阻时可导致细胞功能异常甚至受损及死亡[7]。丝裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinase,MAPK)是信号从细胞表面传递到细胞内的重要传递者,目前有大量研究认为MAPK信号家族在自噬各阶段有重要作用[8-11]。据此,本实验旨在研究尼古丁对血管内皮细胞活性和自噬的影响,探讨该过程中MAPK信号家族所起的重要作用,现报道如下。

1 材料与方法

1.1 材料 人脐静脉内皮细胞(HUVECs)(中乔新舟,上海);DMEM低糖培养基、0.25%胰蛋白酶、PBS缓冲液、青链霉素、Cell Counting Kit-8(CCK-8)细胞增殖及毒性检测试剂盒、β-actin抗体(博士德生物,武汉);胎牛血清(浙江天杭生物,杭州);乳酸酶脱氢酶(LDH)测定试剂盒(南京建成生物,南京);尼古丁(Sigma,美国);BCA蛋白浓度测定试剂盒(上海碧云天生物,上海);LC3B(Sigma,美国);Beclin-1、p-ERK1/2、p-p38、p-JNK、ERK1/2、p38、JNK抗体(CST,美国),辣根过氧化物酶标记二抗(中杉金桥生物,北京);ECL发光液(爱必信生物,上海)。

1.2 方法

1.2.1 细胞培养与处理 用含10%胎牛血清的DMEM低糖培养基培养HUVECs,置于5%CO2、37 ℃

孵箱,待细胞融合至80%进行不同浓度尼古丁(6×10-9、6×10-8、6×10-7、6×10-6 mol/L)處理24 h,6×10-6 mol/L尼古丁处理1 h或6 h,其中正常对照组不做尼古丁处理。每组处理样本数为n=3,所有实验均独立重复3次。

1.2.2 CCK-8检测细胞增殖 将HUVECs接种于96孔板,密度为1×105/mL,待细胞贴壁后加入不同浓度的尼古丁。按照Cell Counting Kit-8检测试剂盒说明书进行操作,孵育完成后用酶标仪在450 nm处测定各孔OD值。

1.2.3 LDH试剂盒检测细胞活性 将HUVECs以1×106/mL密度接种于6孔板,待细胞融合至80%,用不同浓度尼古丁处理后分别收集培养上清及细胞。按照乳酸脱氢酶测定试剂盒说明书进行操作,之后用酶标仪在450 nm处测定各样本的OD值,并根据公式计算各组上清中LDH的活力。

1.2.4 Western blot检测蛋白表达 将对数生长期细胞接种于6孔板,融合至80%时分为两组:正常对照组和尼古丁组(6×10-6mol/L)(根据尼古丁对细胞增殖能力和活性影响,确定的实验尼古丁终浓度),分别给予不同处理后提取细胞总蛋白。提取细胞总蛋白具体方法:弃培养上清后置于冰上,预冷PBS冲洗3次,加入配置好的细胞裂解液,待细胞裂解后收集于离心管超声破碎及低温离心,离心完毕后抽取上清并用BCA法测定细胞总蛋白浓度,根据上样量制备蛋白样本。95 ℃,5 min蛋白变性,制备12%SDS-PAGE凝胶进行电泳分离蛋白质,电泳结束后用半干转方法将蛋白转印到PVDF膜上,5%脱脂奶粉室温封闭1 h。待封闭完成,TBST洗膜3次,每次5 min。将膜置于蛋白相对应的一抗稀释液(1︰1 000)孵育,4 ℃过夜。TBST洗膜

3次后,与一抗同源的二抗室温摇床孵育1 h。洗膜后即可用ECL发光液进行压片显影。

1.3 统计学处理 采用SPPP 18.0统计软件对所有数据进行分析处理,计量资料采用(x±s)表示。两组间比较使用t检验,多组间比较则采用单因素方差分析(one-Way ANOVA)。P<0.05为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 不同浓度尼古丁对HUVECs增殖能力的影响 不同浓度尼古丁处理HUVECs 24 h,尼古丁浓度≤6×10-8 mol/L时,细胞的增殖能力为(92.08±3.89)、(91.05±4.24),与正常对照组(99.00±0.87)比较,差异均无统计学意义(P=0.292、0.121);当尼古丁浓度≥6×10-7 mol/L

