王婷婷,韩菲菲,梁加贝,王发龙,陈国千*
(南京医科大学附属无锡人民医院1.医学检验科;2.病理科,江苏 无锡214023)
高迁移率族蛋白B1(high mobility group protein B1,HMGB1)为主要存在于细胞核中的一种非组蛋白,参与核内多种功能。许多种类细胞受诱导因素诱导后可以胞外释放HMGB1,胞外HMGB1参与介导炎症反应,并与细胞增殖、细胞分化、细胞迁移等有关[1]。近年研究[2]表明,HMGB1在肿瘤的发生、发展中具有重要作用,但原发性肝癌(primary hepatic carcinoma,PHC)组织 HMGB1的表达改变及其血清HMGB1水平检测和临床意义研究报道甚少,肝癌细胞HMGB1释放机制尚未见探讨。本文就原发性肝癌HMGB1表达改变及其机制进行初步实验研究。
48例健康对照者为本院体检人群的健康者,38例慢性乙肝、32例乙肝后肝硬化和23例继发性肝癌患者来自本院门诊和住院部,年龄29-60岁;继发性肝癌患者的原发癌有胃癌、结肠癌、肺癌、乳腺癌、胆囊癌、胰腺癌、子宫癌、卵巢癌等。39例PHC患者来自本院住院部,均为初次入院、未经治疗者,并经组织病理学证实,年龄32-64岁,其中肿瘤大小<2cm 14例、≥2cm 25例,TNM分期Ⅰ或Ⅱ期17例、Ⅲ或Ⅳ期22例。人肝癌细胞株SMMC-7721购自中国科学院细胞库。DMEM高糖培养液为Sigma公司产品。
按Trizol试剂说明书提取肝组织或肝细胞中总RNA后进行逆转录反应,cDNA产物置-20℃保存。使用ABI-7500荧光定量PCR仪进行扩增,PCR参数为95℃预变性30sec、95℃变性5sec、60℃退火延伸34sec,循环40次。HMGB1引物:F 5’-GATCCCAATGCACCCAAGAG-3’,R 5’-TCGCAACATCACCAATGGAC-3’;GAPDH 引物:F 5’-GCACCGTCAAGGCTGAGAAC-3’,R 5 ’-TGGTGAAGACGCCAGTGGA-3 ’。 以HMGB1和 GAPDH 的 Ct值之差(△Ct)作为HMGB1mRNA相对表达水平的指标。
SMMC-7721细胞使用含10%胎牛血清的DMEM高糖培养液在CO2培养箱中常规培养(37℃,5%CO2、95%空气),细胞贴壁覆盖达80%-90%时进行细胞实验。缺氧组置于YCP-50S三气培养箱中培养(37℃,5%CO2、1%O2、94%N2),常氧组进行常规培养。各组实验均重复8次。
血清或培养上清液中HMGB1含量使用HMGB1ELISA试剂盒(Shino-Test公司)检测,按产品使用说明书操作。
使用SPSS 18.0统计软件包,两组间均数比较采用双侧Satterthwaite近似法t检验或配对t检验,多组间比较采用单因素方差分析,两指标变量关系采用Spearman相关系数进行相关分析,P<0.05为差异有统计学意义。
健康对照、慢性乙肝、乙肝后肝硬化、继发性肝癌和PHC各组的血清HMGB1水平分别为3.9±1.4、4.6±1.8、6.3±2.8、17.2±6.7和 13.5±6.3 μg/L,肝病各组血清HMGB1水平升高,尤以继发性肝癌组和PHC组升高显著,且继发性肝癌组高于PHC 组 (P<0.05),见 图 1。PHC 组 血 清HMGB1水平与血清甲胎蛋白水平之间具有正相关性(r=0.614,P<0.01)。PHC组TNM 分期Ⅲ、Ⅳ期患者血清 HMGB1水平(16.4±6.4μg/L)明显高于Ⅰ、Ⅱ期患者(9.7±4.0μg/L)(P<0.01)。
图1 肝病患者血清HMGB1水平
