厉 菁 袁义强 张 宇 张 华 张传西 宣学习 王明杰
(郑州市第七人民医院心内科,河南 郑州 450006)
心肌细胞凋亡是引起各种慢性心力衰竭、心脏功能恶性的主要因素〔1〕。microRNA(miRNA)通过对其靶基因的表达调节,参与细胞增殖、凋亡、分化等生物学行为,也可参与多种疾病的发生发展〔2~4〕。miR-92a是miRNAs家族中的一员,有研究表明,miR-92a在诱导缺血后的组织中表达明显升高〔5〕,心肌梗死模型中抑制miR-92a的表达可降低心肌梗死面积、改善心肌梗死后重塑和新生血管形成,从而促进心脏功能的恢复〔6〕。关于miR-92a对过氧化氢(H2O2)诱导的心肌细胞增殖凋亡的影响尚未清楚。本研究将miR-92a的抑制物(inhibitor)转染H2O2诱导的H9C2心肌细胞,检测心肌细胞的增殖凋亡情况及其作用机制。
1.1细胞株及主要试剂和仪器 大鼠心肌细胞H9C2购自中国科学院上海细胞库;胎牛血清、DMEM培养基均购自美国Hycloneo公司;B细胞淋巴瘤/白血病(Bcl)-2、Bcl-2相关X蛋白(Bax)、β-连环蛋白(β-catenin)、c-Myc抗体均购自美国Epitmics公司;H2O2、细胞增殖及毒性检测(CCK8)试剂盒、膜联蛋白(Annexin)V-异硫/碘化丙锭(PI)细胞凋亡试剂盒均购自中国碧云天试剂公司;二喹啉甲酸(BCA)试剂盒购自Thermo公司;Trizol、荧光定量-PCR试剂盒均购自日本TAKARA公司;酶标仪购自美国Bio Tek公司;实时荧光定量(RT)-PCR仪购自瑞士Roche;流式细胞仪购自美国Bio-Rad公司。
1.2细胞培养 取出在液氮罐中保存的H9C2心肌细胞,置于37℃水浴锅中快速融化,用含有10%胎牛血清的DMEM培养基,置于37℃、5% CO2培养箱中培养。细胞达到80%~90%融合生长时,弃去旧的培养液,磷酸盐缓冲液(PBS)洗涤细胞3次,胰蛋白酶消化细胞,细胞由梭形变为圆形时倒掉胰蛋白酶,加入培养基终止消化。根据实验需要传代。实验为生长至对数期的细胞。
1.3实验分组及细胞转染 H9C2细胞分为空白对照组、阴性对照组、miR-92a inhibitor组。空白对照组不经特殊处理,阴性对照组和miR-92a inhibitor组通过LipofectamineTM2000(美国,Invitrogen 公司)转染至H9C2细胞中,转染浓度均为200 nm,转染6 h后换成含有10%胎牛血清的DMEM培养基,置于37℃、5% CO2培养箱培养48 h,收集细胞。
1.4RT-PCR检测H9C2心肌细胞中miR-92a的表达 收集转染48 h的细胞,利用Trizol法提取细胞中的总RNA,并检测RNA的纯度,逆转录为cDNA,以U6作为内参基因,cDNA为模板进行RT-PCR,根据Ct值,通过2-△△Ct法对miR-92a的表达进行定量分析。实验重复3次。
1.5CCK8实验检测细胞增殖 实验分为空白对照组、H2O2组(200 μmol/L的H2O2处理细胞6 h)和miR-92a inhibitor+H2O2组(细胞中转染miR-92a inhibitor,转染48 h后用200 μmol/L的H2O2处理细胞6 h)。取生长至对数期的H9C2心肌细胞,以每孔1×104个细胞接种在96孔板中,置于37℃、5% CO2培养箱培养12 h以上,观察细胞是否贴壁,在贴壁均匀的96孔板中按照上述分组加入至细胞,处理完毕后收集细胞,每孔细胞中加入CCK8试剂10 μl,37℃继续培养2 h,震荡5 min后,酶标仪于570 nm波长处测定吸光度(OD)值。
1.6流式细胞仪检测细胞凋亡 收集按照1.5分组处理完毕的3组细胞,PBS洗涤细胞3次,胰蛋白酶消化细胞,细胞由梭形变圆时,加入培养基终止消化,将细胞吹打成细胞悬液,离心,弃掉上清,PBS洗涤细胞,再次离心,收集(1~5)×105细胞,加入500 μl结合缓冲液悬浮细胞,在分别加入Annexin V-FITC和PI各5 μl(浓度250 μg/ml),室温避光反应5~15 min,在1 h内上流式细胞仪检测细胞凋亡率。
