欧阳霞辉,侯兰新,高丹丹,陈 红
(西北民族大学 生命科学与工程学院,甘肃 兰州730030)
在哺乳动物中,雌激素及其受体既影响乳腺、子宫和卵巢等生殖系统的生长、分化及功能,又对骨骼、心血管系统和中枢神经系统发挥作用[1].雌激素受体一旦与雌激素结合,就会发生变构形成二聚体,然后与雌激素受体反应元件(estrogen response element,ERE)结合,刺激靶基因转录,从而调节雌激素促进细胞增生、分化和维持正常的生理功能[2].ERR(Estrogen related receptor,ERR)属于孤儿核因子受体,在结构上和ER非常类似,它们和ER共同构成核因子受体超家族的第三亚族,能够直接与类固醇受体共激活子结合激活靶基因的表达 .与ER不同的是,它们不与雌激素结合,但能够与雌激素应答元件结合[3],表明在与共同的共激活子作用时它们之间存在相互竞争作用[4].
哺乳动物ERRs存在于ERs存在的多种靶器官和组织 .对鼠类的研究发现,ERRα在各种胚胎组织中都有表达,在胚胎干细胞中也能检测到ERRαmRNA的表达,表明ERRα与众多生理和发育过程有关 .几乎在老鼠每一种成体组织中都有ERRα表达,而且在大脑、心脏、骨骼肌、肾、精巢和子宫等部位有高度表达[5,6].ERRα在ERα存在的丘脑和视丘下部和垂体前叶也有表达,推测它也可能参与了生殖调控,对ERα的表达起反馈调节作用[5].ERRβ的mRNA表达从原始生殖细胞迁移到生殖脊开始,一直持续到两性性别出现,ERRβ缺失引起生殖腺生殖细胞的数量明显减少,表明ERRβ明显参与了生殖腺生殖细胞的增殖[7].
尽管对哺乳动物ERR的研究比较深入,但在昆虫类,虽然Genebank中存在一些昆虫ERR的序列,也有对黑腹果蝇dERR配体的研究报道[8],但是有关ERR功能的研究很少 .何慧等对黄脸油葫芦雌激素相关受体TeERR的研究也发现,TeERR与黄脸油葫芦的发育有关,在幼虫的胚胎期和生殖腺表达量很高[9].为了了解pvERR在性腺中的表达情况,我们采用原位杂交技术对拟黑多刺蚁蚁后卵巢中和雄蚁精巢中pvERR mRNA的表达进行了定位研究,以期为进一步的功能研究奠定基础.
以本实验室饲养的拟黑多刺蚁(Polyrhachis vicina)蚁后和雄蚁为研究对象 .饲养条件:温度25~28℃,相对湿度80%,光周期12L∶12D.饲料为20%的白糖水和豆饼菜叶.采用经过消毒的刀片迅速分别将蚁后、雄蚁的腹部切下,立即放入含有0.1%DEPC的多聚甲醛固定液中固定8h.
拟黑多刺蚁ERR原位杂交试剂盒(订制)购自武汉博士德生物工程公司,试剂盒包括:胃蛋白酶;预杂交液;ERR寡核苷酸探针杂交液(根据所测拟黑多刺蚁ERR序列设计,5'-tgaagcatatctggctcgcaagctgctaaggc-3',地高辛标记),封闭液,生物素化鼠抗地高辛,SABC,生物素化过氧化物酶.
将固定好的材料放入30%蔗糖溶液中于4℃过夜,用冰冻包埋剂包埋,切片 .切片厚15μm,将切片粘于载玻片上,晾干备用 .实验流程如下:①洗涤 .将贴有材料的载玻片置于高压灭菌的0.1%DEPC水中充分洗涤.②封闭内源性酶:切片入0.3%H2O2室温处理30min,0.1%DEPC水洗3次.③暴露mRNA核酸片段:切片上滴加3%柠檬酸新鲜稀释的胃蛋白酶,37℃消化5min.原位杂交用PBS洗3次,每次5min.④后固定:切片入1%多聚甲醛(含有0.1%DEPC)室温固定10min,0.1%DEPC水洗3次.⑤预杂交:每张切片滴加20μL预杂交液,恒温箱40℃预杂交4h.⑥杂交:每张切片滴加20μL杂交液,恒温箱中40℃杂交过夜.⑦杂交后洗涤:37℃2×SSC洗5min×2次;37℃,0.5×SSC洗15min×1次;37℃0.2×SSC洗15min×2次.⑧滴加封闭液:37℃,30min.⑨滴加生物素化鼠抗地高辛:37℃,60min,原位杂交用PBS洗4次,每次5min.⑩滴加SABC:37℃,30min,原位杂交用PBS洗3次,每次5min.[11]滴加生物素化过氧化物酶:37℃,30min,原位杂交用PBS洗4次,每次5min.[12]DAB显色:镜下控制反应时间,一般5~10min,蒸馏水终止反应 .梯度酒精脱水,二甲苯透明,中性树胶封片.Leica光学显微镜观察.
阴性对照实验是以预杂交液代替杂交液进行,其余步骤同上.
