薛金良,靳超,张晓
郑州大学附属洛阳中心医院胸外科,洛阳市心胸外科疾病临床研究中心,河南 洛阳 471009
食管癌是消化系统常见的恶性肿瘤,近年来发病率日益增高。据统计,全球每年食管癌病死例数约30 万例,中国约15 万例,约占全球的50%[1]。尽管近年来影像技术、外科手术、放化疗等技术快速发展,但多数患者就诊时仍已处于食管癌晚期,因此,早期诊断、及时治疗是提高食管癌患者预后的关键。相关研究表明,食管癌的发生与相关蛋白的表达密切相关[2]。端粒保护蛋白三肽基肽酶1(tripeptidyl peptidase 1,TPP1)高表达与多种肿瘤细胞的发生、发展、转移密切相关[3]。近年来,相关报道显示,基因转录会形成非编码环状RNA(circular RNA,circRNA)Tau-微管蛋白激酶2(Tau-tubulin kinase 2,TTBK2),其是一种丝氨酸/苏氨酸激酶,能抑制肿瘤细胞的增殖、迁移,并诱导细胞凋亡、产生细胞毒性,可作为肿瘤生物学标志[4]。因此,本研究探讨TPP1、circ-TTBK2 在食管癌中的表达及与患者预后的关系,现报道如下。
选取2015 年6 月至2017 年6 月郑州大学附属洛阳中心医院收治的食管癌患者。纳入标准:①年龄49~75 岁;②术前未接受化疗、放疗等辅助治疗;③临床资料完整。排除标准:①合并心、肝、肾严重疾病;②合并严重神经功能、认知功能障碍;③依从性差;④合并其他恶性肿瘤。依据纳入和排除标准,本研究共纳入100 例食管癌患者,其中男59 例,女41 例;年龄49~75 岁,平均(59.31±6.65)岁;病理类型:鳞状细胞癌67 例,其他33 例;分化程度:高分化21 例,中分化37 例,低分化42 例。取100 例食管癌患者的食管癌组织及癌旁正常组织。本研究经医院伦理委员会批准通过,所有患者均知情同意。
选取100 例食管癌患者的食管癌组织及癌旁正常组织,生理盐水清洗后保存在10%甲醛溶液中,-80 ℃恒温箱保存待检。石蜡切片标本厚2 μm,烘烤60 ℃,二甲苯脱蜡,抗原修复,磷酸盐缓冲液(phosphate buffered solution,PBS)冲洗3次。滴加内源性过氧化物酶,室温孵育15 min,冲洗。滴加一抗(稀释浓度1∶100),室温孵育1 h,冲洗。滴加辣根过氧化物酶标记的羊抗小鼠/兔免疫球蛋白G 聚合物,室温孵育30 min,采用PBS 代替一抗;滴加山羊抗兔二抗室温孵育30 min。二氨基联苯胺显色,苏木精复染,梯度乙醇脱水,树胶封片[5]。结果判定:采用双盲法评估TPP1 蛋白的表达情况[6]。随机选取5 个视野,依据染色强度进行评分:无着色计0 分,浅黄色染色计1 分,棕黄色染色计2 分,棕褐色染色计3分;依据阳性细胞所占比例进行评分:阳性细胞所占比例﹤25%计1分,阳性细胞所占比例为25%~50%计2分,阳性细胞所占比例﹥50%计3分。将染色强度评分和阳性细胞所占比例评分相乘,﹤4分判定为阴性,≥4分判定为阳性。
选取100 例肿瘤组织及癌旁正常组织,生理盐水冲洗后保存于-70 ℃冰箱中待检。采用Trizol 总RNA 提取试剂盒提取总RNA,按逆转录试剂盒说明书将总RNA 逆转录,得到互补DNA(complementary DNA,cDNA),以cDNA 为模板用RT-PCR 试剂盒进行PCR 反应。PCR 反应条件:90 ℃60 s,92 ℃30 s,56 ℃30 s,74 ℃30 s,38 个循环。circ-TTBK2 上游引物:5'-AATAGTACTTGGGTCCTCCTCT-3',下游引物:5'-CTGCCAACTGTCGCATGTTC-3';以β-actin为内参,上游引物:5'-GATCATTGCTCCTCCTGAGC-3',下游引物:5'-ACTCCTGCTTGCTGATCCAC-3'。每个标品均设3 个平行反应复孔,参照每孔Ct 值进行分析[7]。计算circ-TTBK2 的相对表达量。
对所有患者进行为期3 年的随访,随访时间截至2020 年6 月,记录患者的预后情况。
采用SPSS 22.0软件对所有数据进行统计分析,计数资料以例数和率(%)表示,组间比较采用χ2检验;计量资料以均数±标准差(±s)表示,组间比较采用t检验;食管癌患者预后的影响因素采用Cox 风险比例回归模型分析;以P﹤0.05为差异有统计学意义。
食管癌组织中TPP1 的阳性表达率明显高于癌旁正常组织,circ-TTBK2 的相对表达量明显高于癌旁正常组织,差异均有统计学意义(P﹤0.01)。(表1、图1)
图1 食管癌组织中TPP1蛋白的表达情况(免疫组化染色,×400)
表1 食管癌组织和癌旁正常组织中TPP1、circ-TTBK2表达情况的比较
