溶氧对L-羟脯氨酸发酵的影响及其控制

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(1.天津科技大学生物工程学院，天津 300457；2.代谢控制发酵技术国家地方联合工程实验室，天津 300457；3.吉林大学 生物与农业工程学院，吉林 长春 130022)

羟脯氨酸是脯氨酸羟基化后的产物[1]，它有四种立体异构体，分别为顺式-3-羟脯氨酸、反式-3-羟脯氨酸、顺式-4-羟脯氨酸和反式-4-羟脯氨酸，其中反式-4-羟脯氨酸(文中均称为L-羟脯氨酸)在自然界中较为常见，并且被广泛应用于医药、化工、食品和美容等行业.L-羟脯氨酸可以用于合成消炎药、碳青霉烯类等化学药物的合成[2-3]；可以作为手性催化剂催化许多不对称反应[4]；还可以作为化妆品添加剂用来改善饮料风味.目前国内生产L-羟脯氨酸的主要方法是从胶原中提取，但生物提取法具有成本高、收率低和污染严重等弊端[5]；化学合成法同样具有成本高的缺点[6].随着代谢工程等技术的不断发展，以及微生物发酵法生产氨基酸所展现出来的优势[7-8]，使得发酵法成为一种最具前景的L-羟脯氨酸生产方法.

采用发酵法生产氨基酸时，溶氧是限制大肠杆菌高密度发酵的一个关键因素，不适宜的溶氧水平会对菌体代谢产生影响，从而影响目的产物的积累.L-羟脯氨酸发酵生产需要消耗大量的氧气[9]，过低的溶氧水平会限制L-羟脯氨酸的高效生产，同时会导致副产物乙酸的大量积累，对菌体生长和蛋白表达产生抑制作用.而过高的氧含量会加快细胞内部酶的氧化过程，造成菌体提前衰老，最终导致产量下降.因此，研究了不同溶氧水平对L-羟脯氨酸发酵的影响，并提出一种分阶段溶氧控制策略，对L-羟脯氨酸工业发酵生产具有重要意义.

1 材料与方法

1.1 菌 种

Escherichiacoli4HYP，由天津科技大学代谢工程研究室保藏.

1.2 培养基

1.2.1 斜面培养基

蛋白胨10 g/L，酵母粉5 g/L，KH2PO41 g/L，MgSO40.4 g/L，NaCl 10 g/L，琼脂20 g/L.

1.2.2 种子培养基

葡萄糖30 g/L，酵母粉6 g/L，柠檬酸0.5 g/L，(NH4)2SO41 g/L，KH2PO42 g/L，VB11 mg/L，VH0.3 mg/L.

1.2.3 发酵培养基

发酵培养基：葡萄糖10 g/L，(NH4)2SO41 g/L，酵母粉3 g/L，柠檬酸0.5 g/L，KH2PO44 g/L，MgSO4·7H2O 1.5 g/L，MnSO4·H2O 10 mg/L，FeSO4·7H2O 0.1 g/L，VB15 mg/L，VH0.2 mg/L.

1.3 培养方法

1.3.1 菌种活化

在无菌条件下，用接种环取2环菌种接种于斜面培养基上，恒温培养箱中37 ℃静置培养12 h后，将其接种于250 mL茄形瓶中，37 ℃培养12 h.

1.3.2 种子培养

在无菌条件下，用无菌水将活化好的菌种进行悬浮，再将其接种于5 L发酵罐中，自动控制温度为37 ℃，pH 7.0～7.2，通过调节搅拌转速和通风量控制溶氧在25%～30%，待菌体OD600大约达到15时，准备接入发酵培养基.

1.3.3 发酵培养

在30 L发酵罐中，以发酵培养基10%的接种量进行接种，接种后发酵液体积为14 L.控制培养温度为37 ℃，通过自动流加25%的氨水溶液控制pH为7.0～7.2，通过对搅拌转速、通风量和罐压的调节使溶氧保持在相应的水平，当培养基中底糖耗尽时，以一定的脉冲比自动流加80%的葡萄糖溶液，将发酵液中残糖浓度控制在1%左右.发酵过程中，每隔2 h取样、测样、记录数据.

1.4 分析方法

1.4.1 溶氧及pH的检测

溶氧是采用发酵罐连接的溶氧电极进行检测；pH是采用发酵罐连接的pH电极和精密pH试纸(6.4～8.0)进行检测[10].

1.4.2 菌体浓度的检测

见参考文献[11].

1.4.3 L-羟脯氨酸和乙酸含量的检测

见参考文献[12].

1.4.4 糖酸转化率的计算方法

糖酸转化率=

2 结果与分析

为了研究不同溶氧水平对L-羟脯氨酸发酵的影响，分别使发酵溶氧维持在10%～20%，20%～30%和30%～40%，对发酵过程中菌体生长情况、L-羟脯氨酸产量、糖酸转化率和副产物乙酸积累量进行考察，确定L-羟脯氨酸发酵的最佳供氧方式.

2.1 溶氧对菌体生长和L-羟脯氨酸产量的影响

在不同的溶氧水平下进行L-羟脯氨酸的发酵，发酵过程中菌体生长情况如图1所示，L-羟脯氨酸产量如图2所示.

