不同分子量壳聚糖涂膜对采后西番莲果实贮藏品质的影响

黎星延，黄丽金，刘汉美，陶守奎，姜 悦，於智前，陈叶珍，潘永贵

（海南大学食品科学与工程学院，海南海口 570228）

西番莲（Passiflora edulisSims.）又称百香果，因其汁液中含有香蕉、菠萝、草莓、苹果、柠檬等多种水果的香气得名，同时果实中富含糖类、维生素等物质[1-3]。目前全球有大约400 余个西番莲品种，但仅有50 余个品种可以食用，其中紫色西番莲和黄色西番莲广泛作为商业化生产的品种[4]。尽管目前西番莲种植面积在我国不断扩大，但西番莲作为小宗水果，国内外对其采后保鲜研究均严重不足。目前，西番莲最大的采后问题在于极易失水皱缩软化且容易受到病原菌侵染而快速腐烂，常温下2～3 d 就会失去商品价值[5]，由此造成西番莲果实采后损失率预估高达50%以上[6]。涂膜处理对于降低果实采后水分损失、减缓果实成熟衰老以及减少病原菌侵染具有重要的意义，而且还可以提高果实商品价值。同样许多研究表明适宜的涂膜处理有助于减少西番莲果实采后水分损失。用巴西棕榈蜡、橡胶乳和2%木薯淀粉溶液对黄果西番莲进行涂膜表明，橡胶乳可以有效地降低西番莲质量损失和皱缩指数，增加西番莲货架寿命3～4 d[7]。而在Da 等[8]的研究中表明，8%～21%浓度的巴西棕榈蜡可以有效地减少采后西番莲果实失重，减少萎蔫和腐烂。同时，涂膜剂的浓度也会产生不同的影响。使用1%，2%和3%海藻酸钠对西番莲果实涂膜发现2%海藻酸钠涂膜能够降低果实的失重率和皱缩指数，较好地维持了果实的贮藏品质[9]。

壳聚糖是一种安全且环境友好的水溶性低聚糖，具有良好的成膜性能和抑菌活性，是一种优良的可食用性涂层材料[10]，目前在采后果蔬保鲜中已有广泛应用。壳聚糖在果实表面成膜之后能够在一定程度上抑制表皮上的气孔、皮孔与外界交换气体、物质的能力，从而减少果实的水分流失，降低呼吸强度[11-12]。壳聚糖的抑菌效果不仅与其浓度有关，同时与脱乙酰度和分子量密切相关。Jongsri 等[13]发现与40、270 kDa 壳聚糖涂膜相比，360 kDa 壳聚糖涂膜可以维持芒果贮藏期间较低的可溶性固形物含量和较高的可滴定酸含量，延缓芒果果实的成熟，从而延长货架期。在南瓜果实上，分子量为391 kDa 壳聚糖涂膜的果实腐烂率达到20%，而采用其降解生成的122 kDa 壳聚糖涂膜的南瓜果实在贮藏期间没有发生腐烂[14]。类似地，在香蕉果实中，65、265 和540 kDa 壳聚糖涂膜虽然均能延缓果实失重率和硬度的上升，但540 kDa 壳聚糖涂膜的保鲜效果更好[15]。

因此，本研究以“钦蜜9 号”西番莲果实为试材，研究不同分子量的壳聚糖涂膜在相同浓度条件下对采后西番莲果实贮藏品质的影响，以期为壳聚糖涂膜在采后西番莲果实贮藏保鲜中的应用提供理论依据。

1 材料与方法

1.1 材料与仪器

“钦蜜9 号”西番莲果实 可溶性固形物含量为21.5%～22%，采自海南省海口市石山镇的商业果园。选取外观整齐，大小一致，无病虫害和机械损伤的果实，于采收后的2 h 内运抵海南大学食品科学与工程学院热带果蔬采后生物与技术研究实验室，于低温下放置以除去田间热，待用；壳聚糖 上海麦克林生化科技有限公司；咪鲜胺锰盐 美国富美实公司；氢氧化钠 广州化学试剂厂；红菲咯啉 阿拉丁生化科技有限公司；无水乙醇 国药集团；所有试剂均为分析纯。

HWS-300 智能生化培养箱 浙江托普仪器有限公司；PAL-1 数显糖度计 日本Atago 公司；HH-4 数显恒温水浴锅 常州奥华仪器有限公司；TGL-16M 高速冷冻离心机 上海卢湘仪离心机仪器有限公司；Synergy HT 酶标仪 美国BioTek 公司。

