蒋 梅,杨泽晓,张荣昌,姚学萍,王 印
(1.四川农业大学动物医学院,四川 雅安625014;2.西藏昌都地区动物卫生及植物检疫监督所,西藏 昌都854000)
猪流行性腹泻(PED)是由猪流行性腹泻病毒(PEDV)引起哺乳仔猪腹泻、呕吐、脱水和高致死率为主要特征的一种高度接触性肠道传染病。自1971年首次在英国和比利时报道之后,日本、韩国、加拿大、中国等世界各国相继报道了PED的发生[1-2]。该病对全世界的养猪业造成了严重的经济损失。PEDV属于套式病毒(Nidovirales)冠状病毒科(Coronauiridae)冠状病毒属(Coronauirus),基因组核酸为单股正链RNA,有侵染性,长约28kb[3]。病毒颗粒呈球状,有囊膜和纤突,核衣壳呈螺旋状对称[4]。1988年瑞士的首次报道PED病毒在Vero细胞上培养获得成功之后,我国的学者也先后在PK-15、Vero、ST等细胞上进行了该病毒分离的报道。
日前,四川省某猪场发生大规模的仔猪腹泻性致死性的疾病,临床症状水样腹泻或伴随呕吐(多发于吃食或吮乳后)、脱水;粪稀如水,呈灰黄色或灰色。少数病猪体温升高1℃~2℃,精神沉郁,食欲减退或不食,尤其是繁殖种猪。该病猪年龄越小,临床症状越重。本试验采集发病猪场病死猪的肠系膜淋巴结提取总RNA和DNA进行了RT-PCR和PCR检测 ,并对引起该次大规模腹泻的病料进行了病毒的初步分离纯化,为进一步对该病的防控奠定基础。
1.1 病料的采集 采集病死猪和发病猪的肠系膜淋巴结,以及脱落的肠黏膜用于进一步的(RT-)PCR检测和病毒分离。
1.2 主要试剂和引物 根据文献[5]选择的Vero细胞(由四川农业大学动物医学院生物技术中心提供)来进行病毒分离,DMEM(HyClone)营养液,0.25%胰蛋白酶-EDTA消化液,购自北京索莱宝科技有限公司;RNAiso Plus、RT-PCR反转录试剂盒,购自TaKaRa公司;Tap Mix,购自博迈德科技发展有限公司,DNA Marker,购自TIANGEN公司;DNA胶回收纯化试剂盒,购自北京天恩泽基因科技有限公司;琼脂糖,购自BIOWEST公司;伪狂犬病病毒(PEV)、圆环病毒(PCV2)、细小病毒(PPV)、猪瘟病毒(CSFV)、猪繁殖与呼吸障碍病毒(PRRSV)、猪乙型脑炎病毒(JEV)、猪流行性腹泻病毒(PEDV)的特异性引物分别根据参考文献[6~12],由上海英骏生物技术有限公司合成;PEV、PCV2、PPV、CSFV、PRRSV、JEV 等病毒的阳性血清,由本实验室自制并保存。
1.3 病毒RNA和DNA的提取及检测 取病死猪和发病猪的肠系膜淋巴结,根据RNAiso Plus提取总RNA,按照反转录试剂盒反转录为cDNA,DNA的提取参考文献[13]采用酚-氯仿法。
1.4 猪源其他病毒的(RT-)PCR扩增 以1.3步骤中所得到的cDNA和RNA作为模板,用PEV、PCV2、PPV、CSFV、PRRSV、JEV、PEDV 特异性的引物进行(RT-)PCR扩增。
1.5 病毒分离 取病死猪肠系膜淋巴结和已脱落的肠黏膜剪碎,置于研钵中,滴加5~10倍体积的生理盐水,研磨20min,反复冻融3次后转入EP管中加入青霉素(1 000IU/mL)、链霉素(300μg/mL)37℃水浴1h,之后经4 000r/min离心30min,取上清用0.22μm的滤膜过滤之后用灭菌的EP管收集或直接取0.6mL接种在长成单层的Vero细胞,每隔6~10h观察细胞病变。
1.6 病毒纯化 在Vero细胞上盲传病毒至第25代之后在收集的病毒液里面加入PEV、PCV2、PPV、CSFV、PRRSV、JEV等病毒的阳性血清,37℃温育1h后继续在Vore细胞上继续传代,收集病毒液,进行猪源其他病毒RT-PCR检测。
2.1 病毒RNA和DNA的提取及检测 获取病料中核酸,经PCR或RT-PCR后琼脂糖电泳检测,PEV、PCV2、PPV、CSFV、PRRSV、JEV 等病毒的核酸扩增均为阴性,PEDV出现预期大小的阳性条带664bp,结果见图1。PCR产物的序列测定结果显示同源性98%~99%,判定PEDV核酸阳性。
