张宇航,郝景锋,薛会明,刘健博,兰文峰,李心慰,刘国文
(1.吉林农业科技学院动物科技学院,吉林吉林132000;2.吉林大学动物医学学院,吉林长春130062)
长白山梅花鹿鹿茸干细胞S100A4基因克隆及原核表达
张宇航1,郝景锋1,薛会明1,刘健博1,兰文峰1,李心慰2,刘国文2
(1.吉林农业科技学院动物科技学院,吉林吉林132000;2.吉林大学动物医学学院,吉林长春130062)
为了研究S100A4蛋白在鹿茸发生过程中的生物学功能,构建长白山梅花鹿鹿茸S100A4基因原核表达载体,并进行BL21原核表达;自鹿茸骨膜中提取总RNA,逆转录成cDNA,以特异性引物扩增S100A4,扩增产物克隆到pMD18-T载体并测序鉴定,将目的片段和原核表达质粒pET-15b分别用BamH I和HindⅢ双酶切并连接,再将重组质粒转入BL21用TPIG进行诱导表达;结果通过序列的对比分析,S100A4基因是一个相对保守的基因,与多个物种的匹配度达到90%,与牛S100A4基因同源性最高,达到98.4%;成功构建了pET15b-S100A4表达质粒,转化BL21诱导表达后,SDSPAGE电泳检测显示表达的蛋白分子量为11 kD,与预期一致。表明梅花鹿鹿茸干细胞S100A4基因的可以在原核中克隆、分析和表达,为真核表达和进一步的蛋白功能分析奠定了基础。
梅花鹿;S100A4基因;克隆;原核表达
S100蛋白家族是一类EF-手型钙结合蛋白,是一类广泛存在的钙调蛋白,通过钙离子信号传导途径参与细胞分裂、分化、肿瘤生长以及细胞外基质分泌活动等过程[1]。S100A4蛋白是由101个氨基酸组成的多肽,在多种肿瘤细胞中高表达,而且恶性肿瘤中比良性肿瘤中表达更高,在正常成年器官和组织中不表达,目前的研究确定S100A4蛋白是一个与恶性肿瘤密切相关的因子[2]。
鹿茸是一个良好的生物医学模型,雄性梅花鹿头部生茸区骨膜细胞(AP细胞)每年周期性形成角柄,AP细胞中S100A4蛋白呈现高表达,而AP细胞分化成角柄骨膜细胞(PP细胞)进而快速形成鹿茸过程中,PP组织及PP细胞都不表达S100A4基因,也检测不到S100A4蛋白,表明S100A4蛋白主要参与角柄形成过程,而且经历了从高表达到不表达的转变,但其生物学功能及调控机制目前还不清楚[3-4]。本试验拟扩增梅花鹿S100A4基因序列,并克隆到pET-15b质粒中,利用大肠埃希菌BL21进行表达,为研究S100A4蛋白在鹿茸生长过程中的作用机制奠定基础,为肿瘤发生机制的研究提供思路。
1.1材料RNA提取、反转录及PCR试剂、限制性内切酶(BamH I,HindⅢ)、T4 DNA连接酶、质粒提取试剂盒、凝胶回收试剂盒,均购自宝生物工程(大连)有限公司;pMD18-T载体、pET-15b载体(Clontech公司);LB培养基自制;BL21菌株、DH5-α菌株为本实验室保存。
1.2方法
1.2.1S100A4基因的扩增、鉴定采集雄性梅花鹿AP组织,液氮冷冻,研磨,用总RNA提取试剂盒提取总RNA,反转录成cDNA,根据牛S100A4的cDNA序列(GenBank:D89056.1)设计引物,序列如下:F:5′-TACTCGGGCAAGGAGGG-3′,R:5′-GCCAGGGTGAGCTGATG-3′,预测片段长度:330 bp,电泳后切胶,以试剂盒回收330左右的目的片段,回收产物连接于pMD18-T载体,转化DH5-α,测序鉴定。
1.2.2序列分析用DNAman软件及GenBank在线Blast工具对克隆的梅花鹿S100A4序列进行分析,并与GenBank中已登录的牛、犬、猪、羊、鼠、人基因进行同源性比较。
1.2.3载体构建、转化及原核表达将克隆质粒pMD18-S100A4,及pET-15b载体分别用BamH I、HindⅢ双酶切,分别回收纯化后以T4连接酶4℃过夜连接,构建pET15b-S100A4质粒,转化大肠埃希菌BL21,涂布于琼脂平板(含Kan 30 μg/mL),37℃倒置培养18 h,挑取单个菌落接种于LB液体培养基,扩大培养后提取质粒用BamH I、HindⅢ双酶切鉴定。将酶切鉴定正确的pET15b-S100A4转化BL21,菌液加入100倍体积的LB液体培养基(含Kan 30 μg/mL),振荡培养至吸光度(A)值0.4~0.6,加入诱导剂IPTG至终浓度为1 mmol/L,继续振荡培养6 h,试验设pET-15b空质粒诱导对照和BL21诱导对照,收集菌液提取总蛋白,SDSPAGE电泳检测表达产物。
2.1梅花鹿S100A4基因的扩增、测序及同源性分析以梅花鹿AP细胞DNA为模板,经PCR扩增得到330 bp清晰条带,如图1,与预期基本一致。回收后连接于pMD18-T载体,转化DH5-α,测序鉴定后利用DNAman软件分析发现与人、牛、羊、鼠、犬、猪同源性分别达到91.3%、98.4%、 92.5%、85.6%、88.6%、95.2%。
图1S100A4基因扩增结果