1.2 实验方法

1.2.1 原材料处理 将西番莲果实用0.1%（w/v）的咪鲜胺锰盐溶液浸泡2 min 进行表面消毒，取出自然晾干后随机分成6 组，每组90 个果实。涂膜操作参考陈洪彬等[16]的方法稍作修改，分别将西番莲果实在蒸馏水、30、50、100、150 和200 kDa 分子量的壳聚糖溶液中（1.5%，w/v）浸泡涂膜30 s，取出晾干后装入带孔的保鲜盒（32.5×22.5×10.3 cm）中，每个盒子中装10 个果实，将其放入28 ℃，RH 为85%±5%下贮藏12 d，每3 d 取样并测定有关指标，所有实验均重复3 次。

1.2.2 测定指标及方法

1.2.2.1 皱缩指数和失重率 皱缩指数参照帅良等[9]的方法稍作修改。皱缩度：0，无皱缩；1，0%～20%果皮皱缩；2，20%～40%果皮皱缩；3，40%～60%果皮皱缩；4，60%～80%果皮皱缩；5，80%～100%果皮皱缩。分别根据以下公式计算皱缩指数（1）和失重率（2）：

1.2.2.2 转黄指数 根据金童等[17]的办法并稍作修改。转黄级别：1，0%～20%果皮面积为黄色；2，20%～40%果皮面积为黄色；3，40%～60%果皮面积为黄色；4，60%～80%果皮面积为黄色；5，80%～100%果皮面积为黄色。根据公式（3）计算转黄指数：

1.2.2.3 腐烂率 根据公式（4）计算腐烂率：

1.2.2.4 可溶性固形物（TSS）含量测定 取过滤后的西番莲果汁用数显糖度计测定可溶性固形物含量，结果用%表示。

1.2.2.5 可滴定酸和可溶性糖含量测定 取3 mL 西番莲果汁用蒸馏水定容至25 mL，取混合液在25 ℃，8000×g 条件下离心10 min，取2 mL 上清液与30 mL蒸馏水于烧杯中用0.01 mol/L NaOH 溶液滴定至pH 计读数为8.2，结果以柠檬酸计，用%表示。

可溶性糖含量的测定参照曹建康等[18]的方法并稍作修改。将西番莲果汁用蒸馏水稀释，然后将混合液放置在95 ℃水浴锅中静置10 min，随后在25 ℃，8000×g 条件下离心10 min，取上清液为样品待测液。将0.2 mL 样品待测液与0.2 mL 蒸馏水、0.1 mL蒽酮-乙酸乙酯溶液（2%）与1 mL 浓硫酸混匀，将反应体系放置在95 ℃下反应10 min，冷却后以蒸馏水作为空白，测定其在620 nm 处的吸光值，结果采用%表示。

1.2.2.6 维生素C（VC）含量测定 参照陈洪彬等[16]的方法，稍作改动。取1 mL 西番莲果汁与1 mL 预冷的TCA（三氯乙酸）溶液（5%）混匀，然后在4 ℃，8000×g 条件下离心10 min，收集上清液加入8 mL的TCA 溶液混匀，作为样品待测液。取1 mL 样品待测液与1 mL TCA 溶液、1 mL 无水乙醇、0.5 mL磷酸-乙醇（0.4%）、1 mL BP（红菲咯啉）-乙醇（0.5%）和0.5 mL 三氯化铁-乙醇溶液（0.03%）混匀，将反应体系放置在30 ℃水浴锅中孵育60 min，待反应体系冷却至室温，以TCA 溶液作为空白，测定其在534 nm 处的吸光值，VC含量以mg/100 g 表示。

1.2.2.7 类黄酮和总酚含量 类黄酮含量的测定参照张新业等[19]的方法并略作修改。取2 mL 西番莲果汁与1 mL 预冷的60%乙醇溶液混匀，在4 ℃，8000×g 条件下离心10 min，收集上清液作为样品待测液。将0.24 mL 样品待测液与0.06 mL 亚硝酸钠（5%）、0.06 mL 硝酸铝（10%）、0.48 mL 的氢氧化钠溶液（4%）和0.36 mL 60%乙醇溶液混匀，将其放置在37 ℃下静置45 min，冷却后离心，以60%乙醇溶液作为空白，测定上清液在470 nm 处的吸光值，类黄酮含量以mg/g 表示。