时,细胞的增殖能力减弱,分别为(65.35±6.68)、(61.26±1.98),与正常对照组比较,差异均有统计学意义(P=0.000 0、0.000 0),且呈尼古丁剂量抑制依赖性关系,见图1。

2.2 不同浓度尼古丁对HUVECs中LDH活力的影响 不同浓度尼古丁处理HUVECs 24 h,尼古丁浓度≤6×10-8 mol/L时,上清中LDH活力分别为(9.92±1.52)、(10.51±1.10),与正常对照组(8.82±0.83)相比,差异均无统计学意义(P=0.207、0.082);当尼古丁浓度≥6×10-7 mol/L时,上清中LDH活力呈尼古丁浓度依赖性增加,分别为(13.70±1.20)、(15.50±0.71),与正常对照组比较,差异均有统计学意义(P=0.000 0、0.000 0),见图2。

2.3 尼古丁抑制HUVECs自噬 浓度为6×10-6 mol/L的尼古丁干预细胞6 h,与正常对照组相比,尼古丁组LC3Ⅱ蛋白表达增加了1.41倍(1.33±0.12 vs 0.47±0.12,t=8.489,P=0.001),而此时Beclin-1蛋白表达却减少了0.73倍(0.19±0.06 vs 0.33±0.02,t=4.013,P=0.016),见图3。

2.4 尼古丁诱导MAPK磷酸化 与正常对照组相比,尼古丁处理1 h后MAPK信号家族成员中,ERK1/2、p38磷酸化水平均增加,差异均有统计学意义(P<0.01);而JNK的磷酸化水平并无明显变化。其中,尼古丁组ERK1/2磷酸化水平(1.63±0.08)与对照组(0.92±0.11)相比增加了0.77倍(t=8.828,P=0.0009);而尼古丁组p38 MAPK的磷酸化水平(2.42±0.16)与对照组(0.62±0.11)相比增加了2.91倍(t=17.96,P=0.000 1)。见图4。

2.5 p38 MAPK抑制自噬的生成 p38 MAPK抑制剂SB203580预处理HUVECs 30 min后给予尼古丁处理6 h。与尼古丁组LC3Ⅱ蛋白表达(1.33±0.12)相比,SB+尼古丁组LC3Ⅱ蛋白表达进一步增加(1.65±0.10)(P=0.014);与尼古丁组Beclin-1蛋白表达(0.11±0.03)相比,SB+尼古丁组的Beclin-1蛋白表达也进一步增加(0.27±0.01)(P=0.007)。见图5。

3 讨论

吸烟是心血管疾病发生发展的主要危险因素。香烟的主要成分尼古丁可以促进心血管疾病发生[12-14]。尼古丁通过多种机制增加炎症因子释放、黏附分子的表达,导致内皮细胞功能紊乱[15];此外尼古丁还可以通过激活肥大细胞促进动脉粥样硬化疾病的进展[16],但是确切机制还不清楚。本实验旨在通过离体实验用尼古丁干预正常HUVECs,证实尼古丁作用下HUVECs增殖能力减弱且细胞膜受损,同时细胞自噬的生成受到抑制,而在该过程中p38 MAPK信号具有重要作用。

