规模化猪场PRRS 弱毒苗和灭活苗免疫N 蛋白抗体水平评估

伍宏彪 松溪县动物疫病预防控制中心 福建松溪 353500

猪繁殖与呼吸综合征病毒（Porcine reproductive and respiratory syndrome virus，PRRSV） 主要引起仔猪出现呼吸系统疾病和妊娠母猪出现繁殖障碍，造成怀孕母猪流产、 产木乃伊胎等为主要特征的免疫抑制性疾病， 每年会给整个养猪业造成很大的经济损失和资源浪费[1-6]。 目前市面上可供使用的PRRS疫苗有弱毒活疫苗和灭活疫苗，2 种疫苗在猪场中的免疫效果并不理想，交叉保护能力参差不齐，抗体水平也不高[7-8]。 本研究根据不同规模化猪场的实际生产情况结合各猪场具体的检测数据进行统计分析， 及时发现猪场中免疫程序存在的问题和潜在风险，分析可能产生的原因，并提供合理化的防控建议和免疫程序，选择合适的疫苗进行免疫接种，以期为猪场PRRS 防控及净化提供参考与指导[9-13]。

1 材料与方法

1.1 试验动物 在4 个不同猪场随机选取体重、体型和健康状态基本一致、相同日龄（35 日龄）、同一批次、相同品种仔猪各10 头，均未免疫接种过任何PRRS 疫苗。

1.2 疫苗 选取市面上主流使用的PRRS 疫苗，包括2 款灭活疫苗和2 款弱毒疫苗，其中A、B 为弱毒疫苗，C、D 为灭活疫苗。

1.3 检测所用试剂盒 使用市面上普通的PRRS抗体检测试剂盒。

1.4 方法

1.4.1 动物分组 40 头35 日龄仔猪均未免疫过PRRS 疫苗，健康状态良好。4 个猪场仔猪分为4 组，其中2 组分别免疫A、B 弱毒活疫苗， 剂量1 头份/头；另2 组分别免疫C、D 灭活疫苗，剂量均为2 mL/头。

1.4.2 临床观察 观察、 记录各猪只疫苗免疫后的应激情况、饮食状况、精神状态、临床表现和免疫副反应等情况。

1.4.3 样品采集 在接种后0 d、7 d、14 d、21 d 和28 d 采集各试验仔猪血样， 分离后的血清低温保存。

1.4.4 抗体检测及结果判定 按照试剂盒说明书进行操作，PRRS 抗体检测成立条件是阳性对照OD值≥0.15；阴性对照OD 值≤0.15。 样品阳性判断标准是S/P 值≥0.40；阴性判断标准是S/P 值<0.40。

2 结 果

2.1 PRRS 弱毒疫苗和灭活疫苗免疫抗体水平免疫接种后0 d，4 个试验组仔猪的母源抗体平均S/P 值均在0.4 以下；免疫接种14 d 后，4 个试验组仔猪N 蛋白抗体的平均S/P 值都稳步提升； 免疫接种21 d 后，C、D 试验组平均S/P 值仍处于上升水平，但A、B 试验组N 蛋白抗体平均S/P 值却呈现下降趋势(见表1、图1)。A 组与B 组相比，A 组的平均值更高，但是波动比较大，整体水平并不稳定；C 组与D 组相比，D 组的抗体水平比C 组更高且更稳定； 弱毒苗（A 和B）的效果普遍比灭活苗（C 和D）好，抗体水平更高，维持的时间更长。

图1 各免疫组不同时间点抗体S/P 值曲线

表1 各组PRRS 弱毒苗和灭活苗免疫抗体水平（S/P 值）

2.2 免疫副反应观察记录 免疫PRRS 灭活疫苗的试验组，没有发现明显不良反应；免疫PRRS 弱毒活疫苗的试验组，出现部分猪食欲下降、精神沉郁和体温有轻微上升等副反应，但很快都可恢复正常。

3 讨 论

试验结果显示， 在不同猪场免疫PRRS 弱毒疫苗和灭活疫苗，免疫后21 d，4 组试验猪的平均抗体水平均达到比较高的水平；免疫后28 d，免疫弱毒疫苗的试验组，抗体水平开始出现下降趋势，而免疫灭活疫苗的试验组，抗体水平还呈上升趋势；并且在免疫后14 d，4 组试验猪的抗体阳性率均达到90%以上。通过比对免疫抗体平均水平、开始产生抗体的时间及猪群抗体水平的稳定性， 表明免疫弱毒活疫苗试验组的免疫效果明显好于免疫灭活疫苗试验组， 同时免疫弱毒活疫苗试验组产生抗体的速度要比灭活疫苗快，且抗体水平的整齐度更好。免疫弱毒活疫苗21 d 后，4 组试验组仔猪的PRRS 抗体阳性率均超过80%，部分试验组的抗体阳性率甚至达到100%。弱毒活疫苗只需要免疫1 次（1 头份/头）就可以达到比较高的抗体阳性率， 可在接种后14～28 d产生免疫力，疫苗免疫的有效期在4 个月左右；而灭活疫苗需要免疫2 次才能达到免疫弱毒活疫苗的抗体阳性率。但是灭活疫苗相较于弱毒活疫苗，具有安全性更高、副反应更小、免疫应答水平较好等优点。由于猪场免疫弱毒苗容易与野毒发生重组， 导致毒力返强，所以，要结合猪场的实际情况选用弱毒苗。在PRRS 流行地区的猪场， 应该首先考虑免疫弱毒活疫苗。对于种猪场、受该病疫情威胁不大的猪场可以选择使用灭活疫苗，达到净化PRRS 的目的。免疫疫苗前， 要加强猪群的饲养管理， 提高猪群健康状态，减少应激反应，使疫苗免疫达到最佳效果。