染料木素促成骨样细胞增殖作用及其机制研究

2010-11-29 09:23牛银波李宇华黄海涛孔祥鹤王婷梅梅其炳
中国药理学通报 2010年10期
关键词:木素成骨成骨细胞

牛银波,李宇华,黄海涛,孔祥鹤,王婷梅,梅其炳,

目前,在骨质疏松防治研究领域,通过刺激骨形成防治骨质疏松已成为研究的热点[1]。染料木素是大豆异黄酮的主要成份,研究表明[2]染料木素具有抗骨质疏松的作用,它在抑制骨吸收的同时还可以促进骨形成。

研究表明[3-4],在骨形成过程中骨形成蛋白-2(bone morphogenetic protein-2,BMP-2)及 Wnt/βcatenin信号通路发挥着极其重要的调控作用。BMP-2可促进骨形成和成骨细胞分化[5]。Wnt/βcatenin信号通路中的关键核心分子β-catenin在胞质中积聚转入核内时,可促进体外成骨细胞发育及体内的骨形成[6]。因此,本研究通过不同浓度染料木素对成骨样细胞增殖作用的影响及对BMP-2和β-catenin表达的影响,初步探讨染料木素防治骨质疏松症的机制。

1 材料

1.1 药物和试剂 染料木素(纯度为98%)购于西安斯诺特生物技术有限公司,雌激素(β-estradiol,E2,纯度为98%)购于 Sigma公司,小鼠MC3T3-E1成骨样细胞株购自中国科学院上海生化细胞所细胞库,DMEM培养基(Gibco公司),胎牛血清(四季青生物制剂公司),胰蛋白酶、EDTA、二甲基亚砜(DMSO),MTT(均购于 Sigma公司),ALP试剂盒(南京建成生物公司),BMP-2(Bio worlde公司),β-catenin及 β-actin抗体(Santa Cruz公司)。

1.2 实验分组 实验分为对照组(Control组),雌激素组(E2,1 ×10-9mol·L-1的雌激素),染料木素各组(1 ×10-10、1 ×10-9、1 ×10-8、1 ×10-7、1 ×10-6和1×10-5mol·L-1),分别按浓度配制成相应含药培养液备用。

2 方法

2.1 MTT法检测细胞增殖率 取生长良好、处于对数增生期的MC3T3-E1细胞以5×106·L-1的密度接种于96孔板内,置于37℃、5%CO2培养箱中培养12 h,使细胞充分贴壁。随机分组处理,分别加入含1×10-9mol·L-1雌激素和不同浓度染料木素(1 ×10-10、1 ×10-9、1 ×10-8、1 ×10-7、1 ×10-6和 1×10-5mol·L-1)的培养液 200 μl,对照组仅加入200 μl的含0.54‰ DMSO的培养液,同时设置空白组用于调零,空白组未接种细胞,仅加入200 μl的DMEM培养液,每组设5个平行孔。将96孔板置于培养箱继续培养24、48和72 h。取出培养板,每孔加入5 g·L-1MTT溶液20 μl,再继续孵育4 h后,终止培养。弃去存留的孵育液,每孔加入150 μl的DMSO,于微量振荡仪上低速振荡10 min,使结晶物充分溶解。酶标仪上检测各孔570 nm波长的吸光度。计算细胞增殖率:

2.2 碱性磷酸酶(ALP)活性测定 24孔板每孔接种1×108·L-1细胞,细胞贴壁后换含1×10-9mol·L-1雌激素和不同浓度染料木素(1×10-10、1×10-9、1 ×10-8、1 × 10-7、1 × 10-6和 1 × 10-5mol·L-1)的培养液。加药24和48 h后,按照碱性磷酸酶测定试剂盒说明进行操作,采用DU800型紫外分光光度计测定各组520 nm处吸光度,计算ALP活力单位,同时测定每个样品的蛋白含量,结果用U·mg-1Pro表示。