图1 不同溶氧水平对菌体生长的影响Fig.1 Effect of different levels of dissolved oxygen on the growth of bacteria

图2 不同溶氧水平对L-羟脯氨酸质量浓度的影响Fig.2 Effect of different levels of dissolved oxygen on L-hydroxyproline production

溶氧对氨基酸发酵有很大影响，溶氧过高会抑制菌体生长，并加速菌体衰老，过低也会对菌体代谢产生影响[13].由图1和图2可知:采用不同的溶氧水平进行L-羟脯氨酸发酵时，发酵过程中菌体生长和产物积累情况差异明显.从菌体生长情况来看，当发酵过程中溶氧维持在10%～20%时，菌体OD600为115.1，随着溶氧提高到20%～30%，菌体OD600显著提高，达到了125.4，而将溶氧继续提高至30%～40%后，菌体OD600大幅下降，仅为96.4，与溶氧水平在20%～30%的OD600相比，降低了23.1%.从L-羟脯氨酸积累情况来看，10%～20%的溶氧水平难以满足菌体产酸需要，此时，L-羟脯氨酸质量浓度只有32.4 g/L；当发酵溶氧维持在30%～40%时，发酵前24 h，菌体表现出较高的产酸能力，但24 h之后，由于较高的溶氧使菌体早衰，导致产酸速率下降，发酵结束时，L-羟脯氨酸质量浓度为36.5 g/L；当采用20%～30%的溶氧进行发酵时，L-羟脯氨酸质量浓度最高，达到42.0 g/L，较10%～20%溶氧下的质量浓度提高了29.6%.

2.2 溶氧对糖酸转化率和乙酸积累量的影响

重组大肠杆菌发酵过程中，乙酸是主要的代谢副产物，它的积累会抑制菌体生长和重组蛋白的表达，而供氧不足是乙酸产生的一个主要原因[14].实验过程中，不同溶氧水平对糖酸转化率和乙酸质量浓度的影响如图3所示.

图3 不同溶氧水平对糖酸转化率和乙酸质量浓度的影响Fig.3 Effect of different levels of dissolved oxygen on the glucose conversion rate and accumulation of acetic acid

由图3可知：分别采用10%～20%，20%～30%和30%～40%的溶氧进行发酵时，当溶氧在20%～30%时，糖酸转化率最高，为19.8%，此条件下的乙酸质量浓度为2.8 g/L；当溶氧为10%～20%时，因溶氧无法满足菌体生长和产酸需要，糖酸转化率有所下降，与20%～30%溶氧条件下的糖酸转化率相比，下降了6.7%，并且此时较低的溶氧限制了菌体的呼吸，使得乙酸质量浓度达到5.4 g/L；当溶氧为30%～40%时，乙酸质量浓度最低，仅有1.4 g/L，但该溶氧条件下的糖酸转化率最低，为16.3%.因此，在三种不同的溶氧水平范围内，20%～30%的溶氧最有利于L-羟脯氨酸发酵.

2.3 分阶段溶氧控制策略的提出及验证

微生物发酵的目的在于使底物的消耗尽可能多的转化为目的产物[15].为了提高整个发酵过程中L-羟脯氨酸的产率，在上述实验的基础上提出分阶段溶氧控制策略，即在发酵前期(0～8 h)，将溶氧维持在20%～30%；发酵中期(8～24 h)，菌体快速增殖和产酸需要消耗大量的氧气，此阶段将溶氧控制在30%～40%；发酵后期(24～32 h)，菌体代谢减弱，耗氧量减少，将溶氧降至20%～30%.按照该溶氧控制策略进行发酵，实验结果如图4，5所示.

由图4可知：采用分阶段溶氧控制策略进行L-羟脯氨酸发酵时，发酵32 h，菌体OD600达到128.7，与溶氧为20%～30%的恒定供氧发酵相比，菌体总量稍有增长，L-羟脯氨酸产量达45.3 g/L，提高了7.9%.由图5可知：分阶段供氧下糖酸转化率为20.7%，乙酸积累量为1.7 g/L，与20%～30%的恒定供氧发酵相比，糖酸转化率提高了4.5%，乙酸积累量减少了39.3%.可见，采用分阶段溶氧控制策略既有利于菌体生长，促进产物高效合成，又能够有效降低副产物乙酸的形成，使整个发酵过程表现出良好的状态.

图4 分阶段溶氧控制策略下OD600和L-羟脯氨酸质量浓度Fig.4 The OD600and L-hydroxyproline production under the strategy of staged dissolved oxygen control

图5 不同溶氧控制方法对糖酸转化率和乙酸质量浓度的影响Fig.5 Effect of different dissolved oxygen control methods on the glucose conversion rate and accumulation of acetic acid

3 结 论

溶氧对氨基酸的发酵生产具有重要影响，发酵液中溶氧水平的高低会直接影响微生物体内的酶活和代谢，进而影响菌体生长和产物积累[16].研究了不同溶氧水平对L-羟脯氨酸发酵的影响，结果表明：10%～20%的溶氧水平不能满足L-羟脯氨酸的发酵需要，并且会导致副产物乙酸的大量积累；30%～40%的溶氧较高，会使菌体提前衰老，导致L-羟脯氨酸产量和糖酸转化率偏低；而将溶氧维持在20%～30%时，菌体OD600、L-羟脯氨酸产量和糖酸转化率较高.在确定了不同溶氧水平下的发酵情况后，提出一种分阶段溶氧控制策略，即发酵前期(0～8 h)，溶氧维持在20%～30%；发酵中期(8～24 h)，溶氧控制在30%～40%；发酵后期(24～32 h)，溶氧维持在20%～30%.结果表明：采用分阶段溶氧控制策略使L-羟脯氨酸发酵整个过程表现出良好的状态，发酵32 h，菌体OD600为128.7，L-羟脯氨酸产量达45.3 g/L，糖酸转化率达到20.7%，乙酸积累量仅有1.7 g/L.