2.2载体构建结果以BamH I、HindⅢ双酶切pMD18-S100A4,得到约330 bp的片段,以相同内切酶处理pET-15b质粒,再将330 bp的片段与其连接,得到pET15b-S100A4。酶切鉴定如图2。
2.3原核表达结果pET15b-S100A4转化BL21感受态细胞中,经IPTG诱导后蛋白表达量超过30%,SDS-PAGE电泳检测显示蛋白分子质量为11 kD,与预期基本一致,如图3。
图2重组质粒酶切鉴定
图3S100A4基因表达产物的检测
鹿茸每年可进行周期性再生,生茸区骨膜AP组织和细胞中都有S100A4蛋白的表达,而每年的基础角柄骨膜PP组织和细胞中都检测不到S100A4蛋白,表明鹿茸形成过程中S100A4蛋白经历了一个从表达到不表达的转变。本试验克隆了长白山梅花鹿的S100A4基因,通过DNAman软件及在线Blast发现,该基因与牛、猪、人的S100A4基因具有非常高的重合度,说明这是一个非常保守的基因,鉴于S100A4在癌变组织中也呈现高表达,现阶段研究S100A4蛋白对鹿茸生长的影响及调控机制,对揭示器官快速生长与癌变的关系,对肿瘤的预防和治疗有着重要的意义,以鹿茸作为模型研究癌变是一全新思路,而S100A4的生物学功能是建立这一生物模型的关键。
S100A4基因从表达到沉默的机制目前尚不清楚,其生物学功能在肿瘤研究领域初现端倪,Fernandez等研究发现,S100A4蛋白过度表达,会使细胞周期失去控制,促进肿瘤的发生[5];Sherbet G V等研究发现,S100A4蛋白可以和细胞骨架发生作用,增强细胞的变形能力,从而增加肿瘤细胞的活动能力[6-7];Ambartsumian N等在试验中发现S100A4蛋白可以作为血管生成因子对血管形成直接起作用,而在肿瘤生长和转移的过程中,血管发生是关键环节[8-9]。在鹿茸生长发育特别是角柄形成过程中,AP细胞快速增殖阶段,大量表达的S100A4蛋白是否也与细胞转移或血管形成有关尚待证实,在角柄形成以后,PP细胞形成鹿茸阶段,同样需要细胞转移和血管生成,但S100A4在这一时期却没有表达,所以对S100A4的研究才刚刚开始,本试验构建了S100A4基因的原核表达载体并在BL21中表达,为研究该蛋白在鹿茸生长中的作用奠定了基础。
[1]王大涛,赵海平,褚文辉,等.梅花鹿S100A4基因的克隆及融合蛋白的表达[J].兽类学报,2011,31(1):103-107.
[2]张英,李莉,郝琳琳,等.梅花鹿S100A4基因的克隆及原核表达[J].中国病原生物学杂志,2013,8(3):242-244.
[3]刘东.梅花鹿鹿茸干细胞S100A4融合蛋白在大肠杆菌中的表达与纯化[D].镇江:江苏科技大学,2011.
[4]魏明立,褚文辉,赵海平,等.梅花鹿S100A4基因RNAi重组慢病毒载体的构建[J].兽类学报,2012,32(4):335-339.
[5]Fernandez-Fernandez M R,Veprintsev D B,Fersht A R.Proteins of the S100 family regulate the oligomerization of p53 tumor suppressor[J].Proc Natl Acad Sci USA,2005,102:4735-4740.
[6]Sherbet G V,Lakshmi M S.S100A4(MTS1)calcium binding protein in cancer growth,invasion and metastasis[J].Anticancer Res,1998,8(4A):2415-2421.
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[9]Schmidt-Hansen B,Ornas D,Grigorian M,et al.Extracellular S100A4(mts1)stimulates invasive growth ofmouse endothelial cells andmodulates MMP-13 matrix metalloproteinase activity[J]. Oncogene,2004,23(32):5487-5495.
S865.42
A
0529-6005(2016)08-0043-02
2015-03-06
吉林农业科技学院重点实验室培育项目(吉农院合字2013第S034号)
张宇航(1981-),男,讲师,博士生,从事临床兽医学方向研究,E-mail:zyh7680@163.com
郝景锋(1977-),男,讲师,博士生,从事临床兽医学教学及研究,E-mail:jlhjf2012@163.com
注:郝景锋与张宇航对本文具有同等贡献
刘国文,E-mail:gwliu@jlu.edu.cn;李心慰,E-mail:lixinwei100@126.com