果汁总酚含量的测定参照Su 等[20]的方法并略作修改。取2 mL 西番莲果汁与4 mL 预冷的80%甲醇溶液混匀，在4 ℃，8000×g 的条件下离心10 min，收集上清液作为样品待测液。将0.5 mL 样品待测液与4 mL 80%甲醇溶液、0.5 mL 福林酚混匀，静置5 min 后再加入5 mL 碳酸钠溶液（7%），然后在25 ℃下避光保存1 h，以80%甲醇溶液作为空白，最后测定反应体系在765 nm 处的吸光值，总酚含量以mg/g 表示。

1.3 数据处理

所有指标测定均至少重复3 次，结果以平均值±标准差表示。采用IBM SPSS Statistics 22（SPSS Inc，Chicago，IL，USA）软件进行数据处理和统计分析。采用Origin 2023（Northampton，MA，USA）软件进行作图，应用单因素方差分析（One-way ANOVA）在P<0.05 水平上检测差异显著性。

2 结果与分析

2.1 不同分子量壳聚糖涂膜对采后西番莲果实皱缩指数和失重率影响

如图1 所示，随着贮藏时间延长，所有组别的西番莲果实皱缩指数均呈上升趋势。其中，未经壳聚糖涂膜的皱缩指数上升最快，其果实在第3 d 就出现明显皱缩，第3 d 的皱缩指数已经达到3.7。并且在贮藏前9 d 均显著（P<0.05）高于经过壳聚糖涂膜的果实，第9 d 时未涂膜组果实皱缩指数达到5，其余涂膜组果实的皱缩指数在4.2 左右，涂膜组与未涂膜组间存在显著差异（P<0.05）；经壳聚糖涂膜的果实，前6 d 中经30、50 和100 kDa 涂膜的果实之间皱缩指数没有显著差异（P>0.05），150 和200 kDa 之间也没有显著差异（P>0.05），但前者的皱缩指数显著（P<0.05）大于后者。而在随后的贮藏期间，经过不同分子量壳聚糖涂膜的果实之间皱缩指数趋于一致。上述结果表明，在一定的贮藏期内，壳聚糖分子量增大，有助于降低西番莲果实失水皱缩，但随着贮藏时间延长，不同分子量壳聚糖之间控制皱缩能力将逐渐减弱。

图1 不同分子量壳聚糖涂膜对采后西番莲果实贮藏期间皱缩指数影响Fig.1 Effect of chitosan coating with different molecular weights on the shrinkage index in postharvest passion fruit during storage

采后果实因为蒸腾作用和呼吸作用，果实内部的水分经过表皮的皮孔与气孔不断散发到果实外部，造成果实重量减轻[21]。由图2 所示，虽然随着贮藏时间延长，各组西番莲果实失重率均增加，但在整个贮藏期间，未经壳聚糖涂膜的果实失重率始终快速上升，并显著地高于经过涂膜的果实（P<0.05）。而对于不同分子量壳聚糖而言，从第6 d 开始，不同分子量壳聚糖涂膜的果实间失重率出现显著性（P<0.05）差异。其中在第6 d 和第9 d，30 和150 kDa 涂膜的果实失重率最低，分别比未涂膜组低了3.45%、3.78%（第6 d）和3.46%、3.41%（第9 d），其次是100 和200 kDa 涂膜的果实。但到贮藏结束时，150 和200 kDa 壳聚糖涂膜的果实失重率仍然显著（P<0.05）地低于其余果实。类似地，在香蕉果实中，经540 kDa 壳聚糖涂膜的果实失重率低于265 和65 kDa 的果实[15]。同时，统计分析表明，皱缩指数与失重率呈极显著正相关（r=0.910**）。该结果进一步证明了壳聚糖涂膜可以抑制果实水分蒸发，减少果实重量减轻，而且高分子量的壳聚糖涂膜延缓失重率效果更好，并且其减轻西番莲果实皱缩主要与控制失水有关。

图2 不同分子量壳聚糖涂膜对采后西番莲果实贮藏期间失重率影响Fig.2 Effect of chitosan coating with different molecular weights on the weight loss rate in postharvest passion fruit during storage

