胡语航,王兴勇
(1.四川省妇幼保健院重症医学科,成都 610045;2.重庆医科大学附属儿童医院 400014)
论著·临床研究 doi:10.3969/j.issn.1671-8348.2016.28.025
缺氧-复氧肾小管上皮细胞损伤的信号传导机制
胡语航1,王兴勇2△
(1.四川省妇幼保健院重症医学科,成都 610045;2.重庆医科大学附属儿童医院 400014)
[摘要] 目的 探讨肾小管上皮细胞在缺氧-复氧(H-R)损伤后的信号传导机制。方法 将不同方法处理的人近曲肾小管上皮细胞(HK-2)分为对照组、模型组和PDTC组,模型组和PDTC组再分别分成缺氧6、12、24 h组、缺氧24 h后分别复氧6、12、24 h组;检测细胞成活率、NF-κB p65蛋白表达、细胞间黏附分子-1(ICAM-1)mRNA及蛋白表达情况。结果 与对照组比较,模型组随缺氧时间延长细胞数量逐渐减少,24 h达高峰(P<0.05),复氧后细胞数量略有增加;随缺氧时间延长NF-κB p65阳性蛋白表达增多,复氧6 h组达高峰(P<0.05); ICAM-1 mRNA及蛋白表达随H-R时间延长渐增高(P<0.05)。PDTC组中NF-κB p65蛋白和ICAM-1 mRNA及蛋白表达较模型组有明显下降(P<0.05)。结论 H-R诱导HK-2细胞中NF-κB p65的活化,从而上调ICAM-1 mRNA及蛋白表达。
HK-2;缺氧/复氧;核因子-κB;细胞间黏附分子-1
[Abstract] Objective To investigate the signal transduction pathway mechanism of human renal tubular epithelial cell damage induced by hypoxia-reoxygenation.Methods Human renal tubular epithelial cell line HK-2 cell was used as target cell.The experiment are divided into the control group,the model group and PDTC group.Each group was further divided into 6 subgroups according to the times of hypoxia or/and reperfusion(H6、H12、H24、R6、R12 and R24).Detected the cell survival,the protein expression of nuclear factor-κB(NF-κB)protein65,the mRNA and protein expression of ICAM-1 respectively.Results Compare with control group,cell survial were significantly decreased and droped the lowest in group H24(P<0.05)which induced by Hypoxia.H/R up-regulates NF-κB protein65,and the mRNA and protein expression of ICAM-1 of the cell increased significantly(P<0.05).In addition,expression of NF-κB protein65 and ICAM-1 which induced by H-R were remarkably reduced in the PDTC group(P<0.05).Conclusion H/R induced NF-κB activation and increased ICAM-I mRNA and protein expression,this effect can be inhibit by PDTC.It suggested that H/R induces ICAM-l mRNA and protein expression in HK-2 cells through activation of NF-κB.
人体遭受各种打击包括创伤、窒息、严重感染后均容易导致缺氧缺血性肾损伤,缺氧后肾脏损伤的严重程度,是决定患者预后好坏的重要因素[1]。但目前尚不清楚,缺氧性肾损伤后促进肾小管上皮细胞活化表达细胞间黏附分子-1(intercellular adhesion molecule-1,ICAM-1)的途径和机制。因此,本实验探讨缺氧-复氧(hypoxia-reoxygenation,H-R)诱导的人肾小管上皮细胞损伤机制并且检测其ICAM-1表达情况,为治疗肾缺血再灌注损伤提供新的临床思路和治疗靶点。
1.1 材料 人近端肾小管上皮细胞株(HK-2)购自中国典型培养物保藏中心。吡咯烷二硫代氨基甲酸酯(PDTC,NF-κB p65的特异性抑制剂)购自美国Sigma公司。
1.2 方法
1.2.1 细胞培养 HK-2细胞常规种植于培养基(含10%胎牛血清的DMEM/F12)中。每周传1~2代。处理前用无血清DMEM/F12培养基培养24 h,使细胞转G0期。
1.2.2 H-R损伤模型的建立 按下列分组进行处理,对照组:置培养板于正常孵箱中培养;缺氧组:置培养板于充有95% N2、5% CO2混合气体的密闭容器后再一起放入正常孵箱内,分别缺氧6、12、24 h;复氧组:各组均于缺氧24 h后取出,分别放入正常孵箱中继续培养6、12、24 h;PDTC组:每孔中加入PDTC(终浓度为50 μmol/L)后各组再进行相应H-R处理。倒置相差显微镜下观察HK-2细胞形态。