应用Leica QWinV3图像分析系统分别统计阳性反应的平均灰度值(灰度分级为0~255级,0级为最黑的灰度,255级为最浅的灰度).精巢和卵巢分别取5张组织切片,每张切片取6个视野,统计灰度值,应用SPSS 11.5的one-way ANOVA进行统计学分析 .数据符合正态分布,经方差齐性检验后进行单因素方差分析,并进行LSD检验.
采用地高辛标记的特异寡核苷酸探针杂交结果显示,pvERR mRNA在分化期早期的滤泡细胞胞质中就有表达,一直持续到卵黄积累阶段(图版Ⅰ,1-4);生长期和卵黄形成期的卵母细胞胞质中有pvERR mRNA阳性反应(图版Ⅰ,3-4).
变形期精细胞胞质有pvERR mRNA阳性反应(图版Ⅱ,1).成熟精子的头部和尾部有不同程度的pvERR mRNA阳性表达(图版Ⅱ,2-3).
以预杂交液代替杂交液的对照实验结果为阴性(图版Ⅰ,5-6;图版Ⅱ,4).
结果表明,卵子发生中,pvERR mRNA在滤泡细胞各个时期的表达差异显著 .在生长期和卵黄形成期的卵母细胞表达差异显著 .卵黄形成期卵母细胞和滤泡细胞中的表达差异不显著(表1).精巢中,pvERR mRNA在变形期精细胞和成熟精子头部和尾部的表达差异显著(表1).
表1 拟黑多刺蚁精卵发生过程中pvERR mRNA原位杂交阳性反应灰度值
图1 pvERR mRNA在拟黑多刺蚁卵巢中的表达
昆虫的生殖虽然受外界环境因子的影响,但主要受昆虫体内的内分泌系统调节 .外在因素的作用,常先刺激昆虫的感受器官,所产生的冲动传入神经系统,由此影响内分泌系统的活动,内分泌系统的化学信息传递到生殖器官,使后者产生相应的生理反应,生殖腺的活动又能对内分泌系统产生反馈式调节作用[10].在昆虫脑中存在促性腺激素(Gonadotrophins,GtH),昆虫性腺成熟及精卵成熟也依赖脑分泌的促性腺激素调节,它能诱导卵巢和精巢合成蜕皮激素,而蜕皮激素能够促使脂肪体合成卵黄原蛋白、卵胞细胞的分化以及刺激精子的发生[11~14].
拟黑多刺蚁卵巢属于多滋式 .滋养细胞和卵母细胞都是由早期的卵原细胞通过有丝分裂产生,一个卵母细胞周围有几十个滋养细胞 .滋养细胞通过染色体大量复制,使其转录活性升高,合成大量rRNA、mRNA,甚至完整的核糖体,并通过细胞质桥单向运输给处在发育阶段的卵母细胞 .在卵母细胞发育的一定阶段滋养细胞分解,分解产物进入卵母细胞 .滤泡细胞是体细胞,卵子发生早期阶段,夹杂在生殖细胞之间 .随着卵母细胞的发育,它包围在卵母细胞和滋养细胞周围形成滤泡壁 .滤泡细胞不仅为卵母细胞提供营养物质的积累,并形成卵黄膜和卵壳,并且在卵母细胞发育的过程中提供发育信息[15].
图2 pvERR mRNA在拟黑多刺蚁精巢中的表达
本研究中原位杂交结果显示,pvERR mRNA在卵子发生过程中滤泡细胞的胞质都有阳性表达.随着卵母细胞的生长,滤泡细胞中的表达量逐渐增加 .在卵黄积累阶段,pvERR mRNA的表达量显著减少 .而在卵母细胞,pvERR mRNA在生长期和卵黄发生期表达,表达量是逐渐增加的 .在卵子发生分化阶段,随着滋养细胞和卵母细胞分化,滤泡细胞不断增殖分裂,所以该时期pvERR mRNA的阳性表达可能与滤泡细胞自身的增殖和分化有关 .卵母细胞生长期和卵黄积累阶段,滤泡细胞和卵母细胞中pvERR mRNA的阳性表达趋势(滤泡细胞中逐渐减少,卵母细胞中逐渐增多)可能说明滤泡细胞给卵母细胞提供了发育信息 .卵黄生成期卵母细胞中pvERR mRNA的表达可能说明pvERR与卵黄物质的形成有关 .蜕皮激素受体通过信号通路调控卵母细胞的发育,控制卵黄蛋白的合成[16~18].而研究表明,蜕皮激素受体和雌激素受体的信号转导途径非常相似[19~20],所以推测pvERR可能也是通过蜕皮激素受体信号通路来发挥作用的.
