种植环境对不同种苗类型甘草生长和药材质量及产量的影响

李海华，青 梅，于 娟，梁帅杰，姜 旭，石 垚

(1.内蒙古医科大学药学院,呼和浩特 010110；2.内蒙古恒光大药业有限公司,赤峰 025250)

甘草(GlycyrrhizauralensisFisch.)为豆科甘草属植物，以乌拉尔甘草、光果甘草和胀果甘草的根及根茎入药，甘草中成分复杂多样，药理作用广泛[1-2]，含有三萜类和黄酮类化合物[3]，还有香豆素类、生物碱、多糖[4-5]、有机酸和氨基酸等多种成分，在抗炎[6]、抗病毒[7]、调节心脑血管和抗肿瘤等方面有较强药理作用，同时具有一定的降血糖[8]、止咳、止痛、解毒[9]和镇静作用。

甘草又名国老、甜草，生于向阳干燥的钙质草原以及河岸沙质土等地。近年来，随着甘草应用越来越广泛，使用量越来越大，而野生甘草禁止采挖，因此，发展甘草种植业是解决甘草资源匮乏的唯一途径。栽培甘草的质量和产量受种植环境、种植栽培技术[10-11]和田间管理的影响。杨辉等[12]和祖勒胡玛尔·乌斯满江等[13]，研究了甘草质量和种植模式与土壤和生态因子之间的相关性，也有学者研究了锰胁迫对甘草生理和生长特性的影响，适宜的种植环境[14]、关键的种植技术[15]以及种植后的田间管理[16]显得尤为重要，研究开发甘草种植新技术，选育甘草优良种苗类型，是大幅度提高甘草产量与质量的关键。

根据甘草的生物学特性与有效成分含量的综合评价，筛选内蒙古巴彦淖尔市乌拉特前旗的野生甘草作为优良种质，将其栽培种苗分为主根不分叉粗、主根不分叉细、主根分叉粗和主根分叉细4个主根类型[17]，采用随机区组设计在赤峰市翁牛特旗、锡林郭勒盟正蓝旗和鄂尔多斯达拉特旗3个基地建立评价圃，分别用地上部分、地下部分和产量3个方面19项指标进行数据采集和分析，研究不同种植环境对不同种苗类型甘草的影响。地上部分9个生长指标：株高、地茎、复叶长、小叶数、小叶长、小叶宽、顶叶长、顶叶宽和分蘖数等；地下部分9个生长指标：根粗(D1)、根粗(D20)、尖削度、主根长、全根长、侧根数、鲜根质量、干根质量和干鲜比；6种有效成分质量指标：芹糖甘草苷、甘草苷、芹糖异甘草苷、异甘草苷、芒柄花苷和甘草酸的含量。

1 仪器与试药

1.1仪器 Waters e2695型高效液相色谱仪，Waters W2998 PDA检测器，Empower 3色谱工作站(北京京科瑞达科技有限公司)；AR 124CN电子天平(奥豪斯仪器有限公司)；色谱柱(250 mm×4.6 mm，5 μm)(Themo Fisher公司)；KQ-250DA型数控超声波清洗器(昆山超声仪器有限公司)；DQ-103/104/105型台式方形中药切片机(温岭市林大机械有限公司)；0.45 μm针筒式微孔滤膜过滤器(天津市科亿隆实验设备有限公司)；DS-50型高速万能粉碎机(上海顶帅工贸有限公司)。

1.2试药 甘草酸(批号130525)、异甘草苷(批号130805)、芹糖甘草苷(批号140310)、芹糖异甘草苷(批号150712)和芒柄花苷(批号130827)对照品，购于四川成都植标化纯生物科技有限公司，质量分数均在98%以上，可供含量测定用；甘草苷(批号111610-201106)，购于中国食品药品检定研究院，供含量测定用；乙腈为色谱纯(美国Fisher公司)；乙醇为分析纯(天津风船化学试剂科技有限公司)；磷酸为分析纯(天津科盟化工工贸有限公司)；甲醇为分析纯(沈阳华东试剂厂)。

