黄原胶降解及其抗氧化性能研究

2012-11-23 16:23熊小英魏颖隽
天然产物研究与开发 2012年1期
关键词:黄原寡糖过氧化氢

孙 涛,熊小英,魏颖隽,谢 晶,薛 斌

上海海洋大学食品学院,上海201306

黄原胶降解及其抗氧化性能研究

孙 涛*,熊小英,魏颖隽,谢 晶,薛 斌

上海海洋大学食品学院,上海201306

酸性条件下对黄原胶进行氧化降解,透析得到两种黄原胶寡糖,对产物进行FT-IR表征,GPC法测定两种寡糖的分子量分别为7500、10100。考察两种产物对超氧阴离子自由基O-·2和过氧化氢的清除活性以及还原能力,结果表明10100-XG较7500-XG具有更强的抗氧化性能。这可能与黄原胶寡糖活性羟基数目有关。

黄原胶;氧化降解;抗氧化性能

生物体内自由基处于不断产生与清除的动态平衡中。一旦自由基产生过量或者机体清除自由基的能力减弱,就会造成自由基的代谢失衡。许多疾病与自由基的代谢失衡导致的生物大分子损伤有关,其中活性氧如超氧阴离子自由基与癌症、糖尿病、心脑血管疾病等密切相关[1]。因此研究和寻找外源性自由基清除剂保持机体自由基代谢平衡具有重要意义。目前,已发现多种微生物多糖具有抗氧化活性。黄原胶在1952年首先由美国农业部从野油菜假单胞分离得到,因其优良的理化性能而被广泛关注[2]。目前国内外对于黄原胶的研究主要集中在发酵提取及理化性能方面,对其生物活性的研究较少。

黄原胶分子量大,溶解性能差,刚性双螺旋结构将活性基团包围在内部[3],限制了其生物活性,故需对其进行改性,其中降解是改性的重要手段之一[4],降解后的黄原胶具有一定生物活性[5]。本文采用氧化手段对黄原胶进行降解,考察两种不同分子量黄原胶寡糖的抗氧化活性,以期为黄原胶进一步开发研究提供思路。

1 实验部分

1.1 材料

黄原胶(食品级,上海联合食品添加剂有限公司);鲁米诺、DPPH(Sigma公司);其余试剂(均为分析纯,上海化学试剂公司);抗氧化测试所需溶液,由二次蒸馏水配制。

WFZ UV2000型紫外分光光度计(上海合利仪器有限公司);Delta 320型pH计(梅特勒—托利多仪分析仪器上海有限公司);IFFM-D型流动注射化学发光分析仪(西安瑞迈科技有限公司);JB90-D型强力电动搅拌机,METTLER AE200型电子分析天平,JI80-2B型台式离心机。

1.2 黄原胶降解产物制备

将36 g黄原胶(XG)溶于2000 mL浓度为0.4 mol/L的 HCl溶液中,向其中加入 50 mL 30% H2O2,于80℃下降解5d,冷却,用0.2 mol/L NaOH调节溶液pH至7,先通过微孔过滤器过滤(0.45 μm),然后在蒸馏水中透析(7000,14000)6 d,冷冻干燥后分别得到两种黄原胶寡糖(A,B)各约1.0 g。

1.3 测试表征

红外光谱在EQUNOX55傅立叶红外-拉曼光谱仪上进行,采用KBr压片法制样,测定波数范围为400~4000 cm-1,分辨率为0.8 cm-1。

采用GPC法测定黄原胶降解产物的相对平均分子质量及其分布。GPC测试条件如下:柱子: TOSOH BIOSEP G4000SWXL;流动相:0.2 M醋酸钠溶液;色谱仪:Waters 515型凝胶色谱仪;检测器: Waters 2410示差折光检测器;进样量:50 μL;柱温: 40℃。标准物质为:葡聚糖,分子量分别为473000、188000、76900、43200、10500。

1.4 抗氧化性能测定

1.4.2 对过氧化氢的清除

配制pH=7.20的0.2 mol/L Na2HPO4-NaH2PO缓冲溶液。取7支比色管,分别加入浓度为0.1 mol/L的H2O2溶液(磷酸盐缓冲液配)、不同浓度样品溶液各2.0 mL。充分摇匀后于33℃避光静置半小时,在230 nm处测量吸光度Ai。空白组以去离子水代替样品溶液测定A0,对照组以磷酸盐缓冲溶液代替H2O2溶液测定Aj。试验重复三次,并按下式计算样品溶液对过氧化氢的清除率:清除率=[1-(Ai-Aj)/A0]×100%