2.2 不同分子量壳聚糖涂膜对采后西番莲果实转黄指数影响

随着果实成熟衰老，西番莲果实表皮色泽逐步由绿变黄。由图3 可知，所有西番莲果实转黄指数在贮藏期间呈上升趋势。同样，未经壳聚糖涂膜的果实转黄最快，其在第9 d 时所有果实已全部转黄。而经不同分子量涂膜的果实则一直推迟到第12 d 才全部转黄。而经壳聚糖涂膜果实中，30 和50 kDa 涂膜的果实转黄指数虽然在前9 d 均低于对照果，并且第6 d 时前者涂膜的果实转黄指数仍比同期贮藏的对照果低14%左右，但到第9 d 时与对照果之间已经无显著性差异（P>0.05）。而分子量较大的涂膜果实，其转黄指数则进一步得到减缓，尤其是200 kDa涂膜的果实在前6 d 转黄指数最低，为44%，但与100 kDa 的果实间无显著性差异（P>0.05）。到第9 d时，100、150 和200 kDa 涂膜的果实间已均无显著性差异（P>0.05）三组果实的转黄指数分别为84%、86%和84%。同样，壳聚糖涂膜延缓果实转色已在芒果[22]、番茄[23]、无花果[24]和柚子[25]等果实上得到证实。但本研究进一步表明，不同分子量的壳聚糖其控制果实转黄能力存在差异，即高分子量壳聚糖更有助于减缓果实转黄，从而延缓了西番莲果实成熟衰老。统计分析表明，西番莲果实转黄指数与皱缩指数（r=0.935**）和失重率（r=0.666**）均呈现极显著（P<0.01）正相关，表明壳聚糖涂膜减缓了西番莲果实皱缩和失重与延缓了果实成熟衰老有关。

图3 不同分子量壳聚糖涂膜对采后西番莲果实贮藏期间转黄指数影响Fig.3 Effect of chitosan coating with different molecular weights on the yellowing index in postharvest passion fruit during storage

2.3 不同分子量壳聚糖涂膜对采后西番莲果实腐烂率影响

如图4 所示，未经壳聚糖涂膜的和经30 和50 kDa壳聚糖涂膜的西番莲果实从第6 d 就开始发生腐烂，但对照组的腐烂率比30 和50 kDa 涂膜组高了10%；而经100 kDa 涂膜的果实推迟到第9 d 开始发生腐烂。到贮藏结束时，对照组的果实完全发生腐烂，30 和50 kDa 涂膜组的腐烂率为50%，100 kDa涂膜组仅发生轻微腐烂（20%）；而150 和200 kDa 涂膜组直到贮藏末期均未发生腐烂。表明壳聚糖涂膜具有明显地抑制果实腐烂作用，并且随着分子量的提高，其抑制效果也逐步增强。在采后番茄果实中，同样发现壳聚糖浓度相同条件下，高分子量壳聚糖涂膜的番茄果实发病率低于低分子量涂膜的果实[26]。

图4 不同分子量壳聚糖涂膜对采后西番莲果实贮藏期间腐烂率影响Fig.4 Effect of chitosan coating with different molecular weights on the decay rate in postharvest passion fruit during storage

2.4 不同分子量壳聚糖涂膜对采后西番莲果实TSS 含量影响

如图5 所示，对照组的TSS 含量在第6 d 达到峰值，而50、150 和200 kDa 涂膜组的TSS 含量则推迟到第9 d 达到峰值。此时，50、150 和200 kDa涂膜组的TSS 峰值与贮藏初期相比分别高了4.56%、4.19%、2.23%和3.26%。前6 d，除了150 kDa 涂膜的果实，其余涂膜组的TSS 含量与对照组间没有显著差异（P>0.05）；随后直到贮藏结束，30 和200 kDa涂膜组的TSS 含量比对照组分别高了2.34%和3.66%（P<0.05），其余组别间则没有显著差异（P>0.05）。表明30 和200 kDa 涂膜组的西番莲果实能够较好地维持TSS 的含量，可能是因为30 kDa 壳聚糖的分子量较低，持水性较好，成膜性好于高分子量壳聚糖，200 kDa 分子量较高，透气性差，二者均能阻止西番莲果实与外界的气体交换，延缓果实衰老，从而保持较高的TSS 含量[27-28]。在葡萄果实的保鲜中，150 和250 kDa 分子量的壳聚糖涂膜延缓TSS含量的下降程度优于50 和500 kDa 分子量的壳聚糖涂膜[29]，说明在不同的果实中延缓TSS 含量下降的壳聚糖分子量有所不同。

图5 不同分子量壳聚糖涂膜对采后西番莲果实贮藏期间TSS 含量影响Fig.5 Effect of chitosan coating with different molecular weights on the content of TSS in postharvest passion fruit during storage