甘草药材来源于赤峰、达旗和锡盟3个基地移栽2年的4个种苗类型的甘草为实验材料，待样品自然晾干后，以小区为单位从30株甘草根中按照粗、中、细各2根的标准筛选出6株甘草根，截取芦头以下10～30 cm处(即中间20 cm)的部分，通过切片、打粉，过60目筛，混匀，备用。

2 方法与结果

2.1种植环境对不同种苗类型甘草生长指标的影响 2013年10月，课题组在赤峰市翁牛特旗、锡林郭勒盟正蓝旗和鄂尔多斯达拉特旗3个基地，共48个小区，对移栽2年的甘草进行样品的采集，按照5点法对各小区20株甘草进行地上生长指标的测量，共960株；各小区采挖30株甘草根，对其地下生长指标和地上生长指标进行测定，共1 440株。

2.1.1实验方法 测量上述采集的各小区30株甘草地上生长指标地径、株高、复叶长、小叶数、小叶长、小叶宽、顶叶长、顶叶宽和分蘖数，采用SPSS 20.0统计学软件对不同生长环境下4种种苗类型甘草地上生长指标进行多重比较和秩和检验分析，确定最优种植环境。

采集的各小区30株甘草根为实验材料，测量记录实验样品的地下生长指标全根长、主根长、根粗(D1)、根粗(D20)尖削度、侧根数和鲜根质量等，待样品干燥后，称定干根质量，计算干鲜比。用统计学软件SPSS 20.0对不同生长环境下4个种苗类型甘草地下生长指标进行多重比较和秩和检验分析，确定最优种植环境。

2.1.2实验结果

2.1.2.1地上生长指标

2.1.2.1.1不同环境下主根不分叉粗的甘草地上生长指标测量和统计分析结果 达旗种植甘草的9个地上生长指标地茎、株高、复叶长、小叶数、小叶长、小叶宽、顶叶宽、顶叶长和分蘖数的均值最大，分别为4.68 cm，68.07 cm，14.90 cm，8.78枚，3.10 cm，2.03 cm，3.22 cm，2.07 cm和3.16个，结果表明，达旗>赤峰>锡盟。

统计分析结果表明，不同种植环境对主根不分叉粗的甘草地上9个生长指标均有影响；除了达旗和赤峰的甘草在小叶数和分蘖数上差异无统计学意义(P>0.05)，其他差异均有统计学意义(P<0.01)。

2.1.2.1.2不同环境下主根不分叉细的甘草地上生长指标测量和统计分析结果 达旗种植甘草的9个地上生长指标地茎、株高、复叶长、小叶数、小叶长、小叶宽、顶叶宽、顶叶长和分蘖数的均值最大，分别为5.33 cm，68.18 cm，15.71 cm，9.45枚，3.25 cm，2.27 cm，3.31 cm，2.11 cm和3.23个，结果表明，达旗>锡盟和赤峰。

统计分析结果表明，种植环境对主根不分叉细的甘草地上9个生长指标均有影响，达旗和赤峰、锡盟之间差异有统计学意义(P<0.01)。

2.1.2.1.3不同环境下主根分叉粗的甘草地上生长指标测量和统计分析结果 达旗种植甘草的9个地下生长指标地茎、株高、复叶长、小叶数、小叶长、小叶宽、顶叶宽、顶叶长和分蘖数的均值最大，分别为5.35 cm，73.71 cm，14.67 cm，9.21枚，3.12 cm，1.89 cm，3.27 cm，2.11 cm和3.20个，结果表明，达旗>赤峰>锡盟。

统计分析结果表明，种植环境对主根分叉粗的甘草地上9个生长指标均有影响，除了锡盟和赤峰之间的小叶数、复叶长和株高3个指标差异无统计学意义(P>0.05)，其他指标间差异均有统计学意义(P<0.01)。

