, ,, ,,
裂头蚴病是由猬迭宫绦虫的幼虫寄生人体所致的人兽共患病[1]。迄今,我国已有1 000多例报告,来自于全国27个省、市、自治区[2]。人体裂头蚴病的临床表现因寄生部位不同而异,诊断主要依赖于局部发现裂头蚴或虫体的残端组织[3],因裂头蚴病常表现为慢性感染过程且临床症状不典型,临床上对裂头蚴结构的认识不足给诊断带来困扰。为提高裂头蚴病的病原诊断水平,近年来,人们开展了裂头蚴病的分子病理诊断研究[4-6]。从含有虫体残端组织的切片中提取并分析其结构,一定程度上弥补了普通病原学诊断的不足,提高该病的检出率。而在分子病理诊断中,提取病理切片中的DNA是关键步骤[7-11]。目前DNA提取试剂盒层出不穷,而不同的试剂盒提取的效果及速度等存在很大差异。对于不同目的和条件的实验,需要选择不同的试剂盒以满足后续的分析检测[12-15]。
考虑到裂头蚴病临床类型特点,人工建立小鼠皮下肌肉裂头蚴病动物模型,取有裂头蚴寄生的皮下肌肉组织块制作病理组织切片[16],用4种商品试剂盒平行提取切片中裂头蚴DNA,比较提取效果,为裂头蚴病临床分子病理诊断选用试剂盒提供实验依据。
1.1 材料
1.1.1实验标本来源 裂头蚴:采集贵州安顺等地的野生王锦蛇,自蛇体内检获猬裂头蚴,并经形态学鉴定确认虫种。检获的裂头蚴用于小鼠感染。
1.1.2实验动物 昆明小鼠30只,20~25 g,雌雄各半,引自贵州医科大学动物实验中心,清洁级(合格证号:SCXK(黔)2012-0001)。
1.1.3DNA提取试剂盒 试剂盒1(QIAamp DNA FFPE Tissue kit)购自广州健伦生物科技有限公司(德国QIAGEN公司);试剂盒2购自大连宝生物有限公司;试剂盒3购自北京庄盟国际生物有限公司;试剂盒4购自康为世纪有限公司。
1.1.4引物序列 根据目的基因,参考Jeon等[17]的文献设计cox1基因引物。引物由上海英潍捷基贸易有限公司进行合成。序列如下:
cox1-F:5′-CGGCTTTTTTTGATCCTTTGG-GTG-3′
cox1-R:5′-GTATCATATGAACAACCTAA-TTTAC-3′
1.2 方法
1.2.1小鼠感染模型的建立及病理组织切片的制备 将小鼠分为实验组25只和对照组5只。用蛇源裂头蚴经口服法感染实验组小鼠(5条/只),对照组不做任何处理,相同条件饲养。2周后对感染小鼠进行解剖,取含裂头蚴寄生的皮下肌肉组织(有虫组织)20块及健康小鼠相对应的皮下肌肉组织(对照组织)5块,每块大小为1 cm3。用10%甲醛固定,石蜡包埋,常规方法制成组织白片及HE染色片,切片厚度为7.0 μm。
1.2.2DNA的提取 用4种商品试剂盒平行提取有虫组织白片或HE染色片(5片)中的DNA,提取的方法和条件按试剂盒提供的操作流程进行。比较提取DNA的数量与质量,所需时间及成本。DNA样本于-20 ℃保存备用。以改良蛋白酶K消化法(脱蜡时间3 h,蛋白酶K浓度为1 500 μg/mL,消化时间24 h)为对照,比较提取DNA的数量与质量,所需成本及时间,并将4种试剂盒提取的DNA作PCR扩增,观察不同试剂盒提取DNA的扩增效果。
1.2.3 目的基因作PCR扩增的条件
1.2.3.1PCR扩增反应体系 总体积为20 μL,DNA提取物 1 μL,2×Taq PCR Master Mix试剂10 μL,上、下游引物各1.5 μL,加双蒸水6 μL。
1.2.3.2PCR扩增程序 95 ℃预变性3 min,95 ℃变性30 s,55 ℃退火45 s,72 ℃延伸1 min,40个循环,最后72 ℃延伸5 min。PCR扩增时以双蒸水作阴性对照。
1.2.4DNA浓度、纯度及提取率的检测 取2 μL提取的DNA用紫外分光光度计读取DNA浓度和A260/A280比值(DNA纯度)。
2.1提取纯度及浓度的比较 用4种商品试剂盒平行提取裂头蚴有虫组织白片DNA,提取纯度及浓度效果为:试剂盒1=试剂盒2>试剂盒3>试剂盒4;用4种商品试剂盒平行提取有虫组织HE染色片的DNA,其提取纯度及浓度效果为:试剂盒1=试剂盒2>试剂盒3=试剂盒4;对4种试剂盒的成本及提取时间进行比较:试剂盒1的成本最高耗时较短,试剂盒2的成本较低耗时最短,试剂盒3的成本最低耗时也最长,试剂盒4的成本略高于试剂盒3,耗时相对较长(表1、2)。
表1 4种试剂盒提取有虫组织白片DNA浓度及纯度的情况
Tab.1 Concentration and purity of DNA by four different kits
试剂盒DNA纯度A260/A280DNA浓度(ng/μL)成本(元/μgDNA)提取时间改良蛋白酶K法1.850±0.048371.008±14.6212027 h试剂盒11.852±0.057373.858±24.65618530 min试剂盒21.814±0.001354.005±12.7279025 min试剂盒31.776±0.059ab314.005±12.727ab5526 h试剂盒41.664±0.107abcd304.998±15.046abcd563 hχ218.0681694.106P<0.01<0.01
