猪繁殖与呼吸综合征的研究进展

刘 鹏，郑世民

（东北农业大学动物医学学院，哈尔滨 150030）

猪繁殖与呼吸综合征（PRRS）俗称猪蓝耳病，是由病毒引起的一种高度接触性传染病，可导致母猪晚期流产、早产、死胎、木乃伊胎等繁殖障碍和仔猪严重的呼吸道症状及高死亡率。目前已遍及世界各主要养猪国家，给养猪业造成严重经济损失。

1 流行特点

自1987年首次在美国发现以来，PRRS已迅速蔓延到世界许多国家和地区[1]。1996年，我国研究人员首次从我国疑似PRRSV感染猪群中检出PRRS抗体，并分离出PRRSV，证实我国存在该病[2]。2006年夏季，主要以猪体温升高、皮肤发红和呼吸急促等为主要临床特征的“猪高热综合征”在我国南方地区首先发生与流行，然后迅速波及我国大部分养猪地区，剖检变化以弥散性、出血性间质肺炎、淋巴结和各内脏器官不同程度出血为突出特征，其发病率高、病死率高，治愈率低。经大量流行病学研究，确定此次疾病的主要致病病原为高致病性PRRSV变异株[3-5]。该病的流行特点包括发病急，传播快，发病率和死亡率高，病程长，一年四季均可发生；长期带毒、持续感染；隐性感染；可引起猪免疫功能下降，特别是在感染早期对免疫功能的抑制十分明显，从而导致继发或并发感染[6]。

2 临床症状

各年龄、品种的猪均可感染PRRSV，由于PRRSV株毒力变化很大，低毒株可以引起猪群无临床症状的流行，而强毒株则可以引起猪群严重的临床症状，因此PRRS的临床症状变化很大。

2.1 母猪

感染母猪表现为体温升高，有些猪体温升高到39.5～41℃，但不出现高热稽留；厌食、发热、嗜睡，精神沉郁，消瘦，皮肤苍白或有暂时性小泡疹；呼吸道症状轻微；小绀部分感染猪四肢末端、尾、乳头、阴户和耳尖发绀，并以耳尖发绀最为常见；在妊娠107～112 d普遍出现流产或后期出现早产、死产、死胎、木乃伊胎或产出弱仔。

2.2 仔猪

仔猪表现为被毛粗乱，生长缓慢，眼睑水肿，结膜炎及打喷嚏，体温升高至41℃；两耳变色，出现暂时性紫蓝色，皮肤苍白或有小泡疹；四肢呈八字形向外张开，划水式躺卧，运动失调及轻度瘫痪；肚脐出血、断尾后可能严重出血，口吐白泡沫，腹泻增多；呼吸困难或呼吸急促、咳嗽，有的呈腹式呼吸和高死亡率。

2.3 育肥猪和公猪

育肥猪和公猪发病较温和，临床症状表现为精神倦怠。育肥猪易感性较差，大多数感染后仅表现为一过性厌食，轻度呼吸困难和咳嗽，表现流感样综合征；公猪发病率低，出现轻度的呼吸道症状，部分猪出现呼吸加快，轻度发热，消瘦等症状；极少数公猪出现双耳皮肤变色，性欲下降，精子数量减少和活力下降。

3 诊断

当出现母猪流产、木乃伊胎、死胎和弱仔的比率明显提高；产后无乳的母猪增加；全群猪在近期有过类似感冒的症状；有猪腹下、双耳、尾部皮肤、会阴有青紫色或蓝色斑块；1月龄内的仔猪出现呼吸道症状；部分仔猪腹泻增多，双耳发红，弱瘦仔猪增多，治疗效果下降，死亡率明显上升等状况时，可考虑感染了PRRSV。但是仅根据临床症状和流行病学特征，很难作出最终诊断，仍需用实验室方法来确诊。

目前PRRS的实验室诊断方法主要有酶联免疫吸附试验（ELISA）、间接免疫荧光试验（IFA）、反转录-聚合酶链反应（RT-PCR）、环介导逆转录等温检测（RT-LAMP）、基因芯片法。罗弦利用重组NSP2蛋白抗原建立了检测PRRSV抗体的ELISA方法，对来源不同的100份血清进行检测，结果表明，建立的ELISA方法的特异性为98.1%，敏感度为91.5%[7]。陈仕龙等应用2株针对PRRSV GP5蛋白的单克隆抗体（McAb-A61，McAb-C65）建立了对PRRSV美洲株、欧洲株和高致病性毒株进行鉴别的IFA，结果显示，McAb-C65能同时识别PRRSV美洲株和HP-PRRSV，而McAb-A61只能识别PRRSV美洲株，2株单抗都不能识别PRRSV欧洲株[8]。肖跃强等根据经典与高致病性PRRSV Nsp2序列，设计了一对引物，建立了PRRSV经典与高致病性毒株RT-PCR的鉴别检测方法，对分离的8株PRRSV进行检测，3株为经典毒株，5株为高致病毒株；对采集的59份确诊病料进行了检测，21份为经典毒株感染，38份为高致病毒株感染，表明所建立的RT-PCR诊断方法具有特异、灵敏、快速等特点，可用于区分PRRSV经典与高致病毒株[9]。赵彦宗等根据PRRSV M基因保守序列6个特异性部位设计了2对引物，建立了PRRSV的环介导逆转录等温检测方法，结果表明，该方法灵敏度比RT-PCR高100倍，特异性强，可在恒温条件下1 h内完成反应，操作简单方便，其扩增效果与两步法RT-PCR方法相比，反应时间缩短，灵敏度提高，可作为猪繁殖与呼吸综合征病毒的快速诊断方法[10]。符芳等应用基因芯片技术将PRRSV、猪瘟病毒（CSFV）、猪细小病毒（PPV）、猪伪狂犬病病毒（PRV）、猪圆环病毒2型（PCV2）的特异cDNA片段作为探针点制于氨基修饰的玻片上，制备了用于同时检测这5种重要猪病病原的基因芯片，用该基因芯片对100份猪全血样品进行检测，阳性检出结果为PRRSV 26份，CSFV 20份，PPV 5份，PRV 2份，PCV2 17份，PRRSV和PCV2混合感染阳性样品17份，结果表明，此试验研制的cDNA芯片探针可以特异地检测这5种猪病病毒，也可以在一次检测中对大量的样品进行病原诊断[11]。