2.5 不同分子量壳聚糖涂膜对采后西番莲果实可滴定酸和可溶性糖含量影响

如图6 所示，对照组和低分子量涂膜的果实（30～100 kDa）其可滴定酸含量在前3 d 出现快速下降，相比0 d 分别下降了19.46%、17.93%、19.61%和18.57%；而150 和200 kDa 涂膜组则在第3 d 至第6 d 出现一个较快速下降。但随后所有果实可滴定酸含量下降均趋缓，并且从第6 d 到贮藏结束，100 和200 kDa 涂膜的西番莲果实可滴定酸下降较快，而其余组别均保持了较高的可滴定酸，并且这些组别间在第6 d 和第9 d 差异不显著（P>0.05）。表明较低分子量和较高分子量的壳聚糖均有助于保持较高的可滴定酸。而在短期贮藏内，高分子量壳聚糖更能保持较高的可滴定酸。类似的结果在无花果[24]、滇刺枣[30]等果实上均有报道。其原因可能是与壳聚糖涂膜降低了果实呼吸速率，从而减少了有机酸消耗[24,30-31]。

图6 不同分子量壳聚糖涂膜对采后西番莲果实贮藏期间可滴定酸含量影响Fig.6 Effect of chitosan coating with different molecular weights on the content of titratable acid in postharvest passion fruit during storage

西番莲果实中的可溶性糖主要是葡萄糖、果糖和蔗糖[32]。如图7 所示，西番莲果实的可溶性糖含量在贮藏期间则呈先升后降趋势。对照组的可溶性糖含量在第3 d 达到峰值，30、100 和200 kDa 涂膜组在第6 d 达到峰值，而50 和150 kDa 涂膜组的可溶性糖含量则推迟到第9 d 才达到峰值，各组峰值分别是贮藏初期的1.09（对照组）、1.07（30 kDa）、1.04（50 kDa）、1.08（100 kDa）、1.09（150 kDa）和1.10（200 kDa）倍。可溶性糖前期含量升高与多糖的降解有关，并且与呼吸作用密切相关。该研究结果表明，壳聚糖涂膜可以延缓糖代谢，减缓可溶性糖的消耗，并且同样呈现出较低分子量的（50 kDa）和较高分子量（150 kDa）的壳聚糖延缓性最好。与本研究结果不同，不同分子量涂膜组的壳聚糖在维持南瓜可溶糖含量方面则没有显著性差异[14]。

图7 不同分子量壳聚糖涂膜对采后西番莲果实贮藏期间可溶性糖含量影响Fig.7 Effect of chitosan coating with different molecular weights on the content of soluble sugar in postharvest passion fruit during storage

2.6 不同分子量壳聚糖涂膜对采后西番莲果实VC 含量影响

VC含量是衡量果实贮藏品质的指标之一，如图8 所示，所有西番莲果实VC含量在贮藏期间呈下降趋势。对照组、30 和50 kDa 涂膜组的VC含量在前3 d 迅速下降，分别下降到贮藏初期的37.32%、74.90%和80.39%，随后趋于平缓；其余组果实的VC含量在贮藏期间下降缓慢，并且在整个贮藏过程中保持了较高的VC含量。尤其是经150 kDa 涂膜的西番莲果实除了第3 d 略低于100 kDa 涂膜的果实外，在其余贮藏期间均处于最高。到第12 d 贮藏结束时，对照组的VC含量仅为贮藏初期的59.12%，而涂膜组的VC含量仍然显著（P<0.05）高于对照组，经150 kDa 涂膜的果实VC含量是对照组的1.25倍。在‘Anykšta’品种猕猴桃果实中，中分子量壳聚糖涂膜组在贮藏末期维持的VC含量高于低分子量涂膜组，而在‘VIR2’品种猕猴桃果实中，低分子量壳聚糖涂膜组的果实VC含量最高[33]。表明在不同的果实中，不同分子量的壳聚糖维持VC含量的效果不同。

图8 不同分子量壳聚糖涂膜对采后西番莲果实贮藏期间VC 含量影响Fig.8 Effect of chitosan coating with different molecular weights on the content of VC in postharvest passion fruit during storage