注:在同一列数据,a:与改良蛋白酶K法相比P<0.01,b:与试剂盒1相比P<0.01,c:与试剂盒2相比P<0.01, d:与试剂盒3相比P<0.01。AOD:平均光密度值
表2 4种试剂盒提取有虫组织HE染色片DNA浓度及纯度的情况
Tab.2 Concentration and purity of DNA by four different kits
试剂盒DNA纯度A260/A280DNA浓度(ng/μL)成本(元/μgDNA)提取时间改良蛋白酶K法1.861±0.076318.082±14.7212027 h试剂盒11.863±0.001327.051±33.20918530 min试剂盒21.861±0.001317.051±13.2489025 min试剂盒31.669±0.017abc273.858±24.656abc5526 h试剂盒41.704±0.447abc274.998±15.046abc563 hχ210.1682 530.685P<0.05<0.01
注:在同一列数据,a:与改良蛋白酶K法相比P<0.01,b:与试剂盒1相比P<0.01,c:与试剂盒2相比P<0.01, d:与试剂盒3相比P<0.01。AOD:平均光密度值
2.2提取率的比较 随机抽取有虫组织15个样本,每份样本5片。用4种试剂盒进行DNA的提取,并与改良蛋白酶K法进行比较。改良蛋白酶K法的提取率为100%,而试剂盒1-4的提取率分别为100%、93.3%、80%及73.3%(表3)。
表3 4种试剂盒提取虫体组织白片样品DNA提取率
Tab.3 Extraction rate of DNA by four different kits
试剂盒样本数阳性数提取率(%)试剂盒11515100试剂盒2151493.3试剂盒3151280.0试剂盒4151173.3改良蛋白酶K法1515100
2.34种试剂盒与改良蛋白酶K消化法提取效果比较 用4种试剂盒及改良蛋白酶K消化法分别对有虫组织白片及HE染色片进行DNA提取,提取的DNA作PCR扩增。电泳结果均有150 bp特异条带出现在相位的位置上,试剂盒4的条带相对较暗(图1、2)。
M:DNA标准分子量;1-3:改良蛋白酶K法;4-6:试剂盒4提取结果;7-9:试剂盒3提取的结果;10-12:试剂盒2提取的结果;13-15:试剂盒1提取的结果;16-17:对照组织(改良蛋白酶K法)图1 4种试剂盒与改良蛋白酶K消化法提取白片效果的比较Fig.1 Comparison of the DNA extracted from white slices by four kits and modified proteinase K method
M:DNA标准分子量;1-2:改良蛋白酶K法;3-4:试剂盒4提取结果;5-6:试剂盒3提取的结果;7-8:试剂盒2提取的结果;9-10:试剂盒1提取的结果;11-12:对照组织(改良蛋白酶K法)图2 4种试剂盒与改良蛋白酶K消化法提取HE染色片效果的比较Fig.2 Comparison of the DNA extracted from HE stained slices by four kits and modified proteinase K method
近年来有多种商业化的试剂盒可供提取石蜡包埋组织切片中的DNA。试剂盒操作简单规范深受用户喜欢,但不同的试剂盒,其提取DNA的浓度、纯度、提取率以及价格等仍存在很大差别。本实验选取四种试剂盒平行提取了裂头蚴石蜡包埋虫体组织白片和HE染色片的效果,对提取所需时间、提取的质量、提取率及价格等方面进行了比较,并用改良蛋白酶K法进行验证。
4种试剂盒提取的DNA纯度(A260/A280)均在正常范围,说明DNA既没有被过多破坏,也没掺入RAN、氯仿等杂质。经PCR扩增后在150 bp的位置出现相应的条带,提取效果均能满足实验要求。试剂盒1有脱蜡、裂解、加热、结合、洗涤和洗脱6步,操作过程时间较短组织裂解充分,DNA降解程度小,提取的DNA纯度、浓度均较高,但成本也最高。试剂盒2无需脱蜡,不接触有害溶剂,既安全又缩短了操作时间,但吸取DNA水层时易污染,较适合400 bp以下的DNA片段扩增,有一定的局限性。试剂盒3操作相对复杂需过夜,肉眼判断组织片变色情况易产生误差,且耗时最长,不适用于DNA的快速提取。试剂盒4不需过夜操作,耗时相对适中,但孵育温度高时间长易引起组织结构破坏,提取DNA的效果最差。改良蛋白酶K法提取的DNA也能达到要求,但耗时较长,需接触有害物质,不利于广泛推广使用。近年来,国产试剂盒的品质在不断提高,在某些方面甚至优于国外试剂盒。本实验的结果为临床的选择提供了实验依据。
实验仍存在不足,所用的病理标本均为小鼠模型标本,如能有相应的临床病人标本进行验证,将有利于提取条件的进一步完善,使裂头蚴病的分子病理诊断更进一步。