式中:A0—空白组吸光度Ai—不同浓度样品溶液吸光度Aj—对照组吸光度

1.4.3 还原能力的测定

还原能力测定根据文献[7]进行并稍做改动,具体操作为取8支比色管,分别加入pH=6.60的0.2 mol/L磷酸缓冲液、1%铁氰化钾溶液各2.5 mL,然后向每根管其中加入不同浓度样品溶液2.0 mL。充分混匀后于50℃水浴20 min,取出后立即置于冰水中冷却,然后加入2.5 mL 10%三氯乙酸溶液,混匀后2000 r/min下离心10 min,另取8支比色管,取离心后上层清液2.0 mL并加入去离子水2.5 mL和重新配制的0.1%的三氯化铁溶液0.5 mL,静置十分钟,以去离子水为空白对照,于700 nm处测定吸光度。吸光度的增强表明还原能力的增强。

2 结果与讨论

2.1 原料黄原胶及其寡糖的结构表征

图1是原料黄原胶(XG)以及黄原胶寡糖(A、B)的红外光谱图。由图可知,酸性条件下氧化降解得到的两种分子量寡糖均保留了黄原胶的特征吸收峰[8],即2920 cm-1处-CH2伸缩振动吸收峰;1623 cm-1处丙酮酸酯中-C=O伸缩振动吸收峰;1418 cm-1处羧酸盐中-C-O伸缩振动吸收峰及894 cm-1处β-吡喃糖环中C1-H弯曲振动吸收峰,这表明降解后的黄原胶基本结构单元未被破坏。XG的-OH伸缩振动吸收峰出现在3436cm-1处,而A和B的伸缩振动吸收峰分别出现在3408 cm-1和3417 cm-1处,表明降解后的黄原胶寡糖形成了更多的分子内或分子间氢键,这可能是由于降解使得更多羟基暴露出来[9]。

GPC测试结果表明:两种黄原胶寡糖A、B相对分子质量分别为7500和10100。

2.2 抗氧化性能测定

超氧阴离子自由基是所有活性氧自由基中的第一个自由基,它具有重要的生物功能和与多种疾病有密切关系。图2描述了不同分子量的黄原胶寡糖(7500-XG和10100-XG)对超氧阴离子O清除效果。它们对超氧阴离子O的清除活性随着浓度的升高而逐渐增强,其半抑制浓度IC50(对自由基清除率为50%时所需要的自由基清除剂浓度)分别为0.82和0.36 mmol/L。即对超氧阴离子清除能力为:10100-XG>7500-XG。在该体系中,抗坏血酸对超氧阴离子自由基O的半抑制浓度IC50为0.191 mmol/L。

2.2.2 对过氧化氢的清除

图3 黄原胶寡糖对过氧化氢的清除Fig.3 H2O2scavenging abilities of xanthan oligosaccharides

过氧化氢按结构划分不属于自由基范畴,但其在人体内的损伤作用和自由基类似,并能够形成毒性最大的羟基自由基,引发细胞膜中的不饱和脂肪酸发生过氧化反应,从而产生危害,因此在自由基损伤研究中过氧化氢也被算作一种自由基[10]。图3描述了两种不同相对分子质量的黄原胶(7500-XG和10100-XG)对过氧化氢的清除效果。它们对过氧化氢的清除活性随着浓度的升高而逐渐增强,其对于过氧化氢的半抑制浓度IC50分别为0.19和0.09 mmol/L。即对过氧化氢的清除能力为:10100-XG>7500-XG。在该体系中,抗坏血酸对过氧化氢半抑制浓度IC50为0.0030 mmol/L。

图4 黄原胶寡糖的还原能力Fig.4 Reducing power of xanthan oligosaccharides

2.2.3 还原能力的测定

还原能力是表示抗氧化物质提供电子能力的重要指标。研究表明抗氧化活性和还原能力之间存在着密切的关系[11]。图4描述了不同分子量黄原胶寡糖(7500-XG和10100-XG)的还原能力。由图可知,随着浓度的增加,样品的吸光值也随之增加,还原能力逐渐增强。在0.4 mmol/L时,其吸光度分别为0.06和0.27,即还原能力为:10100-XG>7500-XG。在相同体系下,抗坏血酸浓度为0.4 mmol/L时,吸光度为1.06。