2.1.2.1.4不同环境下主根分叉细的甘草地上生长指标测量和统计分析结果 达旗种植甘草的9个地上生长指标地茎、株高、复叶长、小叶数、小叶长、小叶宽、顶叶宽、顶叶长和分蘖数的均值最大，分别为5.39 cm，66.03 cm，15.49 cm，9.76枚，3.39 cm，1.95 cm，3.20 cm，2.07 cm和3.04个，9个生长指标均以达旗的最好，结果表明，达旗>赤峰>锡盟。

统计分析结果表明，种植环境对主根分叉细的甘草地上9个生长指标均有影响，达旗与锡盟和赤峰间地茎、株高、小叶数、小叶长、顶叶长和小叶宽6个指标差异均有统计学意义(P<0.01)。

2.1.2.2地下生长指标

2.1.2.2.1不同环境下主根不分叉粗的甘草地下生长指标测量和统计分析结果 达旗种植甘草的7个地下生长指标根粗(D1)、根粗(D20)、尖削度、全根长、主根长、鲜根质量和干根质量的均值最大，分别为16.25 cm，12.32 cm，0.76，54.65 cm，33.79 cm，75.72 g和42.32 g；侧根数是锡盟甘草最多，为2.95根；干鲜比是赤峰和锡盟最高，为0.62；结果表明，达旗>赤峰>锡盟。

统计分析结果表明，不同种植环境对主根不分叉粗的甘草地下7个生长指标均有影响，所有地下生长指标达旗、锡盟和赤峰差异均有统计学意义(P<0.01)。

2.1.2.2.2不同环境下主根不分叉细的甘草地下生长指标测量和统计分析结果 达旗甘草的6个指标根粗(D20)、尖削度、全根长、侧根数、鲜根质量和干根质量的均值最大，分别为14.12 cm，0.80，57.49 cm，3.30根，97.66 g和57.10 g；赤峰种植甘草的3个地下生长指标根粗(D1)、主根长和干鲜比均值较高，分别为17.83 cm、30.72 cm和0.61；结果表明，达旗>锡盟>赤峰。

统计分析结果表明，不同种植环境对主根不分叉细的甘草地下9个生长指标均有影响，赤峰和锡盟的干鲜比差异无统计学意义(P>0.05)，其他指标差异均有统计学意义(P<0.01)。

2.1.2.2.3不同环境下主根分叉粗的甘草地下生长指标测量和统计分析结果 达旗种植甘草的7个地下生长指标根粗(D1)、根粗(D20)、尖削度、全根长、主根长、鲜根质量和干根质量均值最大，分别为16.25 cm，12.32 cm，0.76，54.65 cm，33.79 cm，75.72 g和42.32 g；侧根数是锡盟甘草最多，为2.95根；干鲜比是赤峰和锡盟最高，为0.62；结果表明，达旗>赤峰>锡盟。

统计分析结果表明，不同种植环境对主根分叉粗的甘草地下7个生长指标均有影响，除了锡盟和赤峰之间的小叶数、复叶长和株高3个指标差异无统计学意义(P>0.05)，其他指标间差异均有统计学意义(P<0.01)。

2.1.2.2.4不同环境下主根分叉细的甘草地下生长指标测量和统计分析结果 达旗种植甘草的7个地下生长指标根粗(D1)、根粗(D20)、尖削度、全根长、侧根数、鲜根质量和干根质量均值最大，分别为12.64 cm，9.54 cm，0.76，53.12 cm，2.66 cm，43.80 g和26.21 g；主根长是锡盟甘草最长，为27.78 cm；干鲜比是赤峰最高，为0.62；结果表明，达旗>赤峰和锡盟。

统计分析结果表明，不同种植环境对主根分叉细的甘草地下7个生长指标均有影响，除了赤峰和锡盟2地甘草的尖削比、主根长和侧根数差异无统计学意义(P>0.05)，其余各指标间差异均有统计学意义(P<0.01)。