不同性别、年龄、病理类型食管癌患者食管癌组织中TPP1 蛋白表达情况和circ-TTBK2 相对表达量比较,差异均无统计学意义(P﹥0.05)。分化程度为低中分化、有淋巴结转移、TNM 分期为Ⅲ+Ⅳ期、浸润深度为T3~4食管癌患者食管癌组织中TPP1 蛋白阳性表达率分别高于分化程度为高分化、无淋巴结转移、TNM 分期为Ⅰ+Ⅱ期、浸润深度为T1~2的患者,差异均有统计学意义(χ2=28.168、4.345、7.994、6.156,P﹤0.05)。分化程度为低中分化、有淋巴结转移、TNM 分期为Ⅲ+Ⅳ期、浸润深度为T3~4食管癌患者食管癌组织中circ-TTBK2 的相对表达量分别高于分化程度为高分化、无淋巴结转移、TNM 分期为Ⅰ+Ⅱ期、浸润深度为T1~2的患者,差异均有统计学意义(t=6.060、11.721、15.728、11.240,P﹤0.05)。(表2)
表2 不同临床特征食管癌患者食管癌组织中TPP1、circ-TTBK2表达情况(n=100)
随访3 年,100 例食管癌患者生存68 例,死亡32 例,病死率为32.00%。年龄、性别、病理类型均可能与食管癌患者的预后无关(P﹥0.05);分化程度、TNM 分期、浸润深度、淋巴结转移情况、circ-TTBK2 表达情况、TPP1 表达情况均可能与食管癌患者的预后有关(P﹤0.05)。(表3)
表3 食管癌患者预后影响因素的单因素分析
将单因素分析中差异有统计学意义的分化程度、TNM分期、浸润深度、淋巴结转移情况、circ-TTBK2表达情况、TPP1 表达情况作为自变量,食管癌患者的预后作为因变量纳入多因素Cox 风险比例回归模型分析,结果显示,浸润深度为T3~4、分化程度为低中分化、TNM 分期为Ⅲ+Ⅳ期、有淋巴结转移、circ-TTBK2高表达、TPP1蛋白阳性表达均为食管癌患者预后的独立危险因素(P﹤0.05)。(表4)
表4 食管癌患者预后影响因素的Cox 风险比例回归模型分析
有研究显示,肿瘤的发生发展与端粒、端粒酶密切相关[8]。TPP1 表面的TEL patch 与端粒酶结合,可调节端粒酶的募集及活性,进而控制端粒的长度和稳定性,且端粒的改变与乳腺癌、肝癌、神经胶质瘤等多种肿瘤的发生密切相关。既往在宫颈癌细胞中加入端粒酶抑制剂——BIBR1532,可抑制TPP1 上的TEL patch 与端粒酶结合,从而抑制宫颈癌Hela 细胞的生长,并促进其凋亡[9]。Zhang 和Dong[10]对慢性B 淋巴细胞白血病的端粒变化情况进行研究发现,仅TPP1 及复制蛋白AⅠ(replication protein AⅠ,RPAⅠ)的表达明显上调,其他蛋白水平均有降低。Wallace 等[11]采用基因芯片技术检测结肠癌中基因表达情况发现,与正常结肠组织相比,结肠癌组织中TPP1 的表达明显上调,提示TPP1 蛋白阳性表达对结肠癌患者的用药选择有指导意义。
circ-TTBK2 是一种激酶,是神经细胞骨架的主要成分,其通过催化微管中含量最高的Tau 蛋白使微管处于不稳定状态,激活微管磷酸化,通过调节miRNA-217 等通路调控胶质瘤的恶性程度[12]。相关研究发现,circ-TTBK2 在多种恶性肿瘤中过表达,能促进肿瘤细胞的增殖、迁移及侵袭[13]。
本研究结果显示,食管癌组织中TPP1的阳性表达率明显高于癌旁正常组织,circ-TTBK2 的相对表达量明显高于癌旁正常组织,且随着食管癌临床分期增高、组织分化程度的降低及淋巴结转移情况,TPP1 和circ-TTBK2 的表达也逐渐上调,这与徐勇军等[14]研究食管癌组织中circ-TTBK2 表达情况一致,说明其与食管癌的发生发展密切相关。同时,为明确影响食管癌患者预后的危险因素,本研究对食管癌患者进行为期3年的随访发现,100例患者病死率高达32%。相关研究发现,TPP1表达升高与食管癌患者3 年总生存率降低密切相关[15]。而Zhang等[16]的研究也表示,circ-TTBK2 可作为判断食管癌患者恶性程度与预后的生物学标志物。本研究Cox风险比例回归模型分析结果显示,浸润深度为T3~4、分化程度为低中分化、TNM分期为Ⅲ+Ⅳ期、有淋巴结转移、circ-TTBK2 高表达、TPP1 蛋白阳性表达均为食管癌患者预后的独立危险因素(P﹤0.05)。表明TPP1 和circ-TTBK2 均与食管癌患者的预后关系密切,进一步提示TPP1 和circ-TTBK2 可通过参与肿瘤细胞的分化、浸润和转移影响食管癌患者的临床结局,但关于其以何种方式来调节食管癌的进展仍未明确,后续仍将继续深入研究。
综上所述,TPP1 在食管癌中阳性表达,circ-TTBK2 在食管癌中高表达,且与食管癌患者的临床特征密切相关,circ-TTBK2 高表达、TPP1 蛋白阳性表达均为食管癌患者预后的独立危险因素。