2.3 Western blot测定 BMP-2 和 β-catenin 的表达 将对照组和染料木素各组(1×10-9、1×10-8和1×10-7mol·L-1)的细胞用细胞刮收集后加入RIPA(含PMSF蛋白酶抑制剂)细胞裂解液提取总蛋白,用Bio-Rad酶标仪进行蛋白定量。蛋白变性后进行聚丙烯酰胺凝胶电泳,转膜。NC膜用5%脱脂牛奶室温封闭3 h,依次加兔抗BMP-2(1∶500)、βcatenin(1∶200)及鼠抗β-actin(1∶500)一抗室温孵育30 min后4℃过夜,TBST洗膜后加1∶5 000稀释的相应HRP标记二抗,室温孵育1 h,TBST及TBS洗膜后,进行化学发光。发光条带进行灰度分析以观察各蛋白表达水平的变化。

2.4 统计学处理 采用SPSS 11.0统计软件中的方差分析(ANOVA)进行数据统计。

3 结果

3.1 MTT细胞增殖试验检测染料木素的促细胞增殖效应 MC3T3-E1细胞经雌激素和不同浓度染料木素处理后,MTT法测各组A值。实验结果显示,与对照组相比,1×10-8、1×10-7、1 ×10-6和 1×10-5mol·L-1的染料木素作用于细胞24 h后均能促进成骨样细胞增殖(P<0.05或P<0.01),染料木素作用于细胞48和72 h后,各浓度染料木素(1×10-10、1 ×10-9、1 ×10-8、1 ×10-7、1 ×10-6和 1 ×10-5mol·L-1)均能促进成骨样细胞增殖(P<0.05或 P <0.01),见Fig 1。

3.2 不同浓度的染料木素对成骨样细胞ALP活性的影响 染料木素作用于细胞24和48 h后,1×10-10mol·L-1浓度组与对照组相比ALP含量无明显变化(P>0.05),但随着浓度的升高,染料木素组ALP含量水平均升高,1×10-9、1×10-6和1×10-5mol·L-1浓度组与对照组相比差异有统计学意义(P <0.05);1×10-8、1 ×10-7mol·L-1浓度组与对照组相比差异有显著性(P<0.01),见Fig 2。

3.3 染料木素对 MC3T3-E1细胞 BMP-2和 βcatenin蛋白表达的影响 不同浓度染料木素(1×10-9、1 ×10-8和1 ×10-7mol·L-1)培养 MC3T3-E1细胞48 h后,通过Western blot检测MC3T3-E1细胞BMP-2和β-catenin蛋白的表达。结果表明,染料木素可使细胞中BMP-2和β-catenin表达水平升高,且呈浓度依赖性变化,见Fig 3。

Fig 1 Effect of genistein on the proliferation of MC3T3-E1 cells(n=5)*P <0.05,**P <0.01 vs control

Fig 2 Effect of genistein on the ALP of MC3T3-E1 cells(n=3)*P <0.05,**P <0.01 vs control

4 讨论

雌激素虽然能有效地防止老年或绝经妇女的骨丢失,保持骨量,减少骨折发生,但同时也增加了用药者乳腺癌和子宫内膜癌等的患病风险[7]。因此,寻找天然物质进行替代治疗,降低治疗带来的副作用十分必要。染料木素是豆类及其制品中含量较多的一种植物雌激素,其结构与雌激素相似,同时它具有抗骨质疏松的作用,在抑制骨吸收的同时还可以促进骨形成[8]。

成骨细胞是间质起源的单个核细胞,是骨形成的主要功能细胞,负责骨基质的合成、分泌和矿化[9]。ALP是成骨细胞分化时所分泌的酶,是其分化和功能的标志,ALP的活性反映了成骨细胞的成骨活性[10]。本实验结果表明,不同浓度染料木素作用于成骨样细胞MC3T3-E1后可促进成骨样细胞增殖和分化,其促成骨细胞增殖分化作用虽弱于雌激素,但对子宫的副作用明显弱于雌激素[7,11]。BMPs可诱导骨髓基质干细胞分化为成骨细胞,现已证明,BMPs参与调节细胞的增殖、分化和凋亡,在成骨细胞的分化过程中发挥的作用尤为重要[12]。大量临床前及临床研究表明重组的BMPs可以促进动物和人的骨组织再生。目前,BMP-2已经获准临床使用。本实验结果显示染料木素可促进BMP-2表达。Wnt/β-catenin信号通路在骨形成和骨代谢过程中发挥着极其重要的调控作用,其通路中的关键分子GSK3β的底物 β-catenin在胞质中积聚并穿梭进入核内时,可刺激Wnt信号下游一系列靶基因的转录,从而发挥调控细胞生长,促进体外成骨细胞发育及体内的骨形成[13-14]。染料木素可以上调β-catenin的表达。表明染料木素可同时通过BMP-2和Wnt/β-catenin信号通路促进成骨样细胞增殖与分化。