心血管疾病是由吸烟、高血压等多种因素引起的一系列继发性缺血性改变,而尼古丁可通过紊乱内皮细胞功能从而促进心血管疾病的发展[17]。已有多项研究表明,尼古丁可促进内皮细胞增殖、存活及增加细胞自噬[18],而还有研究认为尼古丁对内皮细胞有毒性作用从而促进细胞死亡[19]。这些争议存在的原因可能是由于实验所用尼古丁浓度不同导致的。据此,本实验采用不同浓度的尼古丁(6×10-9、6×10-8、6×10-7、6×10-6 mol/L)处理HUVECs,检测尼古丁作用下细胞的增殖能力与损伤程度,以确定实验所用尼古丁终浓度。本研究发现,6×10-9、6×10-8 mol/L尼古丁浓度组内皮细胞的增殖能力和培养上清LDH活性与正常对照组相比,差异均无统计学意义(P>0.05);而尼古丁浓度为6×10-7、6×10-6 mol/L时两个指标都发生了明显变化,且呈尼古丁浓度依赖性。这提示较高浓度的尼古丁可抑制血管内皮细胞增殖,破坏细胞膜的完整性,促进细胞损伤。之前有报道发现尼古丁浓度低于

10-8 mol/L时可促进细胞增殖和存活,而高浓度尼古丁(>10-6 mol/L)则对内皮细胞有损伤和毒性作用[20],这与本实验研究结果相一致。因此,为了研究尼古丁对血管内皮细胞增殖抑制和损伤的机制,选用高浓度尼古丁(6×10-6 mol/L)做进一步研究。

自噬(大自噬)过程主要包括自噬的生成和降解两个阶段:即自噬小体的形成与自噬小體和溶酶体融合降解。Beclin-1是哺乳动物诱导自噬生成起始的基因,微管相关蛋白1轻链3(LC3Ⅱ)则是自噬小体标志物。本实验中,尼古丁作用下Beclin-1蛋白表达减少,提示尼古丁作用下血管内皮细胞自噬生成水平下降;而LC3Ⅱ表达增多,这与自噬生成减少相矛盾,提示尼古丁还可能影响自噬的降解过程。

丝裂原活化蛋白激酶(MAPK)主要分为3个亚族:ERK1/2、JNK、p38 MAPK通路是多种信号通路的中心,参与细胞生长、发育、分裂、凋亡等多种生理反应过程[21]。近年来越来越多的研究发现,MAPK信号家族在自噬的调控过程中有重要作用[8-11],比如不同细胞类型和细胞内环境条件下,p38 MAPK对自噬有促进或抑制作用[11,22]。本实验中,尼古丁作用下并没有发现JNK的磷酸化,而ERK1/2和p38 MAPK磷酸化增多,且p38 MAPK磷酸化水平增加更显著。使用p38 MAPK抑制剂SB203580后可逆转尼古丁作用下Beclin-1蛋白表达的减少,而此时LC3Ⅱ可能由于Beclin-1生成增多而增加。这提示MAPK家族成员p38 MAPK在尼古丁引起的自噬生成抑制环节中起重要作用,但是可能并不直接参与自噬的降解过程。此外,自噬的生成是否还与其他信号通路有关,以及自噬小体标志物LC3Ⅱ蛋白增多的原因还有待进一步探究。

综上所述,本实验初步研究了尼古丁对血管内皮细胞增殖、活性及自噬的影响,且探讨了MAPK在该过程中的作用,揭示了p38 MAPK在尼古丁引起的自噬生成抑制中有重要作用,而自噬生成抑制可能是细胞受损的原因之一。总之,本研究从机制方面为尼古丁引起的心血管疾病的治疗提供了新思路。

参考文献

[1] Jerry J M,Collins G B,Streem D.E-cigarettes:safe to recommend to patients?[J].Cleve Clin J Med,2015,82(8):521-526.

[2] Flammer A J,Anderson T,Celermajer D S,et al.The assessment of endothelial function:from research into clinical practice[J].Circulation,2012,126(6):753-767.

[3] Parzych K R,Klionsky D J.An overview of autophagy:morphology,mechanism,and regulation[J].Antioxid & Redox Signal,2014,20(3):460-473.

[4] Lavandero S,Chiong M,Rothermel B A,et al.Autophagy in cardiovascular biology[J].J Clin Invest,2015,125(1):55-64.

[5] Gottlieb R A,Mentzer R M.Autophagy:an affair of the heart[J].Heart Fail Rev,2013,18(5):575-584.

[6] Gatica D,Chiong M,Lavandero S,et al.Molecular mechanisms of autophagy in the cardiovascular system[J].Circ Res,2015,116(3):456-467.