2.2种植环境对不同种苗类型甘草有效成分的影响

2.2.1色谱条件 色谱柱：Themo色谱柱(250 mm×4.6 mm，5 μm)。流动相A:色谱乙腈，流动相B:质量浓度为1 g·L-1的磷酸。梯度洗脱程序：0～15 min，18%A→19%A；15～16 min，19%A→21%A；16～33 min，21%A→24%A；33～35 min，24%A→33%A；35～49 min，33%A→39%A；49～56 min，39%A。不同时间检测波长：276 nm(0～25 min)，360 nm(25～32 min)和250 nm(32～60 min)。柱温为 30 ℃；流速：0.6 mL·min-1；进样量：20 μL。HPLC图见图1。

图1HPLC图

A.混合对照品；B.甘草供试品；1.芹糖甘草苷；2.甘草苷；3.芹糖异甘草苷；4.异甘草苷；5.芒柄花苷；6.甘草酸。

Fig.1 HPLC chromatograms

A.mixed standards；B.licorice sample；1.liquiritinapioside；2.liquiritin；3.isoliquiritin apioside；4.isoliquiritin；5.ononin；6.glycyrrhizic acid.

2.2.2混和对照品溶液的制备 精密称取甘草酸、甘草苷、异甘草苷、芹糖甘草苷、芹糖异甘草苷和芒柄花苷4.9，2.83，0.33，0.64，0.51和0.30 mg，用体积分数为70%的甲醇溶解，定容至5 mL量瓶中，超声30 min，即得质量浓度分别为0.98，0.566，0.066，0.128，0.102和0.06 mg·mL-1的混合对照品溶液，备用。

2.2.3供试品溶液的制备 精密称取样品0.10 g，置于具塞锥形瓶中，精密加入体积分数为70%的甲醇20 mL，称定质量并记录，80 ℃加热回流1 h，冷却至室温，再次称定质量，用体积分数为70%的甲醇补足减失的质量，摇匀，滤过，取续滤液，即得。

2.2.4精密度考察 精密称取达旗基地移栽2年的甘草粉末样品，按照2.2.3项下供试品溶液的制备方法进行制备，精密吸取供试品溶液20 μL，连续进样6次，测定6种成分的峰面积，计算得甘草酸、甘草苷、异甘草苷、芹糖甘草苷、芹糖异甘草苷和芒柄花苷的RSD值分别为0.46%，0.57%，0.56%，0.61%，0.67%和1.73%。结果表明，该方法精密度良好。

2.2.5稳定性考察 精密称取同一甘草分析样品，按照2.2.3项下方法制备供试品溶液，精密吸取20 μL，分别于提取后0，3，6，12，18和24 h进样，测定其峰面积，结果表明，甘草酸、甘草苷、异甘草苷、芹糖甘草苷、芹糖异甘草苷和芒柄花苷的RSD值分别为0.26%，0.32%，0.05%，0.03%，0.42%和1.36%。结果表明，供试品溶液在24 h内基本稳定。

2.2.6重复性考察 精密称取样品6份，按照2.2.3项下方法制备供试品溶液，精密吸取20 μL，测定其峰面积。结果表明，甘草酸、甘草苷、异甘草苷、芹糖甘草苷、芹糖异甘草苷和芒柄花苷的RSD值分别为0.46%，0.40%，0.57%，0.38%，0.42%和1.64%。

2.2.7线性关系考察 分别精密吸取2.2.2项下制备的混合对照品溶液0.1，0.5，2，5，15和20 μL，按照2.2.1项下色谱条件，用HPLC法测定其峰面积。以峰面积(y)对进样量(x)进行回归分析，芹糖甘草苷、甘草苷、芹糖异甘草苷、异甘草苷、芒柄花苷和甘草酸的线性范围、回归方程及线性系数见表1。

表1线性关系和线性范围考察结果

Tab.1 Results of linear relationships and linearity ranges

化合物线性范围/μg标准曲线r芹糖甘草苷1．28×10-2～2．56y=3．1E+5x-7562．610．99999甘草苷5．66×10-2～11．32y=1．8E+6x+2002．510．99999芹糖异甘草苷1．02×10-2～2．04y=5．5E+5x+43205．3060．99996异甘草苷6．60×10-2～1．32y=3．8E+5x-7113．950．99999芒柄花苷6．00×10-3～1．20y=4．0E+5x-31490．390．99997甘草酸9．80×10-2～19．6y=1．1E+6x+18842．030．99999