1.2.3 检测NF-κB p65的表达 细胞爬片采用4 ℃的丙酮进行制作,并采用免疫组织化学检测NF-κB。用Image-Pro Plus 6.0软件对其平均光密度比值进行细致的统计与分析。
1.2.4 ICAM-1 mRNA表达的检测 提取各组细胞总RNA,通过逆转录方式生成cDNA,再以适量cDNA为模板,PCR扩增在TaqDNA聚合酶催化下进行。其扩增产物经1.5%琼脂糖凝胶电泳,并进行光密度扫描获得光密度(OD)值。本实验参照文献[2]进行引物设计。
1.2.5 ICAM-1蛋白的测定 采用ELISA法,各孔分别加入各组细胞培养上清液100 μL,在酶标仪波长450 nm处测定OD值。
1.2.6 细胞增殖的测定 采用MTT法,将HK-2细胞接种于培养板中,同时给予相应H-R处理,测定各标本在波长490 nm处OD值。
2.1 H-R后HK-2细胞形态学改变 各模型组细胞数量明显减少,并且随缺氧时间的延长,出现明显的下降趋势,表现为培养基中细胞贴壁性差,折光性下降,悬浮细胞数量明显增加。尤其以缺氧24 h组上述改变达高峰;复氧后细胞数量较缺氧虽有所增加,但较对照组折光性减弱,细胞状态欠佳。对照组中,细胞呈扁平梭状,形态良好,贴壁和折光性较好。
2.2 细胞增殖 随着缺氧时间的延长,模型组与对照组比较在各时间点活细胞数量明显减少,缺氧24组达最低值,与对照组比较差异有统计学意义(P<0.05)。PDTC组与其对应时间点H-R组(缺氧6、12、24 h组,复氧6、12、24 h组)比较,有明显的保护作用,差异有统计学意义(P<0.05),见表1。
表1 不同H-R处理组对HK-2细胞成活率的影响
a:P<0.05,与同时间点对照组比较;b:P<0.05,与同时间点模型组比较。
2.3 H-R诱导的HK-2细胞中NF-κB p65的表达 对照组仅见NF-κB p65在细胞质中呈弱阳性及少量表达。各模型组HK-2细胞的细胞质及细胞核中的NF-κB p65均有明显的阳性表达,而以复氧6 h组最为明显。复氧12、24 h组NF-κB p65阳性表达较复氧6 h组下降。NF-κB p65的表达在PDTC组与其对应H-R组(缺氧6、12、24 h组,复氧6、12、24 h组)比较明显减少(P<0.05),见表2。
表2 不同H-R处理组HK-2细胞NF-κBp65阳性表达情况
a:P<0.05,与同时间点对照组比较;b:P<0.05,与同时间点模型组比较。
2.4 H-R诱导HK-2细胞ICAM-1 mRNA及蛋白表达 对照组HK-2细胞表达ICAM-1 mRNA的量极低。与对照组比较,经H-R诱导后各模型组ICAM-1 mRNA及蛋白表达量明显上调,自缺氧12 h组开始差异有统计学意义(P<0.05),复氧24 h组扩增条带亮度及宽度达高峰,与对照组比较差异有统计学意义(P<0.05)。而PDTC组ICAM-1 mRNA及蛋白表达量明显减少,与模型组比较差异有统计学意义(P<0.05)。表3、4。
表3 不同H-R处理组HK-2细胞ICAM-1 mRNA表达情况
a:P<0.05,与同时间点对照组比较;b:P<0.05与同时间点模型组比较。
表4 不同H-R处理组HK-2细胞ICAM-1蛋白表达情况
a:P<0.05,与同时间点对照组比较;b:P<0.05,与同时间点模型组比较。
急性缺血性肾损伤的病理发生过程主要包括小管上皮细胞损害、白细胞聚集活化及血液动力学改变等方面。本实验通过对H-R处理的肾小管上皮细胞的细胞形态学观察发现,随着缺氧时间的延长,细胞贴壁率及折光性逐渐减少,并且细胞数量逐渐减少,这与肾缺血性损伤的组织学改变是一致的。本实验显示缺血24 h组上述改变最为明显。
NF-κB是一种多效可诱导的核转录因子,可以调控任何含有κB位点的基因转录[1],缺氧导致肾小管上皮细胞损伤的机制尚不明确,可能[2-4]是通过激活细胞内NF-κB活性并表达,调控NF-κB信号传导通路中的下游因子,包括ICAM-1、白细胞介素1、16、18、肿瘤坏死因子等多种炎性因子、细胞因子的表达,加重炎性反应。本试验结果证实了这一观点:在H-R诱导后HK-2细胞NF-κB p65活性随缺氧时间延长而逐渐增强,并于复氧6 h达高峰。给β其特异性抑制剂PDTC阻断NF-κB治化后,各组与对照组比较,差异有统计学意义(P<0.05)。本实验证实缺氧可作为始动因素激活NF-κB在HK-2细胞中的表达,且在缺氧6 h达高峰。
缺氧刺激后,靶器官细胞ICAM-1产生增加,表达明显,致使中性粒细胞游走、吞噬和浸润,导致强烈的免疫炎性反应[1-3,4-7]。已有学者证实[8]ICAM-1的激活及过度表达参与了急性缺血性肾损伤的病理生理过程,并通过介导白细胞与内皮细胞的黏附,导致靶器官的内皮细胞充血、水肿和局部的微循环障碍,最终导致内皮损伤[9]。免疫炎性反应的刺激激活了细胞内的ICAM-1、单核白细胞和巨噬细胞导致组织细胞的损伤[10-13],损伤的组织细胞进一步激活靶细胞导致炎症因子包括ICAM-1,肿瘤坏死因子,白细胞介素等“瀑布样”释放增多,形成恶性循环,加重已经损伤的内皮细胞。
缺氧作为始动因素,NF-κB被活化、ICAM-1表达增多、ICAM-1介导中性白细胞黏附,三者互相促进,互为因果,导致靶细胞损伤[14]。本研究证实H-R损伤诱导HK-2细胞的ICAM-1的激活和表达呈时间依赖性,即随着时间的延长,细胞损伤加重,ICAM-1的激活和表达增加。与对照组比较,采用PDTC处理后,H-R处理的HK-2细胞ICAM-1 mRNA表达无改变。因此,H-R性肾损伤机制可能是由于H-R诱导的HK-2细胞内NF-κB活性升高,促进肾小管上皮细胞的ICAM-1 mRNA转录及蛋白表达上调,进一步促进炎症因子释放而加重肾小管内皮细胞的损伤。
[1]Combe C,Burton CJ.Hypoxia induces intercellular adhesion molecule-1 on cultured human tubular cells[J].Kidney int,1997,51(6):1703-1709.