Fig 3 Effect of genistein on protein level of β-catenin and BMP-2 in MC3T3-E1 cells(n=3)*P <0.05,**P <0.01 vs control

综上所述,染料木素具有促成骨样细胞增殖、分化的作用,其与 BMP-2和 Wnt/β-catenin信号通路的激活密切相关。这将为染料木素开发成新型抗骨质疏松药物提供实验依据。

[1]Canalis E,Giustina A,Bilezikian J P.Mechanisms of anabolic therapies for osteoporosis[J].N Engl J Med,2007,357(9):905-16.

[2]季煜华,曾耀英,俞 瑜.染料木黄酮对生长板软骨细胞胶原合成的影响及其机制[J].中国药理学通报,2006,22(8):927-9.

[2]Ji Y H,Zeng Y Y,Yu Y.The effect and mechanism of genistein on collagen synthesis of growth plate chondrocytes[J].Chin Pharmacol Bull,2006,22(8):927-9.

[3]Krishnan V,Bryant H U,MacDougald O A.Regulation of bone mass by Wnt signaling[J].J Clin Invest,2006,16(5):1202-9.

[4]Bennett C N,Longo K A,Wright W S,et al.Regulation of osteoblastogenesis and bone mass by Wnt10b[J].Proc Natl Acad Sci USA,2005,102(9):3324-9.

[5]Canalis E,Economides A N,Gazzerro E.Bone morphogenetic proteins,their antagonists,and the skeleton[J].Endocr Rev,2003,24(2):218-35.

[6]Kulkarni N H,Onyia J E,Zeng Q,et al.Orally bioavailable GSK-3alpha/beta dual inhibitor increases markers of cellular differentiation in vitro and bone mass in vivo[J].J Bone Miner Res,2006,21(6):910-20.

[7]Rossouw J E,Anderson G L,Prentice R L,et al.Risks and benefits of estrogen plus progestin in healthy post-menopausal women:principal results from the women′s health initiative randomized controlled trial[J].J Am Med Assoc,2002,288(3):321-33.

[8]Wong R W,Rabie A B.Effect of genistein on bone formation[J].Front Biosci(Elite Ed),2010,2:764-70.

[9]徐昌水,梁尚栋.骨骼系统P2受体的功能与炎症性骨疾病[J].中国药理学通报,2009,25(4):429-33.

[9]Xu C S,Liang S D.Function of P2 receptors in skeletal system and inflammatory disease of bone[J].Chin Pharmacol Bull,2009,25(4):429-33.

[10]范焕琼,崔 燎.丹酚酸B对体外培养新生大鼠颅骨成骨细胞的影响[J].中国药理学通报,2008,24(7):978-9.

[10]Fan H Q,Cui L.Effects of salvianolic acid B on osteoblast in vitro[J].Chin Pharmacol Bull,2008,24(7):978-9.

[11]杨丽娜 ,段 颖 ,张英福,等.雌激素及植物雌激素对去卵巢大鼠子宫组织VEGF表达和形态的影响[J].中国药理学通报,2009,25(8):1041-4.

[11]Yang L N,Duan Y,Zhang Y F,et al.Effects of estrogen and phytoestrogens on the VEGF expression and morphology in uterine tissue of ovariectomized rats[J].Chin Pharmacol Bull,2009,25(8):1041-4.

[12]Yamaguchi A,Sakamoto K,Minamizato T,et al.Regulation of osteoblast differentiation mediated by BMP,Notch,and CCN3/NOV[J].J Dent Sci Rev,2008,44(1):48-56.

[13]Tulac S,Nayak N R,Kao L C,et al.Identification,characterization,and regulation of the canonical Wnt signaling pathway in human endometrium[J].J Clin Endocrinol Metab,2003,88(8):3860-6.

[14]Nuttall M E,Gimble J M.Is there a therapeutic opportunity to either prevent or treat osteopenic disorders by inhibiting marrow adipogenesis[J]?Bone,2000,27(2):177-84.

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