原发性肝癌患者尿8-羟基脱氧鸟苷水平的观察

2013-05-30 10:54李辛平唐振勇刘丽丽唐耘天
中国实验诊断学 2013年10期
关键词:羟基肝癌含量

唐 毅,李辛平,唐振勇,刘丽丽,唐耘天*

(1.广西医科大学第一临床医学院本硕062班,广西 南宁530021;2.广西壮族自治区人民医院 肝胆外科,广西 南宁530021;3.广西医科大学第一临床医学院本硕074班 ,广西 南宁530021)

原发性肝癌(primary hepatocellular carcinoma,HCC)是世界范围内最常见的恶性肿瘤之一,恶性程度高,预后差。我国是肝癌大国,全球50%以上的肝癌病例发生在我国,且发病率呈逐年上升的趋势[1]。但迄今为止,其确切的发病机制尚未明了。有研究显示:DNA氧化损伤的主要产物8-羟基脱氧鸟苷(8-OHdG)在体内的长期积累会增加自发性突变率,与癌症的发生和发展有关联[2]。本研究通过ELISA检测法测定肝癌患者的尿8-OHdG水平,并与健康体检者进行比较,以探讨氧化损伤在肝癌发生发展中的作用,现报告如下。

1 资料与方法

1.1 一般资料 实验组:选择广西壮族自治区人民医院肝胆外科2011年8月至2012年10月期间收治的男性肝癌患者100例,年龄21-74岁,平均年龄为49.24±10.36岁。所有患者无严重心、肺和肾等重要脏器的急慢性疾病史,均经过术后病理学检查或经皮穿刺活检确诊为原发性肝细胞性肝癌;对照组:该院门诊男性健康体检者100例,年龄25-65岁,平均年龄为48.60±9.93岁。两组研究对象的一般资料经过统计学分析比较,无明显差异。

1.2 标本采集 采集肝癌患者以及健康体检者清晨中段尿,留取量各约10ml。标本不加任何防腐剂,采集后立即转移至-80℃冰箱中冷冻保存待用。

1.3 主要试剂和仪器 人8-OHdG单克隆抗体试剂盒以及人肌酐ELISA试剂盒均由BlueGene Biotech公司提供,主要仪器为酶联免疫监测仪(型号GF-M3000,购于山东高密彩虹分析仪器有限公司)。

1.4 尿8-OHdG检测方法 将尿样室温解冻,震荡混匀后离心15min(3 000r/min),取上清100μl。以ELISA法严格按试剂盒说明书操作检测尿8-OHdG。由于尿中的8-OHdG受尿浓缩程度的影响,最终数值采用尿肌酐(creatine,Cr)值较正,单位为(8-OHdG)ng/mgCr。尿肌酐亦采用 ELISA 法检测。

1.5 统计学方法 采用SPSS 19.0统计软件,各项数据以均数±标准差(±s)表示,肝癌组与实验组间相对表达水平的比较采用独立样本t检验,P<0.05为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 8-OHdG标准曲线的制作 取8-OHdG标准液(0、10、25、50、100、250ng/mL)和空白对照(蒸馏水),采用相同测定方法用酶标仪测定光吸收值。以450nm下吸光度值为纵坐标,以8-OHdG含量(ng/ml)的对数值为横坐标,绘制标准曲线,见图1。

图1 ELISA方法测定8-OHdG含量的标准曲线

2.2 尿8-OHdG的检测 根据各尿样本在450nm下的吸光度值,结合8-OHdG含量的标准曲线,计算肝癌患者(HCC)和健康对照组尿8-OHdG的含量。经t检验,肝癌患者和健康体检者两组人群尿8-OHdG水平比较差异具有统计学意义(P<0.01),见表1。

表1 肝癌患者和健康体检者尿8-OHdG水平的比较

3 讨论

8-OHdG 是活性自由基(reactive oxygen species,ROS)攻击DNA分子中的鸟嘌呤碱基第8位碳原子而产生的一种氧化性加合物,由于其为代谢终产物,具有形成途经单一、在体内稳定、易于检测等优点,目前已成为评价机体内DNA氧化损伤水平的最常用的生物标志物。8-OHdG产生后无需进一步代谢而经肾脏排泄,其在尿中的含量不受饮食等因素影响,因此尿8-OHdG的含量可以反映机体氧化损伤的程度。既往研究证实,8-OHdG具有突变性,可以在DNA复制时引起G:C→T:A的颠换而导致点突变[3]。8-OHdG异常表达与恶性肿瘤的发生、发展密切相关,并且与很多恶性肿瘤的预后有相关性[4-8]。肝癌是常见的恶性肿瘤,其确切发病机制目前尚未被阐明。肝炎病毒感染、黄曲霉毒素污染、饮酒等暴露是肝癌发病的高危因素,其可引起肝细胞DNA氧化损伤,使损伤累积导致细胞恶性转化,并被认为此为肝癌的发病重要机制[9]。