2.2 病毒的分离培养 用Vero细胞同步接毒后毒株在盲传前5代时细胞都没有发生明显的病变,传至第6代逐渐开始有病变,等传至25代以后细胞接毒24~32h出现了病变:细胞折光度降低、变圆、体积缩小、碎裂、细胞部分脱落见图2。
2.3 病毒的纯化 在第25代之后收集的病毒液里面加入PEV、PCV2、PPV、CSFV、PRRSV、JEV 等病毒的阳性血清,37℃温育1h后继续在Vero细胞上传代培养,同时取传代细胞提取RNA和DNA做PCR或RT-PCR检测,结果显示,除PEDV扩增出约664bp目的条带外,其他病毒均为扩增阴性见图3。
图3 病毒纯化后做猪外源病毒检测结果
本试验从疑似PEDV的发病猪群的病死猪采集肠系膜淋巴结、脱落的肠黏膜等病变组织,采用RT-PCR进行实验室诊断,并进行了PCR产物的序列测定,结果显示,PEDV核酸阳性,同时我们对PEV、PCV2、PRRSV、CSFV、PPV等常见病毒也进行了检测均为核酸阴性,结合其流行病学、临床症状和抗生素治疗效果不佳等方面,判定引起该次仔猪腹泻大规模致死的病原为PEDV。同时本研究采用Vero细胞对其病毒进行了初步分离,并经过RTPCR检测与PEDV扩增目的DNA片段大小相符,为进行一步PEDV防治的相关研究提供科学材料和参考依据。
对于 PEV、PCV2、PRRSV、CSFV、PPV、JEV、PEDV等猪外源性病毒来说,均可以采用猴肾细胞来进行分离[14],因此此次的病毒分离采用Vero细胞;病毒传至第6代开始出现病变,提示病毒已经适应了Vero细胞,可稳定的增殖,传代6次以后进行外源病毒的阳性血清中和试验应该比较合适,同时发现传至第25后代病毒在24h左右就已经发生明显的细胞病变,考虑到试验的可靠性,本研究收集第25代后细胞毒进行(RT-)PCR检测。为保证病毒的分离纯化工作的顺利进行,本试验采用猪源病毒(PEV、PCV2、PRRSV、CSFV、PPV、JEV)阳性血清处理继续传代,一方面提高了病毒纯化效率,大大缩短了分离纯化病毒所需要的时间,另一方面排除PEV、PCV2、PRRSV、CSFV、PPV、JEV 等病毒感染的可能。
[1]Lema A D,Glook R D,Mengelng W L,etal.Diseases of swine[M].6th ed,Ames,lowa State University Press,1986:402-406.
[2]倪艳秀,林继煌,何孔旺,等.猪流行性腹泻研究概况[J].畜牧与兽医,2001,33(1):38-40.
[3]Knipe D M,Hoeley P M,Griffin D E,etal.Fields virology(4th ed)[M].Philadelphia:Lippincott Williams & Wilkins,2001.
[4]陆承平,黄青云,吴润,等.兽医微生物学[M].第4版.中国农业出版社,2007.
[5]钱永清,闻人楚,唐永兰,等.流行性腹泻病毒的分离培养与鉴定[J].上海农业学报,1999,15(2):41-44.
[6]GB/T 18641-2002,伪狂犬病诊断技术[S].
[7]GB/T 21674-2008,猪圆环病毒聚合酶链式反应试验方法[S].
[8]SN/T 1874-2007,猪细小病毒聚合酶链式反应操作规程[S].
[9]DB12/T 377-2008猪瘟病毒反转录-聚合酶链式反应(RT-CR)试验方法[S].
[10]GB/T 18090-2008,猪繁殖与呼吸综合征诊断方法[S].
[11]GB/T 22333-2008,日本乙型脑炎病毒反转录聚合酶链反应试验方法[S].
[12]张坤,何启凯.猪流行性腹泻病毒、猪传染性胃肠炎病毒和猪A群轮状病毒多重RT-PCR检测方法的建立及临床应用[J].畜牧兽医学报,2010,41(8):1001-1005.
[13]曹果清,莫清珊,陈凤仙.酚/氯仿抽提法提取绵羊凝血块中基因组 DNA[J].安徽农业科学,2009,37(34):16771-16772.
[14]第十章 常见的致动物疾病性病毒[DB/OL].http://www.doc88.com/p-28344541422.html.