[7] Loos B,Engelbrecht A M,Lockshin R A,et al.The variability of autophagy and cell death susceptibility:unanswered questions[J].Autophagy,2013,9(9):1270-1285.

[8] Zhou Y Y,Li Y,Jiang W Q,et al.MAPK/JNK signalling:a potential autophagy regulation pathway[J].Biosci Rep,2015,35(3):e00199.

[9] Kim J H,Hong S K,Wu P K,et al.Raf/MEK/ERK can regulate cellular levels of LC3B and SQSTM1/p62 at expression levels[J].Exp Cell Res,2014,327(2):340-352.

[10] Shi Y,He X,Zhu G,et al.Coxsackievirus A16 elicits incomplete autophagy involving the mTOR and ERK pathways[J].PLoS One,2015,10(4):e0122109.

[11] Zhong W,Zhu H,Sheng F,et al.Activation of the MAPK11/12/13/14 (p38 MAPK) pathway regulates the transcription of autophagy genes in response to oxidative stress induced by a novel copper complex in HeLa cells[J].Autophagy,2014,10(7):1285-1300.

[12] Rigotti N A,Clair C.Managing tobacco use:the neglected cardiovascular disease risk factor[J].Eur Heart J,2013,34(42):3259-3267.

[13] Sinha-Hikim I,Friedman T C,Falz M,et al.Nicotine plus a high-fat diet triggers cardiomyocyte apoptosis[J].Cell & Tissue Res,2017,368(1):159-170.

[14] Wu X,Zhang H,Qi W,et al.Nicotine promotes atherosclerosis via ROS-NLRP3-mediated endothelial cell pyroptosis[J].Cell Death & Dis,2018,9(2):171.

[15] Liu C,Zhou M S,Li Y,et al.Oral nicotine aggravates endothelial dysfunction and vascular inflammation in diet-induced obese rats:Role of macrophage TNFα[J].PLoS One,2017,12(12):e0188439.

[16] Wang C,Chen H,Zhu W,et al.Nicotine Accelerates Atherosclerosis in Apolipoprotein E-Deficient Mice by Activating α7 Nicotinic Acetylcholine Receptor on Mast Cells[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2017,37(1):53-65.

[17] Park K H,Park W J.Endothelial Dysfunction: Clinical Implications in Cardiovascular Disease and Therapeutic Approaches[J].J Korean Med Sci,2015,30(9):1213-25.

[18] Duerrschmidt N,Hagen A,Gaertner C,et al.Nicotine effects on human endothelial intercellular communication via α4β2 and α3β2 nicotinic acetylcholine receptor subtypes[J].Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol,2012,385(6):621-632.

[19] Lee Y H,Chen R S,Chang N C,et al.Synergistic Impact of Nicotine and Shear Stress Induces Cytoskeleton Collapse and Apoptosis in Endothelial Cells[J].Ann of Biomed Eng,2016,43(9):2220-2230.

[20] Liu C C,Yeh H.Nicotine:A Double-Edged Sword in Atherosclerotic Disease[J].Acta Cardiol Sin,2014,30(2):108-113.

[21] Lee Y,Kim Y J,Kim M H,et al.MAPK Cascades in Guard Cell Signal Transduction[J].Front Plant Sci,2016,7(154):80.

[22] Qin Y,Zhou Z W,Pan S T,et al.Graphene quantum dots induce apoptosis, autophagy, and inflammatory response via p38 mitogen-activated protein kinase and nuclear factor-κB mediated signaling pathways in activated THP-1 macrophages[J].Toxicology,2015,327:62-76.

(收稿日期:2018-03-26) (本文編辑:张爽)

猜你喜欢
自噬尼古丁心血管疾病
认清尼古丁的真面目
自噬在糖尿病肾病发病机制中的作用
亚精胺诱导自噬在衰老相关疾病中的作用
自噬在不同强度运动影响关节软骨细胞功能中的作用
欧洲飞机提供尼古丁代用品