[2]Taekema-Roelvink ME,Kooten C,Kooij SV,et al.Proteinase 3 enhances endothelial monocyte chemoattractant protein-1 production and induces increased adhesion of neutrophils to endothelial cells by upregulating intercellular cell adhesion molecule-1[J].J Am Soc Nephrol,2001,12(5):932-940.
[3]Christman JW,Sadikot RT,Blackwell TS.The role of nuclear factor kappa B in pulmonary disease[J].Chest,2000,117:1482-1487.
[4]Hayden MS,Ghosh S.Shared principles in NF-kappaB signaling[J].Cell,2008,132(3):344-362.
[5]Latanich CA,Toledo-Pereyra LH.Searching for NF-kappaB based treatments of ischemia reperfusion injury[J].J Invest Surg,2009,22(4):301-315.
[6]Xie J,Guo Q.Apoptosis antagonizing transcription factor protects renal tubule cells against oxidative damage and apoptosis induced by ischemia-reperfusion[J].J Am Soc Nephrol,2006,17(12):3336-3346.
[7]Zhou T,Sun GZ,Zhang MJ,et al.Role of adhesion molecules and dendritic cells in rat hepatic/renal ischemia-reperfusion injury and anti-adhesive intervention with anti-P-selectin lectin-EGF domain monoclonal antibody[J].World J Gastroenterol,2005,11(7):1005-1010.
[8]Tian XF,Yao JH,Li YH,et al.Effect of nuclear factor kappaB on intercellular adhesion molecule 1 expression and neutrophil infiltration in lung injury induce by intestinal ischemia/reperfusion in rats[J].World Gastroenterol,2006,12(3):388.
[9]Leslie JA,Meldrum KK.The role of interleukin-18 in renal injury [J].J Surg Res,2008,145(1):170-175.
[10]Zhang XL,Selbi W,de la Motte C,et al.Renal proximal tubular epithelial cell transforming growth factor-betal generation and monocyte binding[J].Am J Pathol,2004,165(3):763-773.
[11]Derin N,Ilzgut-Uysal VN,Agac A,et al.L-earnitine protects gastric mucosa by decreasing ischemia-reperfusion induced lipid peroxidation[J].J Physiol Pharmaeol,2004,55(3):595-606.
[12]Wang N,Ma QJ,Chu YK,et al.Protective effect of ischemic postconditioning on liver grafts of rats in different strains [J].Chinese Clini Rehabilitation,2005,9(18):147-149.
[13]Kher A,Meld rum KK,Wang M,et al.Cellular and molecular mechanisms of sex differences in renal ischemia-reperfusion injury[J].Cardiovasc Res,2005,67(4):594-603.
[14]Mizuno S,Nakamura T.Prevention of neutrophil extravasation by hepatocyte growth factor leads to attenuations of tubular apoptosis and renal dysfunction in mouse ischemic kidneys[J].Am J Pathol,2005,166(6):1895-1905.
Progression on signal transduction pathway mechanism of HK-2 cells injury induced by hypoxia-reoxygenation
HuYuhang1,WangXingyong2△
(1.SichuanProvincialHospitalforWomenandChildren,ICU,Chengdu610045,China;2.Children′sHospitalofChongqingMedicalUniversity,Chongqing400014,China)
HK-2;Hypoxia-reoxygenation; Nuclear factor-κB; ICAM-1
胡语航(1982-),主治医师,硕士,主要从事多器官功能障碍基础与临床研究。△
R459.7
A
1671-8348(2016)28-3962-03
2016-06-16
2016-07-28)