通过RT-PCR检测,11例PHC(TNM 分期为Ⅲ、Ⅳ期)组织中 HMGB1mRNA相对表达水平(△Ct)(2.91±0.56)较癌旁组织(4.73±0.95)明显增强(P<0.01)。
SMMC-7721细胞经缺氧培养6h后,HMGB1 mRNA表达明显增强(P<0.01),并随时间延长而增强,见图2;而在常氧培养24h内,HMGB1mRNA表达无显著性改变。经缺氧培养3h后,培养上清液中HMGB1含量即见时间依赖性升高,见表1。
图2 缺氧对肝癌细胞HMGB1mRNA表达的影响
表1 缺氧对肝癌细胞培养上清液中HMGB1含量的影响(μg/L,±s)
表1 缺氧对肝癌细胞培养上清液中HMGB1含量的影响(μg/L,±s)
注:/未检出;与常氧组比较,*P<0.01
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PHC是最常见的恶性肿瘤之一,尤其在中国,病例数占全球的半数以上。近十多年来,虽然PHC的早期诊断技术和治疗手段有了明显的提高和改善,但PHC患者的预后仍然较差[3]。PHC的发生、发展是一个复杂的生物学过程,其分子机制有待深入研究。HMGB1为一种主要位于细胞核内与DNA非特异性结合、进化高度保守的非组蛋白,分子量约30kDa,参与核内基因转录、DNA重组和修复、核小体构建和稳定以及类固醇激素调控等,因其在聚丙烯酰胺凝胶电泳中快速迁移而得名[1]。诸多研究[1]表明,许多种类细胞如免疫细胞、内皮细胞、上皮细胞等受胞外诱导因素(如脂多糖、干扰素-γ、生物活性脂、缺氧等)诱导后可主动分泌HMGB1,分泌后的胞外HMGB1参与介导炎症免疫反应、细胞增殖、细胞分化、细胞迁移等。
近年研究[2]显示,发生恶性肿瘤时,由于肿瘤细胞基因表达和肿瘤组织微环境的改变,肿瘤组织细胞HMGB1通常表达增强和释放增多,HMGB1与肿瘤的发生、生长、浸润和转移等有着密切关系。Dong等[4]报道,PHC组织中的 HMGB1基因和蛋白表达明显增强,其表达水平与肿瘤病理学分级、远处转移有关;利用shRNA敲除人肝癌细胞株HMGB1基因后,基质金属蛋白酶-2表达下调,细胞增殖活性和迁移能力下降。Yan等[5]研究结果显示,PHC组织和细胞HMGB1高表达,HMGB1通过TLR4和RAGE信号通路诱导半胱氨酸蛋白酶-1(caspase-1)活化,后者介导若干炎症介质产生,并促进肿瘤侵袭和转移。本研究结果显示,PHC(TNM分期为Ⅲ、Ⅳ期)组织中的HMGB1基因表达显著高于对应的癌旁组织,与以上学者的研究结果一致。肝癌患者血清HMGB1水平的变化及其意义研究较少,Cheng等[5]报道,PHC患者血清HMGB1水平(84.2±50.4ng/ml)高于健康者(7.0±5.9ng/ml),本研究结果显示,PHC患者血清HMGB1水平(13.5±6.3ng/ml)明显升高,并与其TNM分期有关,但结果值明显低于Cheng的报道结果,可能与前者采用蛋白印迹法检测有关。结果也显示,继发性肝癌患者血清HMGB1水平显著升高,可能与继发性肝癌患者为晚期癌症并存在多处肿瘤有关,并提示其它肿瘤组织细胞HMGB1表达或释放增多。
肿瘤组织HMGB1表达增强的分子机制迄今未见研究报道,本实验结果表明缺氧状态对肝癌细胞HMGB1基因表达和胞外释放有明显影响。肿瘤组织因细胞增殖过快、血管分布紊乱和结构异常而常处于缺氧微坏境中,我们前期研究[7,8]结果也显示,缺氧可以诱导巨噬细胞、肺成纤维细胞等HMGB1基因表达和胞外释放,提示肿瘤组织HMGB1表达增强与其发生的缺氧微坏境有关。
血清HMGB1作为潜在的肝癌标志物值得关注和进一步研究。
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