2.7 不同分子量壳聚糖涂膜对采后西番莲果实类黄酮和总酚含量影响

除了VC含量丰富外，西番莲果实还是类黄酮和酚类的丰富来源。如图9 所示，西番莲果实的类黄酮含量在贮藏期间呈先上升后下降的变化趋势。其中，对照组果实类黄酮含量在第6 d 达到峰值；而经过涂膜的西番莲果实中，除了150 kDa 涂膜的果实直到第9 d 才达到峰值外，其余涂膜组果实的类黄酮含量均在第3 d 就达到峰值，并且经30 kDa 涂膜的果实其类黄酮含量在整个贮藏过程中均最高。而到贮藏后期（第9～12 d），高分子量（150 和200 kDa）壳聚糖涂膜的果实则保持了较高的类黄酮含量，第9 和第12 d 时，150 和200 kDa 涂膜的果实类黄酮含量分别比同期对照组果实高了13.28%、7.81%和0.61%、2.87%。统计分析表明，该阶段其与30 kDa涂膜的果实间类黄酮含量差异性不显著（P>0.05）。而在整个贮藏过程中，50 和100 kDa 涂膜的果实类黄酮含量均较低，甚至低于对照果实，50 kDa 涂膜的果实类黄酮含量在贮藏末期比同期对照组果实低了5.74%。本研究结果表明，中等分子量的壳聚糖涂膜可能会导致果实类黄酮含量下降加快，而低分子量（30 kDa）和高分子量（150 和200 kDa）壳聚糖则更有助于保持西番莲果实中较高的类黄酮含量，在贮藏末期，30、150 和200 kDa 涂膜的果实类黄酮含量比同期对照组果实分别高了1.23%、0.61%和2.87%。类似地，在芒果果实中也发现，40 kDa 涂膜组的类黄酮含量在贮藏末期低于对照组，270 和360 kDa 涂膜组果实的类黄酮含量均高于对照组[13]。

图9 不同分子量壳聚糖涂膜对采后西番莲果实贮藏期间类黄酮含量影响Fig.9 Effect of chitosan coating with different molecular weights on the content of flavonoid in postharvest passion fruit

图10 不同分子量壳聚糖涂膜对采后西番莲果实贮藏期间总酚含量影响Fig.10 Effect of chitosan coating with different molecular weights on the content of total phenol in postharvest passion fruit

如图 10 所示，与类黄酮含量变化趋势不同，西番莲果实中总酚含量则随着贮藏时间延长而一直处于下降趋势。其中，对照组果实在第3 d 就快速下降到贮藏初期的45.57%，其次是50 kDa 涂膜组，下降到初期的58.51%，随后是30、100 和200 kDa 涂膜的果实，三者间差异不显著（P>0.05），约为贮藏初期的68.53%、71.10%和64.69%；而150 kDa 涂膜的果实仅下降了7.07%；在随后贮藏阶段，对照组变化趋于平缓，而30 和100 kDa 涂膜的果实在第6 d 进一步快速下降，并与对照组之间差异不显著（P>0.05），而此时150 kDa 涂膜的果实总酚含量仍然最高。而第9 d 时各组间已无显著性差异（P>0.05）。而到贮藏结束（第12 d）时，50、150 和200 kDa 壳聚糖涂膜的西番莲果实含量仍然保持了较高的总酚含量。该结果表明，150 kDa 壳聚糖最有助于延缓西番莲果实总酚含量下降，其次是50 和200 kDa 的壳聚糖，而其余分子量的壳聚糖延缓效果不明显。这与Zhang等[34]的研究结果类似，30 和120 kDa 涂膜组的油桃果实在贮藏末期的总酚含量均高于对照组，其原因可能是壳聚糖涂膜能够提高果实的抗氧化能力，从而能较好地维持果实中总酚含量。

3 结论

本研究表明，不同分子量的壳聚糖涂膜处理可有效延缓西番莲果实贮藏期间的皱缩和成熟，并显著降低了果实腐烂率。其中对于皱缩指数和腐烂率而言，均随着壳聚糖分子量增大，效果越明显；对于皱缩指数而言，壳聚糖分子量达到150 kDa 时，其效果与200 kDa 之间已无显著差异。而对于失重率和果实内部品质，较低分子量的（30～50 kDa）和较高分子量（150 kDa）的壳聚糖均更有助于降低果实代谢，从而抑制了果实中可滴定酸和可溶性糖的消耗，维持了较高的可溶性固形物、类黄酮和总酚含量。此外，在整个贮藏期间，150 kDa 分子量壳聚糖涂膜的果实中VC含量均最高。综上所述，不同分子量的壳聚糖涂膜均可以通过推迟采后西番莲果实的衰老，维持果实品质。但有关不同分子量的壳聚糖涂膜对果实品质影响存在差异，综合而言，150 kDa 壳聚糖更有助于西番莲果实品质保持，但其具体机理需要进一步研究。