4 防治措施

4.1 加强饲养管理

猪场应加强饲养管理，高温季节应做好猪舍的通风和防暑降温工作，冬天既要注意猪舍的保暖，又要注意通风。提供充足的清洁饮水，保持猪舍干燥，保持合理的饲养密度，降低应激因素。选用优质饲料，严防饲料发霉变质，在饲料中适当添加维生素和微量元素，保证充足的营养，增强猪群抗病能力。

4.2 坚持自繁自养

坚持自繁自养，严把种猪引进关，做好种源控制。一般不从外地引种，严禁从PRRS疫区引种。确需从外地引种者，应尽量选择大型种猪场引种，并严格做好隔离、观察及检疫工作，严防带毒猪进入猪场。引种前应详细了解供种单位种猪的免疫程序和健康状况，供种单位发生疫情时应不引或暂缓引种；如引种需长距离运输，还应对所引种猪做加强免疫；引种后应在场外对引种猪隔离察2～3周，并对猪繁殖与呼吸综合征及一些常规疫病进行抗体检测，有条件的猪场可做病原检测，结果为阴性且无任何临床症状出现，接种有关疫苗且产生免疫力后方可入场饲养。

4.3 生物安全体系的建立和完善

建立健全规模化猪场生物安全措施。饲养员应每天打扫猪舍卫生，保持料槽、水槽、用具及地面清洁。猪舍外环境每2～3周用2%烧碱或生石灰消毒1次。在大门和猪舍入口处设消池，定期更换消毒液。工作人员进入生产区要洗澡、更衣和紫外线消毒，车辆进出要用高压水枪洗或喷雾消毒。猪舍内每周消毒2～3次，天气好时也可带猪消毒。猪场内不可饲养猫、狗等动物，做好灭虫、灭鼠工作。定期驱虫，消灭体内、外寄生虫。在消毒剂的选择方面使用广谱消毒剂，几种消毒剂交替使用。猪场应设立隔离舍，及时隔离、淘汰病猪。对病死猪要严格进行无害化理，严禁宰杀、使用、转运或出售。

4.4 制定科学合理的免疫程序

猪场应根据实际情况制定适合本场的免疫程序，选择合格疫苗，按时免疫。每头猪用1个针头，避免交叉传染；免疫接种时应注意应激反应，随时备有强心剂；接种疫苗时可能出现热原应，但应根据具体情况采取措施。接种疫苗前后1周不宜使用抗病毒药物和消毒剂。

4.5 加强猪场的疫情监控制度

规模化猪场应切实加强猪繁殖与呼吸综合征及其他传染病（如猪瘟、猪伪狂犬、口蹄疫、猪环病毒、细小病毒等）的疫情监控制度，定期对猪场各猪群PRRS抗体水平及PRRSV感染情进行监测。猪场管理人员应根据猪场各方面指标变化，对可疑病猪进行剖检诊断并送实验室确诊，便于及时采取措施。可用ELISA抗体检测试剂盒检测PRRS抗体水平，若猪场各个阶段猪抗体水平差异较大，或者多次检测抗体水平处于不稳定状态（如忽然升高应结合生产实际，及时采取措施），可根据检测结果及时调整猪场的免疫程序，确保免疫效果。

4.6 合理的药物保健方案

合理的药物保健措施可以提高猪群健康状况及抵抗力，可在母猪产前、产后各1周、哺乳猪断奶前后1～2周及猪只转群阶段，按预防量在饲料中适当添加中药及抗菌药物，防止猪群继发菌感染。保证猪群的营养水平，饲喂优质饲料，严防饲料霉变，必要时可添加脱霉剂。PRRS阳猪场应作好各阶段猪群饲养管理，适当添加电解多维，以提高猪群对其他病原微生物的抵抗力，从而降低继发感染发生率和由此造成的损失。

[1] Keffaber K.Reproductive failure of unknown etiology[J].Am As⁃soc Swine Pract Newsl,1989（2）:1-10.

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[10] 赵彦宗,张显浩,余小利,等.猪繁殖与呼吸综合征病毒M基因RT-LAMP检测方法的建立[J].中国畜牧兽医,2009,36（12）:53-65.

[11] 符芳,杨玉菊,陈微晶,等.五种重要猪病病毒基因芯片探针的建立及其应用[J].中国兽医科学,2010,40（5）:501-505.