昆虫精子的发生一般包括三个阶段:第一阶段主要在胚胎发育时就已经完成,指精原干细胞在迁移到生殖嵴途中及生殖嵴中进行多次有丝分裂,精原干细胞的数目增加;第二阶段指幼虫期的精原干细胞经过增殖和更新成精原细胞,精原细胞经过两次连续的减数分裂产生四个精子细胞;第三阶段是精子形成期,大多数种类在成虫羽化时已经有成熟的精子 .在成熟的拟黑多刺蚁雄蚁精巢,本研究中没有观察到精子发生早期的精原细胞和精母细胞,可能说明在变态为成虫之前精子发生就已经开始,生精细胞发育的同步性比较高.通过原位杂交发现,变形期的精细胞胞质和成熟精子头部有很强的pvERR mRNA表达,说明pvERR可能参与了精细胞的发育调控和精子的成熟 .对东亚飞蝗体外抑制实验研究发现,蜕皮激素对于飞蝗精子发生是必需的,能够保证产生正常发育的精细胞和精子[16].所以推测pvERR可能通过蜕皮激素受体信号途径对精子进行调控.
采用地高辛标记的特异性寡核苷酸探针对拟黑多刺蚁性腺中pvERR mRNA的表达进行了原位杂交检测,结果显示:pvERR mRNA在卵子发生过程中滤泡细胞的胞质和生长期、卵黄发生期的卵母细胞有表达,在变形期的精细胞胞质和成熟精子头部有很强的表达 .在卵子发生分化阶段,pvERR mRNA的阳性表达可能与滤泡细胞自身的增殖和分化有关 .卵母细胞生长阶段,滤泡细胞和卵母细胞中pvERR mRNA的表达模式可能说明滤泡细胞给卵母细胞提供了发育信息,而卵黄生成期卵母细胞中pvERR mRNA的表达可能说明pvERR与卵黄物质的形成有关 .变形期的精细胞胞质和成熟精子头部pvERR mRNA的表达,说明pvERR可能参与了精细胞的发育调控和精子的成熟.
[1]焦园园,叶棋浓,黄翠芬.细胞膜雌激素受体研究进展[J].肿瘤研究与临床,2004,16(2):128-130.
[2]马兰,张一娜,李颖.雌激素对大脑皮质细胞的神经保护作用[J].中国临床康复,2004,8(7):1280-1282.
[3]Giguère V,Yang N,Segui P,et al.Identification of a new class of steroid hormone receptors[J].Nature,1988,331(6151):91-94.
[4]Fujimoto J,Nakagawa Y,Toyoki H,et al.Estrogen-related receptor expression in placenta throughout gestation[J].Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology,2005,94(1-3):67-79.
[5]Bonnelye E,Vanacker J M,Spruyt N,et al.Expression of the estrogen-related receptor 1(ERR-1)orphan receptor during mouse development[J].Mechanics of Development,1997a,65:71-85.
[6]Giguère V.To ERR in the estrogen pathway[J].Trends in Endocrinology and Metabolism,2002,13:220-225.
[7]Mitsunaga K,Araki K,Mizusaki H,et al.Loss of PGC-specific expression of the orphan nuclear receptor ERRβresults in reduction of germ cell number in mouse embryos[J].Mechanics of Development,2004,121(3):237-246.
[8]Ostberg T,Jacobsson M,Attersand A,et al.A triple mutant of the Drosophila ERR confers ligand-induced suppression of activity[J].Biochemistry,2003,42(21):6427-6435.
[9]He H,Xi G,Lu X.2010.Molecular cloning,characterization,and expression analysis of an estrogen receptor-related receptor homologue in the cricket,Teleogryllus emma[J].Journal of Insect Science,10:188.
[10]郭郛.关于昆虫的激素控制生殖的一些问题[J].昆虫知识,1963,1:31-36.
[11]Davey K G.Hormonal controls on reproduction in female hetero[J].Insect Biochemistry and physiology,1997,35:443-453.
[12]Kozhanova N.Hormonal regulation of gametogenesis in insect[J].Tsitologiia,2000,42(2):115-127.
[13]Loeb M J,De Loof A,Gelman D B,Hakim R S,Jaffe H,Kochansky J P et al.Testis ecdysiotropin,an insect gonasotropin that induces synthesis of ecdysteroid[J].Archives of Insect Biochemistry and Physiology,2001,47(4):181-188.
[14]Siga S.Anatomy and functions of brain neurosecretory cells in diptera[J].Microscopy Research and Technique,2003,62(2):114-131.
[15]杨佐娟,何建平.昆虫卵子发生过程中细胞凋亡的研究进展[J].昆虫知识,2006,43(4):447-452.
[16]赵国秀,奚耕思.神经激素对蝗虫配子发生的影响[J].陕西师范大学学报(自然科学版),2004,32(sup):60-66.
[17]Carney G E,Bender M.The drosophila ecdysone receptor(EcR)gene is required maternally for normal oogenesis[J].Genetics,2000,154(3):1203-1211.
[18]Sun X,Song Q,Barrett B.Effect of ecdysone agonists on vitellogenesis and the expression of EcR and USP in codling moth(Cydia pomonella)[J].Archives of Insect Biochemistry and Physiology,2003,52(3):115-129.
[19]Martinez E,Givel F,Wahli W.A common ancestor DNA motif for invertebrate and vertebrate hormone response elements[J].The EMBO Journal,1991,10(2):263-268.
[20]Cherbas L,Lee K,Cherbas P.Identification of ecdysone response elements by analysis of the Drosophila Eip28/29 gene[J].Genes and Development,1991,5(1):120-31.