冯东凡+范东旭+金松+韩梅++杨婷+刘彦东++王凯峰++孙瑶
[摘要] 目的 探讨γ-分泌酶抑制剂(DAPT)对体外培养糖尿病(DM)大鼠血管平滑肌细胞(VSMCs)Notch信号通路相关蛋白表达的影响。 方法 体外培养DM大鼠VSMCs,随机分为两组:正常培养基组(con组)、加入不同浓度(0.15、2.50、7.50 μmol/L)DAPT的培养基组(实验组),72 h后收集细胞,分别用双向电泳方法和Western blot法检测Notch1、Notch3、Notch4、Jagged-1、Jagged-2、DLL4蛋白的表达。 结果 ①双向电泳图谱证实提取的蛋白中含有目的蛋白。②Western blot检测结果显示:随DAPT浓度的增加,Nocth1、Nocth3、Nocth4、Jagged-1、Jagged-2、DLL4各蛋白的表达均递减;7.50 μmol/L组与对con组比较,差异有高度统计学意义(P < 0.01);0.15、1.25 μmol/L组与con组比较,差异有统计学意义(P < 0.05);0.15、1.25 μmol/L组与7.50 μmol/L组比较,差异有统计学意义(P < 0.05);0.15 μmol/L组与1.25 μmol/L组比较,差异无统计学意义(P > 0.05)。 结论 DAPT作用于体外培养的DM大鼠VSMCs后,使其Notch信号通路相关蛋白表达减少,在一定浓度范围内(1.25~7.50 μmol/L)呈浓度依赖性。
[关键词] Notch信号通路;γ-分泌酶抑制剂;血管平滑肌细胞;双向电泳
[中图分类号] R587.1 [文献标识码] A [文章编号] 1673-7210(2017)02(c)-0024-04
糖尿病足(DF)是糖尿病(DM)的慢性并发症之一,是高血糖、周围血管病变、周围神经病变等多种因素共同所致,病因复杂,致残、致死率高,治疗费用高。目前针对DF及微血管病变的治疗效果难以令人满意。Notch信号通路具有促进非DM动物缺血区血管新生、动静脉分化等作用。本课题通过γ-分泌酶抑制剂(DAPT)干预体外培养的DM大鼠血管平滑肌细胞(VSMCs),研究对Notch信号通路中Notch1、Notch3、Notch4、Jagged-1、Jagged-2、DLL4蛋白表达的影响。
1 材料与方法
1.1 实验材料
冻存的DM大鼠VSMCs(SPF级SD大鼠购自大连医科大学动物实验中心,质量合格证号:0003546,经DM大鼠模型建立、取材后冻存)[1]。
1.2 主要试剂和仪器
DAPT(美国Sellect公司);全自动凝胶电泳图像分析系统(日本Olympus公司);Mini-Protean 3电泳系统、Mini Trans-Blot转移系统(北航图像中心);蛋白浓度测定试剂、β-actin(美国Sigma公司);兔抗Notch1单克隆抗体、兔抗Notch3单克隆抗体、兔抗Notch4单克隆抗体、仓鼠抗大鼠Jagged-1蛋白(JAG1)單克隆抗体、仓鼠抗大鼠Jagged-2蛋白(JAG2)单克隆抗体、仓鼠抗大鼠DLL4蛋白单克隆抗体(美国Santa Cruz公司);Bio-Lyte载体两性电解质、IEF电泳槽、IPG预制胶条(美国BioRad公司)。
1.3 细胞培养
取冻存的DM大鼠VSMCs进行细胞复苏,将其接种于96孔板,D-Hank′s液冲洗2遍,加入0.25%TRYPSIN+0.02% EDTA·4Na约3 mL进行消化,制成单细胞悬液。按1∶2传代培养,传至3代后,随机分为两组:正常培养基(con)组和加入DAPT的培养基(实验)组(浓度梯度分别为0.15、1.25、7.50 μmol/L),继续培养传至6代。
1.4 方法
1.4.1 蛋白提取 取配置好的单细胞悬液,加入预冷的细胞裂解液400 mL,冰浴静置40 min,提取蛋白。
1.4.2 双向电泳检测目标蛋白 在198 mm×256 mm×1 mm SDS凝胶上,标记纵横坐标,将目的蛋白加入坐标原点,进行第一向等电聚焦电泳,聚焦结束后的胶条经平衡处理后立即进行第二向SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳,电泳结束后,取出凝胶,拍照,应用计算机软件分析处理。取提取的蛋白,BCA试剂盒测定蛋白浓度,计算上样量。煮沸,变性,标记,上样检测或于-80℃保存。
1.4.3 Western blot 检测蛋白表达情况 取30 μg蛋白,进行SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳,转膜,封闭,加入抗Notch1、Notch3、Notch4、Jagged-1、Jagged-2、DLL4单克隆抗体(1∶200),4℃孵育过夜,加入二抗IgG(1∶5000稀释),室温孵育1 h,ECL试剂盒显影,以β-actin为内参进行数据标准化,以对照组为参照样本,计算Notch1、Notch3、Notch4、Jagged-1、Jagged-2、DLL4蛋白的相对表达水平。实验重复3次。
1.5 统计学方法
采用SPSS 17.0统计学软件进行数据分析,计量资料数据用均数±标准差(x±s)表示,多组间比较采用单因素方差分析,组间两两比较采用LSD-t检验,以P < 0.05为差异有统计学意义。
2 结果
2.1 双向电泳检测结果
DM大鼠VSMCs蛋白双向电泳检测结果显示,在凝胶上可以看到800多个蛋白点,其中大多数蛋白位于pH 5.0~8.5,分子量为134~300 kD。应用计算机软件Image-Master 2D Platinum software分析,其中“十字”表示计算机探测到的凝胶分离出的蛋白质点,“标签”表示经过计算机软件自动编号后的目标蛋白点,说明提取的蛋白质中含有实验所需目的蛋白。见图1。
