李 云
大理学院附属医院神经内科 大理 671000
脑卒中是目前全球性的健康问题,是导致成年人残疾的主要原因。已有动物实验发现卒中后神经功能的恢复与脑源性神经营养因子(brain-derived neurotrophic factor,BDNF)水平有关[1]。BDNF是神经营养素家族的重要一员,通过与其特异性的高亲和力受体TrkB结合发挥神经元的营养作用。BDNF能促进并改善神经的可塑性,延缓神经细胞的死亡,诱导神经再生,刺激神经的存活,尤其体现在外周和中枢神经系统的运动和感觉神经元上[2]。但是,有关BDNF与卒中后神经功能缺损程度的关系,临床尚未见报道。本研究分析了45例脑卒中患者(大脑半球出血和梗塞)的临床资料,旨在探讨脑卒中患者神经功能缺损程度和血清BDNF蛋白含量的关系。
1.1 临床资料 病例来源:收集了2010-02-08在大理学院附属医院神经内科连续住院的急性脑卒中(包括脑梗死和脑出血)患者45例,男27例,女18例,年龄34~82岁,平均58.76岁,其中脑梗死26例,脑出血19例。所有患者均符合1995年全国脑血管病学术会议诊断标准,并经神经影像学检查 (头颅CT或MRI)证实。排除标准:脑卒中后病情严重伴有意识障碍不能配合检查者;严重认知功能障碍不能配合检查者;蛛网膜下腔出血及短暂性脑缺血发作者;小脑及脑干病变者;合并严重感染、心肺功能衰竭、肺癌或其他严重躯体疾病不能配合检查者;患者及家属拒绝接受观察者。
1.2 方法 均于入院次日取患者空腹静脉血采用双抗体夹心酶联免疫吸附实验(ELISA)法测定血清BDNF蛋白含量,BDNF试剂盒购自博士德公司。酶标仪为Serial公司Rs-232C型。并测定患者空腹血糖、甘油三脂和胆固醇水平及血常规,由作者医院中心实验室检测。对患者进行神经功能缺损测定:改良爱丁堡+斯堪的纳维亚脑卒中量表(scandinavian stroke scale,SSS),最高45分,最低0分。SSS评分<15为轻度神经功能缺损;SSS评分在15~30为中度神经功能缺损;>30分为重度神经功能缺损。
1.3 统计学处理 采用SPSS 11.5统计软件包处理数据,对数据行正态性和方差齐性检验,符合正态分布的计量资料以均数士标准差表示,血清BDNF与神经功能缺损程度的相关性采用直线相关分析。
2.1 本实验组患者脑卒中后神经功能缺损情况分析 本组患者45例,轻度神经功能缺损者27例(60%);中度神经功能缺损者10例(22.2%),重度神经功能缺损者8例(17.8%)。
2.2 脑卒中患者神经功能缺损程度与血清BDNF蛋白水平的关系研究 直线相关分析发现,脑卒中患者神经功能缺损总体评分与血清BDNF蛋白含量之间存在直线相关关系,Person相关系数为-0.527,P<0.01。说明脑卒中患者神经功能缺损分值与血清BDNF之间存在显著负相关关系,提示神经功能缺损程度越重,血清BDNF含量越低。相关分析还发现,不同程度神经功能缺损组神经功能缺损评分与血清BDNF蛋白含量之间均无相关性(P>0.05)。见表1。
表1 不同程度神经功能缺损组神经功能评分与血清BDNF的相关性分析
脑源性神经营养因子(brain-derived neurotrophic factor,BDNF)是神经营养素家族的重要一员,通过与其特异性的高亲和力受体TrkB结合发挥神经元的营养作用。BDNF主要分布于大脑皮质、海马、基底前脑、纹状体等胆碱能神经元中[3],具有调节神经元存活、细胞迁移和突触功能的作用[4-5]。神经形成和突触重组对于中风后神经功能的恢复具有重要的作用[6-8]。已有文献报道BDNF和NT4具有保护脑梗塞大鼠的脑功能的作用,且BDNF的作用较NT4明显。最新文献报道卒中后大鼠神经功能的恢复与大脑皮质和海马BDNF的增加相伴行。但临床脑卒中患者神经功能的恢复与BDNF的相关性尚未见文献报道。本实验结果发现,脑卒中患者血清BDNF含量与脑卒中患者神经功能缺损程度呈负相关,即神经功能缺损程度越重,患者血清BDNF蛋白含量越低,这与文献结果相符合。本实验结果虽无脑组织中BDNF含量的直接证据,但已知在人体血清和血浆中均存在BDNF[9],且血清BDNF水平较血浆高200倍。上述结果提示外周血BDNF的来源可能与脑组织BDNF的合成密切关联,因此,本实验测定血清BDNF水平具有一定的代表性。
该结果验证了神经功能缺损程度与脑卒中患者血清BDNF蛋白含量之间存在负性相关关系,脑卒中后血清BDNF含量可能是脑卒中严重程度的预测指标之一。这对指导临床治疗、评估脑卒中患者的预后有非常重要的意义。但不同程度神经功能缺损组中神经功能缺损分值与BDNF之间无相关性,可能与本研究中的样本对整个脑卒中患者代表性不足,且未进行多个时间点的动态研究有一定的关系。后续研究可进一步扩大样本量,开展多时间点、多中心研究。
[1]Jiang Y,Wei N,Zhu J,et al.Effects of brain-derived neurotrophic factor on local inflammation in experimental stroke of rat[J].Mediators Inflamm,2010,372-423.
[2]Moltel R,Zheng JQ,Ying Z,et al.Voluntary exercise increases axonal regeneration from sens ory neurons[J].Proc Natl Acad Sci,2004,101(22):8473-8474.
[3]赖红,曾亮,赵海花,等 .老龄大鼠海马结构脑源性神经营养因子表达的改变[J].解剖学杂志,2005,6(28):673-675.
[4]Aguado F,Carmona MA,Pozas E,et al.BDNF regulates spontaneous corre-lated activity at early developmental stages by increasing synaptogenesis and expression of the K+/Clcotransporter KCC2[J].Development,2003,130:1267-80.
[5]Gorski JA,Zeiler SR,Tamowski S,et al.Brain-derived neurotrophic factor is required for the maintenance of cortical dendrites[J].J Neurosci,2003,23:6856-65.
[6]Gomez-Fernandez L.Cortical plasticity and restoration of neurologic functions:an update on this topic[J].Rev Neurol,2000,31:749-56.
[7]Hallett M .Plasticity of the human motor cortex and recovery from stroke[J].Brain Res Brain Res Rev,2001,36:169-174.
[8]Shingo T,Sorokan ST,Shimazaki T,et al.Erythropoietin regulates the in vitro and in vivo production of neuronal progenitors by mammalian forebrain neural stem cells[J].J Neurosci,2001,21:9733-43.
[9]Fujimura H,Altar CA,Chen R.Brain-derived neurotrophic Factor is stored in human platelets and released by agonist stimulation[J].Thromb Haemost,2002,87(4):728-34.