2.2.8加样回收率 精密称取已知含量的甘草样品粉末0.05 g，共6份，分别置于具塞锥形瓶中，分别加入对照品质量的80%、100%和120%，各2份，再加入体积分数为70%的甲醇20 mL，按照2.2.3项下方法制备供试品溶液，按照2.2.1项下色谱条件，进样20 μL测定；甘草酸、甘草苷、异甘草苷、芹糖甘草苷、芹糖异甘草苷和芒柄花苷的平均回收率分别为98.94%，102.25%，97.48%，102.33%，97.43%和97.49%；RSD值分别为2.30%，1.59%，1.34%，2.26%，2.03%和2.70%。

2.2.9不同种苗类型甘草6种有效成分含量测定 用上述建立的HPLC法测定甘草中芹糖甘草苷、甘草苷、芹糖异甘草苷、异甘草苷、芒柄花苷和甘草酸6种有效成分的含量，每个样品平行进样3次。并用统计学软件SPSS 20.0对4个种苗类型甘草的有效成分进行多重比较和秩和检验分析，结果见表2至表5，以有效成分指标高的数量作为确定最优种植环境的依据。

表2甘草不同环境主根不分叉粗有效成分

Tab.2 Effective components in the thick without bifurcation taproot of different environment ofGlycyrrhizauralensis

有效成分统计量P达旗均值/%中值/%标准差赤峰均值/%中值/%标准差锡盟均值/%中值/%标准差芹糖甘草苷15．5400．770．810．120．740．760．070．600．610．05甘草苷2．120．3471．311．430．341．311．310．111．311．330．18芹糖异甘草苷16．8500．230．230．040．220．220．030．170．180．02异甘草苷13．320．0010．250．280．060．210．200．020．190．190．01芒柄花苷24．4300．070．070．030．070．060．010．030．030．00甘草酸3．260．1962．562．670．662．562．540．132．382．380．25

通过多重比较和秩和检验分析可知：

(1)种植环境对主根不分叉粗的甘草中芹糖甘草苷、芹糖异甘草苷、异甘草苷和芒柄花苷4个有效成分均有显著影响，6个成分均以达旗基地最好；结果表明：达旗>赤峰>锡盟。

(2)种植环境对主根不分叉细的甘草6个有效成分指标均有影响，除赤峰和达旗之间的芹糖甘草苷、芹糖异甘草苷和异甘草苷差异无统计学意义，其中芹糖甘草苷和芹糖异甘草苷以达旗最好，甘草苷、甘草酸、异甘草苷和芒柄花苷以赤峰最好；结果表明：赤峰>达旗>锡盟。

(3)种植环境对主根分叉粗的甘草6个有效成分指标均有影响，除了达旗和赤峰的异甘草苷和甘草酸差异无统计学意义，其他指标3个种植环境之间差异有统计学意义；甘草酸和甘草苷均以赤峰最好，异甘草苷、芹糖甘草苷、芹糖异甘草苷和芒柄花苷以达旗最好；结果表明：达旗≥赤峰>锡盟。

(4)种植环境对主根分叉细的甘草6个有效成分指标均有影响，除了达旗和赤峰的异甘草苷和甘草酸差异无统计学意义，其他指标3个种植环境之间差异有统计学意义；甘草苷、芹糖异甘草苷和芒柄花苷以赤峰最好，芹糖甘草苷和甘草酸以锡盟最好，异甘草苷以达旗最好；结果表明：赤峰>锡盟>达旗。

表3甘草不同环境主根不分叉细有效成分

Tab.3 Effective components in thin without bifurcation taproot of different environment ofGlycyrrhizauralensis