3 结论

在酸性条件下氧化降解黄原胶,经过透析,筛选出两种不同分子量的寡糖,抗氧化性能测试表明,10100-XG>7500-XG,这可能与黄原胶寡糖分子羟基含量有关。本研究为黄原胶寡糖进一步的改性接枝提供依据,为黄原胶的功能化应用研究提供有益的参考。

1 Forrest VJ,Kang YH,McClain DE,et al.Oxidative stress-induced apoptosis prevented by trolox.Free Radic Biol Med,1994,16:675-684.

2 Jansson PE,Kenne L,Lindberg B.Structure of the extracelluar polysaccharide from Xanthomonas campestris.Carbohydr Polym,1975,45:275-282.

3 Guo R(郭瑞),Ding EY(丁恩勇).Structure performance and applications of xanthan gum.Chin Surfact Deterg Cosmet (日用化学工业),2006,36(2):42-45.

4 Jiang LL(江丽丽),Zhang Q(张庆),Xu SA(徐世艾).Reciew of research on xanthan gum degradation.Microbiol(微生物学通报),2008,35:1292-1296.

5 He XY(何晓燕),Zhang LY(张利英),Bai XF(白雪芳),et al.Bioactivity of oligosaccharide produced by depolymerisation of xanthan with xanthan-degrading enzyme.Microbiol(微生物学通报),2005,32(3):87-90.

6 Yao Q(姚倩),Sun T(孙涛),Xu YX(徐轶霞).Preparation of chitosan oligosaccharide derivatives and their antioxidant activity.Nat Prod Res Dev(天然产物研究与开发),2008,20:530-533.

7 Yen GC,Chen HY.Antioxidant activity of various tea extracts in relation to their antimutagenicity.J Agric Food Chem,1995,43:27-32.

8 Su L,Ji WK,Lan WZ,et al.Chemical modification of xanthan gum to increase dissolution rate.Carbohydr Polym,2003,53:497-499.

9 Zhu HW(朱淮武).Spectral Analysis for the Structure of Oraganic Compounds(有机分子结构波谱解析).Beijing: Chemical Industry Press,2008.50-51.

10 Tian YL(田益玲),Chen GH(陈冠华),Wei XY(魏显有).Determination of eliminating ration of Chinese traditional medicines for hydrogen peroxide by fluorescence spectrophotometry.J Anal Chem,2002,30:183-185.

11 Duh PD,Du PC,Yen GC.Action of methanolic extract of mung bean bulls as inhibitors of lipid peroxidation and non-lipid oxidative damage.Food Chemi Toxicol,1999,37:1055-1059.

12 XQ Zha,JH Wang,XF Yang,et al.Antioxidant properties of polysaccharide fractions with different molecular mass extracted with hot-water from rice bran.Carbohydr Polym,2009,78:570-575.

13 Christensen BE,Myhr MH,Smidsrφd O.Degradation of double-stranded xanthan by hydrogen peroxide in the presence of ferrous ions.Carbohydr Polym,1995,280:85-99.

Degradation and Antioxidant Activity of Xanthan Gum

SUN Tao*,XIONG Xiao-ying,WEI Ying-juan,XIE Jing,XUE Bin
College of Food Science and Technology,Shanghai Ocean University,Shanghai 201306

Two xanthan oligosaccharides were prepared by oxidative degradation in acidic condition.The products were characterized by FT-IR,and the molecular weight of the products determined by GPC method was 7500 and 10100,respectively.The antioxidant activities of the xanthan oligosaccharides were investigated by the scavening of superoxide anion,hydrogen peroxide and reducing power.The result indicated that 10100-XG exhibited higher antioxidant activity than 7500-XG.It may be related to the the content of hydroxyl groups.

xanthan;oxidative degradation;antioxidant activity

1001-6880(2012)01-0102-04

2010-10-21 接受日期:2011-03-03

上海市生物医药和农业科技领域重点科技项目(08391911500);2009年上海市优秀学科带头人计划(09XD1402000);上海市教委重点学科建设项目(J50704)

*通讯作者 Tel:86-21-61900363;E-mail:taosun@shou.edu.cn

R285;Q539;TS202.3

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