1.7Bcl-2、Bax、β-catenin、c-Myc蛋白表达检测 收集按照1.5分组处理完毕的3组细胞,加入裂解液裂解细胞30 min,收集蛋白并用BCA试剂盒测定蛋白浓度,蛋白样品煮沸变性5 min,上样,每泳道40 μg蛋白样品经10%十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺(SDS-PAGE)电泳分离1~2 h,后转至硝酸纤维素膜,5%的脱脂奶粉封闭2 h,4℃孵育Bcl-2、Bax、β-catenin、c-Myc一抗(皆按照1∶1 000稀释)过夜,次日加入辣根过氧化物酶(HRP)标记的羊抗兔二抗,室温孵育1 h,增强型化学发光法(ECL)进行显色,显影后采用Gel-Pro analyzer分析各个条带的光密度,
1.8统计学方法 应用SPSS21.0软件进行单因素方差分析、t检验。
2.1转染效果检测 miR-92a inhibitor组miR-92a mRNA表达(0.311±0.021)显著低于空白对照组(1.000±0.031,P<0.05),阴性对照组(0.964±0.045)与空白对照组差异无统计学意义(P>0.05)。
2.2抑制miR-92a表达对H2O2诱导的H9C2心肌细胞增殖的影响 与空白对照组(OD值,0.43±0.35)比较,H2O2组(0.17±0.18)细胞增殖显著降低,与H2O2组比较,miR-92a inhibitor+H2O2组(0.30±0.24)显著升高(均P<0.05)。
2.3抑制miR-92a表达对H2O2诱导的H9C2心肌细胞凋亡的影响 与空白对照组比较,H2O2组细胞凋亡率及Bax蛋白表达均显著升高,Bcl-2蛋白表达显著降低(P<0.05),与H2O2组比较,miR-92a inhibitor+H2O2组细胞凋亡率及Bax蛋白表达均显著降低,Bcl-2蛋白表达显著升高(P<0.05)。见表1。
表1 抑制miR-92a表达对H2O2诱导的H9C2心肌细胞凋亡率及Bcl-2和Bax表达的影响
与空白对照组比较:1)P<0.05;与H2O2组比较:2)P<0.05
2.4抑制miR-92a表达对H2O2诱导的H9C2心肌细胞Wnt/β-catenin信号通路的影响 与空白对照组(0.138±0.015,0.105±0.010)比较,H2O2组β-catenin和c-Myc蛋白表达(0.662±0.057,0.341±0.032)均显著升高(P<0.05),与H2O2组比较,miR-92a inhibitor+H2O2组(0.357±0.039,0.173±0.019)均显著降低(P<0.05)。
研究发现,癌症、内分泌疾病、心血管疾病等的发生发展受到miRNA的调控,心血管疾病氧化损伤也受到miRNA的调控〔7〕。研究发现,经H2O2处理的大鼠心肌细胞中miR-181a表达上调,抑制miR-181a的表达可降低H2O2诱导的心肌细胞的凋亡〔8〕;H2O2处理的大鼠心肌细胞中miR-139表达降低,过表达miR-139可降低H2O2诱导的心肌细胞的凋亡〔9〕。miR-92a是miRNAs家族中的一员,有研究发现,心肌缺血再灌注损伤可引起细胞内miR-92a的表达升高〔10〕,提示miR-92a的高表达可使心肌缺血再灌注损伤加重,有研究也发现miR-92a参与了心肌梗死后的心脏重塑〔11〕。细胞凋亡受到细胞内抗凋亡蛋白和促凋亡蛋白的调节,细胞的凋亡发生是这两类相互拮抗的蛋白间失衡的结果。Bcl-2家族在各种刺激引起的细胞凋亡中有关键作用,Bax和Bcl-2分别是Bcl-2家族的促凋亡和抑凋亡基因,能通过控制线粒体凋亡通过,诱导细胞的凋亡〔12〕。有研究表明,Bcl-2和Bax表达水平的高低与凋亡调控直接相关,Bcl-2降低,Bax增高,促进细胞凋亡,反之抑制细胞凋亡〔13〕。本研究提示miR-92a可通过调节Bcl-2和Bax表达影响心肌细胞凋亡。在正常情况下,Wnt信号通路是沉默的,在各种病理状态下被激活〔14〕。一项体外研究发现,在缺血缺氧状态下的小鼠心肌组织,Wnt信号通路被过度激活,从而使心肌细胞凋亡增加〔15〕。也有研究发现,抑制Wnt信号通路可减轻心肌梗死面积,降低心肌细胞凋亡,改善心功能〔16〕。本研究结果提示miR-92a可通过Wnt信号通路影响心肌细胞凋亡。miR-92a可能成为一个潜在的治疗心肌疾病的作用靶点。
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