有效成分统计量P达旗均值/%中值/%标准差赤峰均值/%中值/%标准差锡盟均值/%中值/%标准差芹糖甘草苷22．5400．650．680．060．700．660．130．420．410．05甘草苷25．2400．910．910．061．351．290．300．670．690．19芹糖异甘草苷22．2400．200．210．030．200．190．030．130．120．01异甘草苷22．8400．180．190．010．200．200．030．110．110．03芒柄花苷23．7600．050．050．000．080．060．040．020．020．01甘草酸26．4501．932．020．172．652．700．411．661．600．20

表4甘草不同环境主根分叉粗有效成分

Tab.4 Effective components in branching thick taproot of different environment ofGlycyrrhizauralensis

有效成分统计量P达旗均值/%中值/%标准差赤峰均值/%中值/%标准差锡盟均值/%中值/%标准差芹糖甘草苷14．000．0010．650．660．040．810．800．030．480．490．03甘草苷31．1400．950．950．180．890．850．191．241．210．17芹糖异甘草苷2．380．3040．200．200．010．230．230．020．140．140．01异甘草苷23．3100．190．190．030．190．160．060．170．170．03芒柄花苷8．020．0180．050．050．010．060．060．010．030．030．01甘草酸160．0702．202．140．302．332．250．532．572．570．12

表5甘草不同环境主根分叉细有效成分

Tab.5 Effective components in branching thin taproot of different environment ofGlycyrrhizauralensis

有效成分统计量P达旗均值/%中值/%标准差赤峰均值/%中值/%标准差锡盟均值/%中值/%标准差芹糖甘草苷17．6400．760．770．060．620．610．100．500．500．04甘草苷24．0801．191．200．251．451．410．250．760．670．30芹糖异甘草苷16．4400．240．230．010．190．180．030．150．150．02异甘草苷23．8300．230．240．050．200．200．050．160．170．03芒柄花苷10．960．0040．070．060．020．040．040．010．030．030．01甘草酸172．5702．642．610．182．642．620．491．931．820．53

2.3不同种植环境对不同种苗类型甘草产量的影响 每个基地建立16个小区实验田，各小区面积32 m2种植320株，同一种苗类型有4个小区共128 m2，1 280株。

2.3.1实验方法 各种苗类型按照采集的120株甘草的鲜品质量来计算亩产量(kg)。

2.3.2实验结果 通过称量计算不同种植环境的不同种苗类型的甘草亩产量得出结论：达旗基地主根不分叉粗、主根不分叉细、主根分叉粗和主根分叉细的甘草亩产量分别为505.04，235.11，651.38和229.16 kg；锡盟基地主根不分叉粗、主根不分叉细、主根分叉粗和主根分叉细的甘草亩产量分别为324.35，177.90，335.09和215.67 kg；赤峰基地主根不分叉粗、主根不分叉细、主根分叉粗和主根分叉细的甘草亩产量分别为215.95，120.07，279.18和121.77 kg。

结果表明，达旗基地4种种苗类型的甘草均比锡盟和赤峰的亩产量高。达旗基地主根分叉粗的甘草亩产量最高，达651.38 kg。

3 讨论

种植环境对不同种苗类型甘草的生长、质量以及产量有重要的影响。

(1)3个不同种植环境对甘草的生长指标、有效成分指标和产量均有影响：甘草生长指标：达旗>锡盟和赤峰；甘草有效成分含量：赤峰>达旗>锡盟；甘草的产量：达旗>锡盟>赤峰。综合以上结果，达旗基地在整体水平上比赤峰和锡盟的明显高，更适合甘草的种植。

(2)3个不同种植环境对不同主根类型种苗甘草的生长、药材质量和产量均有影响：主根不分叉粗种苗类型甘草：达旗>锡盟>赤峰；主根分叉粗种苗类型甘草：达旗>赤峰>锡盟；主根不分叉细种苗类型甘草：达旗>锡盟>赤峰；主根分叉细种苗类型甘草：达旗>锡盟>赤峰。综合考虑4个种苗类型的甘草达旗基地的均比锡盟和赤峰的甘草好。

甘草是我国传统中草药，历来有中医处方离不开甘草的说法，素有“国老”的尊号。甘草不仅在现代医学领域有着广泛而重要的作用，还可作为新型的饲料添加剂[18]和食品添加剂[19]，在化妆品[20]、畜牧[21]和烟草行业[22]均有大量应用。研究和掌握甘草的种植技术，可为提高甘草的产量和质量提供科学指导。

参考文献：

[1] 任玲.甘草有效成分的药理活性研究[J].生物技术世界,2016,(5):227.