研究表明,体内8-OHdG水平与年龄、性别、吸烟、剧烈运动、职业暴露、辐射以及糖尿病、肿瘤、心血管疾病等多因素有关[10-15]。本研究对象入组时严格排除了上述因素的影响,通过ELISA法检测肝癌患者尿8-OHdG的含量以研究DNA氧化损伤与肝癌发生发展的关系。具有:标本采集简单、无创伤、易于保存、检测指标稳定性强;检测方法对实验仪器的要求低;所需时间少、试样的制备简单、分析所需样品量少等诸多优点[16]。可作为一种大量人群中的肝癌普查筛查工具,该方法具有推广的可能性。

本研究结果显示:健康体检者尿8-OHdG的含量为12.21±4.51ng/mgCr,与其他研究结果接近[11,17,18]。肝癌患者尿8-OHdG的含量为16.12±5.30ng/mgCr,显著高于健康体检者,差异具有统计学意义(P<0.01),这与已有的文献报导结果相一致[17]。故本研究的结论为,DNA氧化损伤水平与肝癌的发生发展具有密切的关系,测定尿8-OHdG的含量有助于肝癌的早期诊断,该方法有望成为肝癌筛查与诊断的新工具。

[1]Bosch F X,Ribes J,Clries R,et al.Epidemiology of hepatocellular carcinoma[J].Clin Liver Dis,2005,9(2):191.

[2]Valavanidis A,Vlachogianni T,Fiotakis C.8-hydroxy-2’-deoxyguanosine(8-OHdG):a critical biomarker of oxidative stress and carcinogenesis[J].J Environ Sci Heslth,2009,27(2):120.

[3]Umemura T,Kuroiwa Y,Tasaki M,et al.Detection of oxidative DNA damage,cell proliferation and in vivo mutagenicity induced by dicyclanil,a non-genotoxic carcinogen,using gpt delta mice[J].Multat Res,2007,633(1):46.

[4]Karihtala P,Soini Y,Vaskivuo L,et al.DNA adduct 8-hydroxydeoxyguanoiune,a novel putative marker of prognostic significance in ovarian carcinoma[J].Int J Gynecol Cancer,2009,19(6):1047.

[5]Murtas D,Piras F,Minerba L,et al.Nuclear 8-hydroxy-2’-deoxyguanosine as survival biomarker in patients with cutaneous melanoma[J].Oncol Rep,2010,23(2):329.

[6]Sheridan J,Wang LM,Tosetto M,et al.Nuclear oxidative damage correlates with poor survival in colorectal cancer[J].Br J Cancer,2009,100(2):381.

[7]Ylermi S,Kirsi-Maria H,Markku H,et al.8-Hydroxydeguanosine and nitrotyrosine are prognostic factors in urinary bladder carcinoma[J].Int J Clin Exp Pathol,2011,4(4):267.

[8]Sova H,Jukkola-Vuorinen A,Puistola U,et al.8-Hydroxydeoxyguanosine:a new potential independent prognostic factor in breast cancer[J].Br J Cancer,2010,102:1018.

[9]朱德强,黄志勇.DNA损伤与肝癌发生[J].世界华人消化杂志,2007,15(16):1775.

[10]高玉楠,杨 靖 ,宋沁馨,等.8-羟基脱氧鸟苷作为DNA氧化损伤标志物在疾病诊断中的应用[J].药学与临床研究,2012,20(3):223.

[11]孙贵范,刘珊.李冰等.正常成人尿中8-羟基脱氧鸟苷水平的观察[J].中国公共卫生,2002,18(1):23.

[12]Lodovici M,Casalini C,Cariaggi R,et al.Levels of 8-hydroxydeoxyguanosine as a marker of DNA damage in human leukocytes[J].Free Radic Biol Med,2000,28(1):13.

[13]Radák Z,Pucsuk J,Boros S,et al.Changes in urine 8-hydrizyguanisune levels of super-marathon runners during fourday race period[J].Life Sci,2000,66(18):1763.

[14]Xu A,Wu L,Santella RM,et al.Role of oxyradicals in mutagemcity and DNA damage induced by crocidolite asbestos in mammaliall cells[J].Cancer Res,1999.59(23):5922.

[15]Fischer-Nielsen A,Jeding IB,Loft S.Radiation-induced formation of 8-hydroxy-2’-deoxyguanosine and its prevention by stavengers[J].Carcinogenesis,1994.15(8):1609.

[16]Marina E,Shinya T,Kunihiko O,et al.Biomarker evidence of DNA oxidation in lung cancer patients:association of urinary 8-hydroxy-2’-deoxyguanosine excretion with radiotherapy,chemotherapy,and responseto treatment[J].FEBS Letters,1997,409(2):287.

[17]唐耘天,刘天奇,杨建荣,等.NF-kB信号传导通路相关基因不同表型肝癌患者尿8-OHdG水平观察[J].山东医药,2011,51(30):15.

[18]郑全美,郭绍春,何景宏,等.ELISA方法测定尿8一羟基脱氧鸟苷(8-oH-dG)含量及其临床意义[J].中国卫生检验杂志,2002,12(2):145.

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