2.2 Western blot检测结果
Western blot检测结果显示:随DAPT浓度的增加,Nocth1、Nocth3、Nocth4、Jagged-1、Jagged-2、DLL4各蛋白表达水平递减;7.50 μmol/L组与con组相比,差异有高度统计学意义(P < 0.01),0.15、1.25 μmol/L组与con组相比,差异有统计学意义(P < 0.05);0.15、1.25 μmol/L组与7.50 μmol/L组相比,差异有统计学意义(P < 0.05);0.15 μmol/L组和1.25 μmol/L组比较,差异无统计学意义(P > 0.05)。见图2~3。
3 讨论
DM已成为世界性疾病[2],根据国际糖尿病联盟(IDF)发布的2015全球DM版图[3],目前世界成年DM患者约4.15亿人,中国目前为1.096亿人,且处于不断增加中。据统计,15%~25%的DM患者一生中会发生DF[4],而DM患者的截肢率与非DM患者相比要高40倍[5],且截肢预后较差。据统计[6]截肢后5年死亡率达40%。
在DM血管病变过程中,VSMCs从中膜移行到内膜,增殖、分泌生长因子,参与纤维膜的形成,VSMCs还分泌合成许多基质分子参与血管病变的发生[7-8]。因此可见,VSMCs在DM血管病变的进展过程中发挥着重要作用。
目前针对DM血管病变的治疗主要以内科药物保守治疗、腔内介入手术[9]、旁路移植手术[10]为主,但效果均欠佳,近年来开展的细胞因子治疗[11]用于诱导和促进DM血管缺血区血管再生的探索取得一定效果,但也存在一定不足。因此,寻求新的方式以促进更多血管生成是非常有必要的。
有研究证实,Notch信号通路能促进非DM动脉缺血区的血管新生[12-14],在血管发育的过程中发挥重要的作用。在Notch信号通路的受体和配体中,Notch1、Notch3、Notch4、Jagged-1、Jagged-2、DLL4在血管平滑肌细胞表达[15]。Notch1、Notch3、Notch4受体分别主要由Jagged-1、Jagged-2、DLL4配体启动[16-17]。Qiao等[18]、Zela等[19]证实Notch信号通路对体外培养正常大鼠血管VSMCs的增殖、分化、凋亡等具有重要的调控作用,进而促进血管新生。但是Notch信号通路是否对DM动脉缺血区具有相同的作用尚未清楚。DAPT是Notch信号通路的抑制剂,可特异性抑制γ-分泌酶活性,进而抑制Notch受体在S3位点的酶切,有效抑制Notch信号通路的激活[20]。
本课题组既往实验经流式细胞学检测证实,体外培养的DM大鼠VSMCs经DAPT作用72 h,对其细胞的抑制率较其余各时间段明显,且当DAPT浓度在0.25、1.25、7.50 μmol/L时,其半抑制率最为明显[1],所以本实验选用以上3个浓度的DAPT作用72 h后行相关检查。实验结果显示:各实验组与con组提取Notch1、Notch3、Notch4、Jagged-1、Jagged-2、DLL4蛋白后行双向电泳及Western blot检测证实DAPT可以抑制Notch信号通路的活动,抑制Notch相关蛋白的表达。双向电泳图谱经计算机软件分析表明提取蛋白中含有目的蛋白。Western blot检查结果显示:随DAPT浓度的增加,各蛋白的表达均递减,说明DAPT干预Notch信号通路能抑制DM大鼠Notch信号通路相关蛋白的表达;其中,当DAPT浓度在7.50 μmol/L时,对Notch信号通路各蛋白表达的抑制作用最明显;当DAPT浓度在0.15~1.25 μmol/L之间时,干预Notch信号通路后对相关蛋白的抑制作用无明显差异;当DAPT浓度在1.25~7.50 μmol/L之间时,随着浓度的升高,DAPT对Notch信号通路的抑制作用逐渐增强,呈剂量依赖型。从结果中可看出,Nocth1、Nocth3、Nocth4蛋白分别与Jagged-1、Jagged-2、DLL4蛋白降低的幅度相似,证实了Notch1、Notch3、Notch4受体分别主要由Jagged-1、 Jagged-2、DLL4配体启动这一理论。本实验结果提示:Nocth1、Nocth3、Nocth4、Jagged-1、Jagged-2、DLL4各蛋白在体外正常条件下培养的DM大鼠VSMCs中均有所表达;且DAPT能不同程度阻断DM大鼠VSMCs Notch信号通路的活性,抑制Notch信号通路相关蛋白的表达,且该抑制作用在一定浓度范围内(1.25~7.50 μmol/L)呈正相关。结合本课题前期实验证实DAPT干预Notch信号通路后可抑制DM大鼠VSMCs的增殖、促进凋亡等,提示Notch信号通路与DM大鼠VSMCs的增殖、凋亡等有关。此项研究提示,促进Notch信号通路的表达或许可以促进DM患者缺血区VSMCs的增殖,促进更多新生血管的再生,但目前对Notch信号通路在DM患者中的具体机制还存在许多亟需解决的问题。
总之,DAPT干预DM大鼠VSMCs后能抑制Notch信号通路相关蛋白的表达,抑制Notch信号通路的活性,证明Notch信号通路在DM大鼠血管再生中起着重要作用,而进一步研究Notch信号通路在DM大鼠中的作用機制或许为治疗DM患者缺血区血管新生提供一种新的可能。
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(收稿日期:2016-11-15 本文編辑:程 铭)