[2] 张明,邓毅.甘草及其有效成分的药效学研究进展[J].西部中医药,2015,28(4):156-159.

[3] 西力扎提·阿不来提,杨旭超,木合布力·阿布力孜，等.HPLC法测定新疆胀果甘草全草中甘草查尔酮A的含量[J].西北药学杂志,2016,31(2):130-132.

[4] Wang L,He Y,Qiu Z C，et al.Determination of glycyrrhizic acid inGlycyrrhizauralensisFisch.by fiber optic near infrared spectroscopy[J].Spectrosc Spect Anal,2005,25(9):1397-1399.

[5] 李玉山.甘草酸提取纯化工艺的研究进展[J].化学试剂,2016,38(5):428-432.

[6] 吴航.甘草黄酮抗小鼠肝纤维化药理作用的研究[J].菏泽医学专科学校学报,2016,28(1):11-13.

[7] 李阳,高欢,朱庆均,等.甘草化学成分抗病毒活性研究进展[J].山东中医杂志,2017,36(2):167-171.

[8] 张明发,沈雅琴.甘草及其有效成分抗糖尿病并发症药理作用的研究进展[J].抗感染药学,2015,12(3):324-327.

[9] 毕礼明,陈英兰.甘草治疗肾病研究进展[J].中国实验方剂学杂志,2015,21(11):228-231.

[10]林洁,谷铭.甘草种植栽培技术[J].新疆畜牧业,2015,(4):55-56.

[11]Kameoka R，Yasufuku N，Omine K, et al.Developing licorice planting techniques with cultural experiments focused on the water conditions of greening soil materials[J].J Agid Land Studies,2015,25(3):97-100.

[12]杨辉,贾光林,刘志英,等.不同产地甘草主要有效成分与生态因子的相关性研究[J].青岛农业大学学报：自然科学版,2013,30(4):289-294.

[13]祖勒胡玛尔·乌斯满江,朱军,李晓瑾，等.甘草不同种植模式与土壤微生态关联性的研究[J].中国现代中药,2016,18(11):1474-1478.

[14]Xiaosu Miao,Rongxiu Liu,Hongpei Liu,et al.Genetic and environmental effect on the growth characteristics and bioactive components of eight-year-oldGlycyrrhizauralensisFisch[J].Agri Gene,2017,3:57-62.

[15]高家强,史龙,杨明秀,等.甘草膜下滴灌生产技术[J].农村科技,2017,(7):54-56.

[16]徐莺.阿勒泰地区甘草主要虫害综合防治技术[J].乡村科技,2017,(5):36-37.

[17]梁帅杰,青梅,于娟,等.不同种苗类型甘草的质量评价研究[J].时珍国医国药,2017,28(6):1459-1462.

[18]李世传,闫冰.甘草的研究进展及其在饲料生产中的应用[J].饲料与畜牧,2014,(2):28-29.

[19]彭雪萍,马庆一,刘艳芳,等.甘草抗氧化物在冷却肉保鲜中的应用研究[J].食品工业科技,2007, 28(4):67-69.

[20]王建国,周忠,刘海峰,等.甘草的活性成分及其在化妆品中的应用[J].日用化学工业,2004,34(4):249-251.

[21]郭同军,朱宏斌,张俊瑜,等.甘草的理化特性及其在畜牧生产中的应用[J].中国畜牧兽医,2014,41(9):105-109.

[22]杜宇,王欣林,朱龙,等.甘草色素优化提取及其热裂解产物在卷烟品质评价上的应用[J].贵州农业科学,2015,43(12):178-181.